مقالة منهجية

تخليق أخضر لجسيمات المغنيسيوم النانوية من نباتات السافانا الاستوائية الجديدة الأصلية لتركيبات نانوية نباتية قابلة للتوسع

DOI:

10.3791/70521

⸱

مايو 29, 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1S-Inova Biotech, Programa de Pós-Graduação em Biotecnologia, Universidade Católica Dom Bosco, 2Centro de Análises Proteômicas e Bioquímicas, Programa de Pós-graduação em Ciências Genômicas e Biotecnologia, Universidade Católica de Brasília

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يصف هذا العمل بروتوكولا لتخليق جسيمات المغنيسيوم النانوية للخضراء باستخدام مستخلص نبات ستريفنوديندرون أدسترينجنس ، وهو نوع من السافانا الاستوائية النيواستوبية الأصلية، يليه دمجها وتقييمها في تركيبة مصل تجميلي.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تصف هذه الدراسة بروتوكولا لتخليق الجسيمات النانوية القائمة على المغنيسيوم باستخدام مستخلصات الإيثانول من Stryphnodendron adstringens، وهو نوع نباتي موطنه السافانا الاستوائية الجديدة، ودمجها في تركيبات التجميل النانويفيتوميكي. تشمل العملية جمع وتحضير المواد النباتية، تليها استخراج الإيثانول، حيث تعمل المواد الكيميائية النباتية كعوامل اختزال وتثبيت لأيونات المغنيسيوم. يتم تصنيع الجسيمات النانوية في ظروف محكمة باستخدام كلوريد المغنيسيوم ومستخلصات النباتات، مما يتيح عملية صديقة للبيئة دون استخدام عوامل تقليل سامة. يتم تمييز خصائص الجسيمات النانوية باستخدام تشتت الضوء الديناميكي والمجهر القوي لتقييم توزيع الحجم، والشكل، والسلوك الغروي. يصف البروتوكول أيضا دمج الجسيمات النانوية المصنعة في تركيبة مصل تجميلي. يتم تقييم الاستقرار تحت ظروف تخزين مضبوطة من خلال مراقبة الخصائص العضوية الهيدروجينية واللزوجة. توفر هذه الطريقة نهجا قابلا للتكرار ومستداما لإنتاج جسيمات المغنيسيوم النانوية التي توسطها النباتات وتقييم تطبيقها في التركيبات التجميلية.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يمثل مجال سيرادو النباتي الجغرافي، الذي يتكون من أكبر تكوين سافانا نيوتروائية في أمريكا الجنوبية، أكثر مناطق السافانا الاستوائية تنوعا بيولوجيا في العالم. يحتوي هذا النظام البيئي على آلاف الأنواع النباتية الغنية بنواتج ثانوية مثل الفلافونويدات، والبوليفينولات، والتربينات، والأحماض الفينوليكية، والعديد منها يظهر أنشطة مضادة للأكسدة ومضادة للالتهابات وحماية من الضوء وتهتم صناعات التجميل والأدوية 1,2,3,4 . تدمج هذه المواد الكيميائية النباتية على نطاق واسع كمكونات فعالة عالية القيمة في تركيبات التجميل الوظيفية. بالإضافة إلى نشاطها البيولوجي، تمكنهما المجموعات الوظيفية الهيدروكسيل والكربونيل الموجودة في العديد من البوليفينولات والفلافونويدات من العمل كعوامل اختزال وتثبيت طبيعية لأيونات المعادن في المحلول5،6. وقد تم استكشاف هذه الخاصية الكيميائية بشكل متزايد في تقنية النانو الخضراء لتخليق الجسيمات النانوية المعدنية، مما يمثل فرصة واعدة وغير مستكشفة لتطوير تركيبات مستحضرات تجميلية مستدامة مشتقة من التنوع البيولوجي النيوتروبي 2,3,4,5,6.

تقليديا، تم إنتاج الجسيمات النانوية (NPs) من خلال طرق من الأعلى إلى الأسفل، حيث يتم تفكيك المواد الضخمة إلى جسيمات نانوية الحجم باستخدام طرق فيزيائية مثل التآكل بالليزر أو التلقط، وطرق من الأسفل إلى الأعلى، حيث تبنى الجسيمات النانوية من وحدات أصغر باستخدام الطرق الكيميائية أو البيولوجية7. بينما تكون الطرق الكيميائية والفيزيائية فعالة، إلا أنها غالبا ما تعتمد على المواد السامة، واستهلاك الطاقة العالي، والمعدات المعقدة. وقد أدى ذلك إلى ظهور مناهج الكيمياء الخضراء، التي تركز على الاستدامة والصداقة البيئية والسلامة في إنتاج المواد النانوية.6.

ضمن هذا الإطار، حظي التركيب الأخضر للممرضين الممارسين باهتمام كبير. قدرة الكيماويات النباتية النباتية على العمل في الوقت نفسه كعوامل تخفيض وتثبيت وتغطية القواعد، مما يتيح تخليق NPs المعدني وأكسيد المعادن بكفاءة، إلى جانب محدودية الطرق التقليدية التي تتطلب معدات متخصصة، وظروفا قاسية، وتولد نفايات سامة، تبرر تطوير بروتوكول تخليق أخضر يعمل تحت ظروف معتدلة، وقابلة للتوسع. ولا تنتج أي نواتج ثانوية خطرة 6,7,8,9. من بين جسيمات أكسيد المعادن التي تم استكشافها من خلال هذه الاستراتيجية، تقدم جسيمات المغنيسيوم النانوية (MgNPs) مزايا كبيرة مقارنة بجسيمات الفضة النانوية (AgNPs) وجسيمات أكسيد الزنك النانوية (ZnO NPs)، حيث لا تظهر MgNPs أي ميل للتراكم البيولوجي، وتظهر سمية خلوية أقل في الخلايا البشرية، ومعترف بها من قبل إدارة الغذاء والدواء الأمريكية (FDA) كمواد آمنة بشكل عام للتطبيقات البشرية10. 11. بالإضافة إلى ذلك، من المتوقع أن تجمع MgNPs المصنعة باستخدام مستخلصات نبات سيرادو بين الخصائص المضادة للأكسدة والمضادة للبكتيريا للمغنيسيوم مع المواد الكيميائية النباتية النشطة حيويا الموجودة في المستخلص، مما يعزز قيمتها الوظيفية التجميليةمقارنة بنظيراتها المصنعة تقليديا.

في صناعة مستحضرات التجميل، أحدث تطبيق تقنية النانو ثورة في تطوير المنتجات من خلال تعزيز توصيل واستقرار وفعالية المكونات الفعالة11. يمكن للمضادات غير الطبيعية أن تخترق أعمق في الجلد، توفر إفراز متحكم فيه، وتحمي المركبات الحساسة من التحلل، مما يجعلها ذات قيمة عالية في تركيبات تستهدف شيخوخة الجلد، والصبغة، وحب الشباب، والحماية من الشمس. على الرغم من هذه المزايا الموثقة، لا يزال التخليق الأخضر لنباتات MgNPs باستخدام النباتات المحلية من السافانا الاستوائية الجديدة كعوامل مختزلة للتطبيقات التجميلية غير مستكشف إلى حد كبير ويفتقر إلى التوحيد المنهجي، على عكس ما تم الإبلاغ عنه على نطاق واسع للنباتات من آسيا وأفريقيا وأوروبا 11,12,13,14. تولي معظم الدراسات الحالية اهتماما محدودا لدمج المضادات الطبيعية في التركيبات التجميلية الوظيفية واستقرارها تحت ظروف التخزين المسيطر عليها 11,14,15. يساعد البروتوكول الحالي في سد هذه الفجوة المنهجية من خلال دمج، في منهجية واحدة قابلة للتكرار، التخليق الأخضر لMgNPs من النباتات النيواستوائية، ودمجها في مصل الوجه النانوي النباتي، والتقييم الشامل لاستقرارها الفيزيائي-الكيميائي والوظيفي.

الهدف العام لهذا البروتوكول هو وصف منهجية موحدة وقابلة للتكرار وقابلة للتوسع لتخليق MgNPs على الأخضر باستخدام نبات Stryphnodendron adstringens، وهو نبات أصلي في سافانا سيرادو النيوتروبائية، كعامل اختزال ومثبت في آن واحد، وبالتالي الاستفادة من خصائصه النشطة الحيوية الجوهرية في تركيبة مصل الوجه. تطوير MgNPs المكبوبة من S. adstringens للتطبيقات البشرية الموضعية يشكل تركيبة نانوية جديدة محمية حاليا بموجب طلب براءة اختراع برازيلي (BR 10 2025 015416 1). يمثل التصميم التجريبي المقترح نهجا مستداما ومتوافقا حيويا في إنتاج النورث النفيزيل، متجنبا استخدام عوامل الاختزال السامة المستخدمة عادة في تخليق النيلوفيل التقليدي، مع تسهيل دمج المواد الكيميائية النباتية مع النشاط البيولوجي المحتمل. هذا البروتوكول مناسب بشكل خاص للباحثين الباحثين عن طرق صديقة للبيئة لتصنيع الجسيمات النانوية لأغراض تجميلية أو صيدلانية أو طبية حيوية، خاصة عندما تتوفر مستخلصات نباتية غنية بالفلافونويدات والبوليفينولات. نظرا لأن هذه المركبات تعمل كعوامل طبيعية مختزلة ومستقرة، يمكن تكييف البروتوكول بسهولة مع أنواع نباتية أخرى ذات ملفات كيميائية نباتية مماثلة، مما يسمح بتطبيقه على النباتات المحلية من مناطق جغرافية حيوية مختلفة بناء على توفر المواد النباتية محليا.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. المواد النباتية

  1. الاختيار والتوثيق
    1. اختر نباتات S. adstringens الصحية التي تنمو في مناطق تمثيلية للبيئة الطبيعية لجمع اللحاء. سجل موقع العينة، وتاريخ الجمع، والإحداثيات الجغرافية باستخدام جهاز GPS، والظروف البيئية المحلية وقت الجمع.
    2. إجراء التعرف النباتي باستخدام الأدبيات التصنيفية المتخصصة لأنواع السافانا الاستوائية الجديدة. تأكد من التعريف باستشارة خبير تصنيف مؤهل17.
    3. جمع وفصل المواد النباتية الممثلة لتوثيق الأعشاب، بما في ذلك الهياكل الخضرية والتناسلية (مثل الأوراق، الأزهار، الفواكه، والفروع الصغيرة).
      ملاحظة: جمع مواد الأعشاب بشكل منفصل عن اللحاء المستخدم في الإجراءات التجريبية. اضغط وجفف المادة النباتية باستخدام تقنيات الأعشاب القياسية، وقم بتركيب عينات قسيمة، وإيداعها في أعشاب معترف بها لضمان قابلية التتبع.
  2. مجموعة اللحاء
    1. اجمع لحاء شجرة S. adstringens في المراحل 31–39 (Biologische Bundesanstalt, Bundessortenamt, and Chemische Industrie) في مرحلة النمو النباتي كما هو موضح في الدراسات الفينولوجية السابقة16,17.
      ملاحظة: تخزين المادة المجمعة في كيس مظلم لمنع تحلل المستقلبات الثانوية ولمنع تحلل المستقلبات الثانوية.
  3. تحديد الرطوبة
    1. وزن عينات اللحاء باستخدام توازن تحليلي. قسم المادة إلى ثلاث نسخ مكررة وسجل الأوزان الأولية.
    2. ضع عينات اللحاء في فرن عند درجة حرارة 105 درجة مئوية. جفف العينات حتى تصل إلى وزن ثابت.
      ملاحظة: يتحقق الوزن الثابت عندما يختلف قياسان متتاليان بمقدار لا يزيد عن 1 ملغ، مما يشير إلى إزالة كاملة للرطوبة.
    3. أخرج العينات من الفرن، ودعها تبرد إلى درجة حرارة الغرفة، وسجل الوزن النهائي. احسب محتوى الرطوبة والمادة الجافة باستخدام المعادلات التالية:
      figure-protocol-1
      المادة الجافة (٪) = 100 - الرطوبة (٪)
      حيث:
      W1 = وزن الحاوية الفارغة
      W2 = وزن الحاوية + العينة قبل التجفيف
      W3 = وزن الحاوية + العينة بعد التجفيف

2. تحضير المستخلص

ملاحظة: تم تنفيذ جميع الإجراءات المتعلقة بالمواد الخطرة وفقا لإرشادات السلامة الكيميائية المعترف بها دوليا18.

  1. اشطف اللحاء المجمع حديثا بالماء الجاري لإزالة التربة والغبار والشوائب السطحية.
  2. ضع عينات اللحاء في الفرن على حرارة 36 درجة مئوية لمدة 72 ساعة. طحن اللحاء المجفف باستخدام مطحنة سكين للحصول على مسحوق ناعم.
  3. وزن 200 جرام من مسحوق اللحاء وانقله إلى قارورة إيرلينماير. أضف 1000 مل من الإيثانول بنسبة 98٪.
    تحذير: الإيثانول قابل للاشتعال بشدة. تعامل بعيدا عن مصادر الإشعال واعمل في منطقة جيدة التهوية.
  4. أغلق القارورة وأبقها في درجة حرارة الغرفة لمدة 72 ساعة، محمية من الضوء. حرك الخليط مرة كل 24 ساعة.
  5. قم بترشيح المستخلص أولا عبر شبكة معدنية ثم عبر القطن باستخدام قمع لإزالة الحطام المتبقي.

3. تقييم النشاط المضاد للأكسدة

  1. حضر محلول DPPH بحجم 100 مللي مولار (2,2-ديفينيل-1-بيكريل هيدرازيل) في الميثانول.
    تحذير: الميثانول سام وقابل للاشتعال بشدة. ارتد غطاء بخار وارتد معدات الحماية الشخصية المناسبة. DPPH مهيج وقد يكون ضارا إذا تم استنشاقه أو تناوله. تجنب الاتصال المباشر والاستنشاق.
    ملاحظة: احم المحلول من الضوء بإجراء الفحص في ظروف إضاءة منخفضة، وحذر مع التعامل مع الميثانول وDPPH، ودائما قم بأداء المحلول بالقفازات.
  2. يتم تخفيف مستخلص لحاء S. adstringens الإيثانولي في الميثانول للحصول على تركيزات تتراوح بين 0.1٪ إلى 5٪ (v/v). حضر محاليل فيتامين C بنفس تركيزات المضارب الإيجابي.
  3. توزيع 100 ميكرولتر من محلول DPPH في كل بئر من صفيحة تحتوي على 96 بئر.
  4. أضف 50 ميكرولتر من المستخلص أو محلول فيتامين سي إلى كل بئر.
    ملاحظة: استخدم DPPH + الميثانول كمادة تحكم سلبية والميثانول وحده كمادة فارغة. قم بإجراء جميع القياسات على شكل رباعي.
  5. حضن الطبق لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة في الظلام.
  6. قس الامتصاص عند 515 نانومتر باستخدام مقياس طياف.
  7. احسب نشاط البحث الجذري باستخدام المعادلة التالية:
    figure-protocol-2
    حيث:
    التحكم ABS = امتصاص DPPH + الميثانول
    عينة ABS = امتصاص DPPH + المستخلص

4. تحليل بقاء الخلايا

  1. زراعة الخلايا الليفية الجلدية البشرية الطبيعية (NHDF) في وسط RPMI-1640 مع 10٪ مصل أبقار جنيني و1٪ بنسلين–ستريبتومايسين. حافظ على الخلايا عند 37 درجة مئوية مع 5٪ CO₂.
  2. زرع الخلايا في صفائح بسعة 96 بئر عند 3 × 10أو 4 خلايا/بئر وحضن لمدة 24 ساعة.
  3. استبدل الوسط ب 100 ميكرولتر من الوسط الطازج وأضف 50 ميكرولتر من محلول الاستخلاص. احتضن لمدة 24 ساعة.
  4. أزل الوسط وأضف 10 ميكرولتر من محلول MTT إلى كل بئر. الحضانة لمدة 4 ساعات للسماح بتكوين الفورمازان.
    تحذير: مادة الكاشف الميداني الميداني سام ويجب التعامل معها بالقفازات ومعدات الحماية المناسبة. تجنب التواصل البشري والتواصل البصري.
  5. أضف 60 ميكرولتر من محلول الذوبان (HCl في إيزوبروبانول) لإذابة البلورات.
    تحذير: حمض الهيدروكلوريك يسبب التآكل وقد يسبب حروقا شديدة. التعامل مع المعدات الواقية المناسبة والعمل في غطاء بخار. الأيزوبروبانول قابل للاشتعال ويجب التعامل معه بعيدا عن مصادر الإشعال في منطقة جيدة التهوية.
  6. قس الامتصاص عند 540 نانومتر باستخدام مقياس طيف ضوئي.
    ملاحظة: أجريت اختبارات بقاء الخلايا مع مجموعات ضابطة معالجة وغير معالجة، حيث تم تحليل كل حالة في آبار رباعية التكرار.
  7. احسب صلاحية الخلية باستخدام:
    صلاحية الخلية (٪) = (مستخلص عينة ABS/التحكم الخلوي ABS) × 100
    حيث:
    التحكم الخلوي ABS = امتصاص آبار التحكم غير المعالجة التي تحتوي على خلايا ووسط زراعة فقط.
    مستخلص عينة ABS = امتصاص الآبار التي تحتوي على خلايا معالجة بمستخلص النبات.

5. التخليق الأخضر لجسيمات المغنيسيوم النانوية

  1. أضف 9890 ميكرولتر من الماء المقطر إلى أنبوب تفاعل معقم.
  2. أضف 100 ميكرولتر من مستخلص النبات.
  3. أضف 10 ميكرولتر من 1 M MgCl₂ للحصول على تركيز نهائي يبلغ 10 ملليمتر.
    تحذير: قد يسبب كلوريد المغنيسيوم تهيجا. تعامل مع المعدات الواقية المناسبة وتجنب ملامسة العينين والجلد.
    ملاحظة: يتكون تفاعل القاعدة من 1٪ (v/v) مستخلص + 10 mM MgCl₂ في حجم إجمالي 10 مل. لتحسين تكوين NP، يمكن تعديل تركيز المستخلص مع الحفاظ على الحجم النهائي وتركيز MgCl₂.
  4. اخلط جيدا لتوحيد المحلول.
  5. حضن عند 75 درجة مئوية لمدة 18 ساعة.
    تحذير: قد تسبب درجات الحرارة المرتفعة الحروق. استخدم معدات الحماية المناسبة عند التعامل مع العينات الساخنة.
    ملاحظة: قد يشير تغير اللون إلى تكوين الجسيمات النانوية.
  6. اترك الخليط ليبرد إلى درجة حرارة الغرفة قبل تحديد التوصيف.

6. توصيف الجسيمات النانوية

  1. تشتت الضوء الديناميكي (DLS)
    1. نقل ~750 ميكرولتر من تعليق الجسيمات النانوية إلى خلية قياس.
    2. ضع الخلية داخل الجهاز وقم بالقياسات عند 25 درجة مئوية.
    3. احصل على بيانات حجم الجسيمات باستخدام وضع الكشف المناسب.
    4. حلل كل عينة في ثلاث نسخ مع خمس عمليات فرعية لكل قياس.
  2. المجهر بالقوة الذرية (AFM)
    1. إيداع 10 ميكرولتر من نظام تعليق الجسيمات النانوية على الميكا المقطوعة حديثا.
    2. جفف العينة في مجفف لمدة ساعتين.
    3. اشطف صفيحة الميكا بلطف ثلاث مرات بسعة 20 ميكرولتر من الماء المقطر المصفى. أعد العينة إلى المجفف واتركها تجف في درجة حرارة الغرفة لمدة ساعتين إضافيتين.
      ملاحظة: الغسل يزيل الأملاح الزائدة ويحسن جودة الصورة.
    4. قم بتكوين مجهر القوة الذرية من خلال إعداد الأجهزة ومحاذاة الليزر وفقا لتعليمات الشركة المصنعة. التقاط صور سطحية للمناطق الطبيعية ذات مساحة مسح 500 × 500 نانومتر.
      ملاحظة: يستخدم AFM لتقييم خشونة السطح بشكل نوعي وتصور الخصائص المورفولوجية لMgNPs المجمعة من S. adstringens، مما يولد صورا سطحية ثلاثية الأبعاد عالية الدقة.

7. صياغة النانو-فيتوجمالية

  1. الطور المسخن
    1. وزن 29.7 جرام من الماء المنقي، و0.50 جرام من هيدروكسي إيثيل سيلولوز (HEC)، و3 جرام من الجلسرين في حاويات منفصلة.
    2. ضع الماء في محرك مغناطيسي وسخن إلى 70–75 درجة مئوية مع تحريك لطيف.
    3. أضف HEC تدريجيا إلى الماء الساخن أثناء التحريك لتجنب التكتل.
      ملاحظة: قد يتطلب الترطيب من 15 إلى 30 دقيقة.
    4. أضف الجلسرين وامزج حتى يصبح متجانسا.
  2. مرحلة التهدئة
    1. في كؤوس منفصلة، يزن 30 جراما من الماء المنقي، 3 جرام من النياسيناميد، 33.3 جرام من MgNPs المصنعة من S. adstringens، 0.3 جرام من حمض الهيالورونيك منخفض الوزن الجزيئي، و0.2 جرام من بنزيل كحول وحمض ديهيدرواستيك لتشكيل مرحلة التبريد.
    2. قم بإذابة النياسيناميد بالكامل في الماء عند درجة حرارة الغرفة.
    3. أضف حمض الهيالورونيك وامزج حتى يتساو.
    4. أضف S. adstringens MgNPs وامزج برفق.
    5. أضف مادة حافظة وامزجها.
  3. المزج
    1. برد الطور المسخن إلى ~40 درجة مئوية.
    2. أضف مرحلة التبريد ببطء إلى الطور المسخن أثناء التحريك.
    3. قس درجة الحموضة للصيغة. بالنسبة لتركيبات المصل التي تحتوي على نياسيناميد، يكون الرقم الهيدروجيني المستهدف بين 5.0–6.5 مناسبا.
      ملاحظة: النياسيناميد مستقر حول درجة الحموضة المحايدة إلى الحموضة قليلا. استخدم كميات صغيرة من حمض الستريك أو هيدروكسيد الصوديوم لضبط درجة الحموضة إذا لزم الأمر.

8. تقييم الثبات التجميلي

  1. الاستقرار الأولي (12 يوما)
    1. حضر أربع عينات مكررة من المصل التجميلي في حاويات محكمة الإغلاق.
    2. خضع العينات لست دورات تجميد ذوبان متتالية. تخزين العينات عند 50 درجة مئوية لمدة 24 ساعة ثم عند −5 درجة مئوية لمدة 24 ساعة، مع إكمال دورة كاملة كل 48 ساعة.
    3. بعد كل دورة، سجل الخصائص العضوية من خلال فحص التركيبة بصريا بحثا عن تغييرات في المظهر واللون والرائحة وفصل الطور.
    4. قس درجة الحموضة للأربع عينات في درجة حرارة الغرفة، باستخدام مقياس رقم حموضة رقمي معاير. حدد اللزوجة باستخدام مقياس لزوجة دوار وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
      ملاحظة: الاختلافات ≤10٪ مقبولة. قد تشير التغيرات التي تتجاوز هذا الحد إلى عدم استقرار التركيبة ويجب التحقيق فيها بشكل أعمق. إذا اجتازت الصياغة الدراسة الأولية، قم بإجراء اختبار استقرار معجل.
  2. الاستقرار المعجل (90 يوما)
    1. جهز ثماني عينات من تركيبة التجميل. تخزين أربع عينات عند 50 درجة مئوية وأربع عينات عند 4 درجات مئوية.
    2. قم بالتقييم عند 0، 1، 7، 15، 30، 60، و90 يوما.
    3. تقييم وتسجيل الخصائص العضوية من خلال فحص التركيبة بصريا للبحث عن تغيرات في المظهر واللون والرائحة وفصل الطور.
    4. قس درجة الحموضة للعينات عند درجة حرارة الغرفة، باستخدام مقياس رقم حموضة رقمي معاير. حدد اللزوجة باستخدام مقياس لزوجة دوار وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
      ملاحظة: تم إجراء تقييم الاستقرار وفقا للإرشادات التي وضعتها وكالة المراقبة الصحية البرازيلية19. في الولايات المتحدة، تتبع اختبارات الاستقرار توصيات إدارة الغذاء والدواء20. في الاتحاد الأوروبي، يتوافق تقييم الاستقرار مع اللائحة (EC) رقم 1223/200921، التي تفرض تضمين تقرير سلامة المنتجات التجميلية (CPSR). الملحق الأول من هذه اللائحة يتطلب بيانات استقرار موثقة لدعم سلامة وعمر الصلاحية للتركيبة التجميلية، حيث تجرى الاختبارات عادة وفقا للإرشادات الموحدة ISO/TR 18811:201822، "إرشادات اختبار استقرار المنتجات التجميلية".

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تعد عملية تجفيف لحاء النبات خطوة حاسمة في الحفاظ على المركبات النشطة حيويا وضمان قابليتها للتطبيق في صناعات الغذاء والصيدلانية والتجميل. وعلى العكس، يمكن أن يؤدي التجفيف غير الكافي إلى الظلام المفرط، وفقدان الرائحة، والتلوث الميكروبي، وتدهور المركبات النشطة حيويا، مما يؤثر على جودة اللحاء الخام. يلخص الجدول 1 المعايير المستخدمة للتمييز بين المواد النباتية المجففة بشكل صحيح وغير الصحيح.

معا، تؤكد هذه العوامل أن التجفيف الكافي ليس مجرد تقنية حفظ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يصف البروتوكول المعروض هنا سير عمل قابل للتكرار لتخليق MgNPs الأخضر باستخدام مستخلص S. adstringens ودمجها في تركيبة مصل نانوية نباتية. هناك عدة خطوات ضرورية لضمان نتائج موثوقة. أولا، يجب توحيد جمع وتوثيق المواد النباتية بعناية، بما في ذلك تسجيل دقيق للإحداثيات الجغرافية، والظروف البيئية، والمرحلة الفينولوجية، حيث يمكن أن يؤثر التفاوت في فسيولوجيا النبات ومحتوى المستقلبات الثانوي بشكل مباشر على تركيب المستخلص، وبالتالي على كفاءة تقليل وتثبيت NP16,17

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يعلن المؤلفون عدم وجود تضارب مصالح. لم يكن لمصادر التمويل أي دور في تصميم الدراسة أو جمع البيانات أو تحليلها أو تفسيرها أو قرار نشر النتائج.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يرغب المؤلفون في شكر الجامعة الكاثوليكية دوم بوسكو وجامعة الكاثوليكا البرازيلية على دعمهم خلال بناء هذا العمل. وقد دعم هذا العمل أيضا المجلس الوطني للرعاية (CNPq)، ومجلس المعلمين في بيسيول نيفيل سوبيريور (CAPES)، ومؤسسة الزراعة في المؤسسة الفيدرالية (FAPDF)، ومؤسسة الدراسات والمشاريع (FINEP)، ومؤسسة العلوم والمشاريع (FINEP)، ومؤسسة العلوم في المؤسسة (FUNDECT).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
ألواح ذات 96 بئرسيغما-ألدرتشM0812اختبارات الخلايا
كحول البنزيل والمواد حمض ديهيدروأسيتيكسيغما-ألدرتش1,09,626المادة الحافظة
أنابيب الطرد المركزي (15 مل / 50 مل)فالكون (كورنينغ)430766التعامل مع العينات
حمض الستريكسيغما-ألدرتشC0759تعديل الرقم الهيدروجيني
حاضنة CO2ثيرموفيشر ساينتيفيك3110حاضنة CO2 تستخدم لزراعة الخلايا
مادة فلتر القطنالمورد المحليLH R/260الترشيح
جهاز إزالة المجففميرك BAF424002141التجفيف
DPPH (2,2-ديفينيل-1-بيكريلهيدرازيل)سيغما-ألدرتشD9132اختبار مضادات الأكسدة
فرن التجفيفنوفا وإيكويت؛ تيكا400/5NDRفرن لتجفيف المواد النباتية
الفرن السهلسوليد ستيلSSE-85Lالفرن المستخدم في اختبارات الاستقرار التجميلية
قوارير إيرلينماير بسعة 1000 ملفيدرولابر76200B01000الاستخراج
الإيثانول (98٪)ديناميكا-كيميكا كونتمبورانياص.10.0051.015.36مذيب الاستخلاص
مصل البقر الجنيني (FBS)جيبكو (ثيرمو فيشر)ES-009-Cالملحق
فريزرجيلوبارGTPC-575الفريزر المستخدم في اختبارات الاستقرار
الجلسرينبوتيكا بوتانيكاTBV084.003904.086مادة ترطيب
حمض الهيالورونيك (وزن جزيئي منخفض)بوتيكا بوتانيكاJ201220136عامل ترطيب
حمض الهيدروكلوريك (HCl)سيغما-ألدرتش1,00,317ذوبان MTT
هيدروكسي إيثيل سيلوز (HEC)بوتيكا بوتانيكاAH230641697المكثف
إيزوبوبانولسيغما-ألدرتش100995 ذوبان MTT
مطحنة السكاكين7LAB920Willye 4× 4 شفراتطحن الأوراق والجذور والبذور والدرنات.
كلوريد المغنيسيوم (MgCl2)سيغما-ألدرتش1,01,872تخليق الجسيمات النانوية
تحريك مغناطيسي – الطبق الساخنإيكا5030000المزج
الميثانولسيغما-ألدرتش900641اختبار DPPH
أوراق الميكاثيرموفيشر ساينتيفيكNC9655733التحضير لنظام AFM
قارئ الميكروبليتثيرموفيشر ساينتيفيكمولتيسكان GO 1510-03581قارئ الميكروبليت
واشاف MTTسيغما-ألدرتشCT01-5اختبار بقاء الخلايا
خلايا NHDFBCRJ0089الخلايا الليفية الجلدية البشرية
نياسيناميدبوتيكا بوتانيكا211847المادة الفعالة
الفرنتيرمو ساينتفيكPR305225Mالتجفيف
البنسلين – ستريبتوميسينجيبكو (ثيرمو فيشر)15140122المضاد الحيوي
مقياس الدرجة المئويةديجيمدDM-220يستخدم لقياس درجة الحموضة الأحادية في اختبارات الاستقرار
الماصبات والنصائحإبندورف30078551التعامل مع السوائل
ماء منقي / مقطرميرك (ميلي-كيو)ZIX7010T0Cالاستخدام العام
الثلاجةميتالفريوVB40W ثلاجة تستخدم في اختبارات الاستقرار
اللزوجة الدوارةنوفوتستVISC-5SAيستخدم لقياس اللزوجية في اختبارات الاستقرار
RPMI-1640 متوسطجيبكو (ثيرمو فيشر)  11875093زراعة الخلايا
الحجمBEL EngeneeringHPBG-2285ميزان مواد الوزن
مجهر المجسات الماسحةشيمادزوSPM-9700HTAFM، مجهر مسبار ماسح
هيدروكسيد الصوديوم (NaOH)ديناميكا-كيميكا كونتمبورانياص.10.0594.024.00تعديل الرقم الهيدروجيني
مقياس الطيف الفوتونيثيرموفيشر ساينتيفيكA51119700Cالامتصاص
فيتامين سي (حمض الأسكوربيك)سيغما-ألدرتشPHR1008التحكم الإيجابي
زيتاسايزر برومالفرن بلانالياليكالزيتاسايزر برولتشتت الضوء الديناميكي وحجم زيتا

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Overbeck, G. E., et al. Placing Brazil’s grasslands and savannas on the map of science and conservation. Perspect Plant Ecol Evol Syst. 56, 125687 (2022).
  2. Carvalho, H. J. M., et al. Underexploited fruits from the Brazilian Cerrado: Biodiversity, phenolic composition and biological activities. Food Biosci. 66, 106269 (2025).
  3. Ariyanta, H. A., et al. Current and future outlook of research on renewable cosmetics derived from biomass. Chem Biodivers. 22 (7), e202402249 (2025).
  4. Chrzanowska, E., et al. Metabolites obtained from Boraginaceae plants as potential cosmetic ingredients: A review. Molecules. 29 (21), 5088 (2024).
  5. Antunes Filho, S., et al. Biosynthesis of nanoparticles using plant extracts and essential oils. Molecules. 28 (7), 3060 (2023).
  6. Gupta, D., et al. Green and sustainable synthesis of nanomaterials: Recent advancements and limitations. Environ Res. 231, 116316 (2023).
  7. Alsaiari, N. S., et al. Plant and microbial approaches as green methods for the synthesis of nanomaterials: Synthesis, applications, and future perspectives. Molecules. 28 (1), 463 (2023).
  8. Gour, A., Jain, N. K. Advances in green synthesis of nanoparticles. Artif Cells Nanomed Biotechnol. 47 (1), 844-851 (2019).
  9. Huston, M., et al. Green synthesis of nanomaterials. Nanomaterials (Basel). 11 (8), 2130 (2021).
  10. Younis, I. Y., et al. Green synthesis of magnesium nanoparticles mediated from Rosa floribunda charisma extract and its antioxidant, antiaging and antibiofilm activities. Sci Rep. 11 (1), 16868 (2021).
  11. Proniewicz, E., et al. Plant-assisted green synthesis of MgO nanoparticles as a sustainable material for bone regeneration. Int J Mol Sci. 25 (8), 4242 (2024).
  12. Raszewska-Famielec, M., et al. Nanoparticles for topical application in the treatment of skin dysfunctions: An overview of dermo-cosmetic and dermatological products. Int J Mol Sci. 23 (24), 15980 (2022).
  13. Paiva-Santos, A. C., et al. Plant-mediated green synthesis of metal-based nanoparticles for dermopharmaceutical and cosmetic applications. Int J Pharm. 597, 120311 (2021).
  14. Sisubalan, N., et al. Eco-friendly synthesis of MgO nanoparticles for biomedical applications: Advances, challenges, and future prospects. Nanoparticles in Modern Antimicrobial and Antiviral Applications. , 201-226 (2024).
  15. Kumar, R., et al. Advances in nanotechnology and nanomaterials-based strategies for neural tissue engineering. J Drug Deliv Sci Technol. 57, 101617 (2020).
  16. Souza, I. M., Funch, L. S. Fenologia e modos de polinização e dispersão de Fabaceae em floresta ciliar, Chapada Diamantina, Nordeste do Brasil [Phenology and pollination and dispersal modes of Fabaceae in riparian forest, Chapada Diamantina, Northeastern Brazil]. Sitientibus Ser Cienc Biol. 15, (2015).
  17. Hazrati, S., et al. Harvest time optimization for medicinal and aromatic plant secondary metabolites. Plant Physiol Biochem. 212, 108735 (2024).
  18. United Nations. . Globally Harmonized System of Classification and Labelling of Chemicals (GHS). , (2023).
  19. Agência Nacional de Vigilância Sanitária (ANVISA). . Guia de Estabilidade de Produtos Cosméticos [Guide to the Stability of Cosmetic Products]. , (2004).
  20. . Guidance for industry: Cosmetic product stability (general recommendations) Available from: https://www.fda.gov (n.d.)
  21. European Parliament, Council of the European Union. Regulation (EC) No 1223/2009 on cosmetic products. Off J Eur Union. L342, 59-209 (2009).
  22. International Organization for Standardization (ISO). . ISO/TR 18811:2018: Cosmetics — Guidelines on stability testing of cosmetic products. , (2018).
  23. Mianda, S. M., et al. Impact of drying on phytonutritional compounds, in vitro antioxidant activity and cytotoxicity of spiny saltbush (Rhagodia spinescens). Antioxidants. 13 (11), 1382 (2024).
  24. Rohit, , et al. TOPSIS-based evaluation of drying methods on polyphenolic contents and antioxidant activity of Moringa oleifera leaves. Discover Food. 5 (1), 127 (2025).
  25. Saifullah, M., et al. Effect of drying techniques on phenolics and antioxidant properties of Leptospermum petersonii leaves. J Food Process Preserv. 45 (3), e15257 (2021).
  26. Khan, H., et al. Harnessing plant extracts for green nanoparticle synthesis: Toward a sustainable future. Mater Today Sustain. 31, 101195 (2025).
  27. Apak, R., et al. Methods to evaluate the scavenging activity of antioxidants toward reactive oxygen and nitrogen species (IUPAC technical report). Pure Appl Chem. 94 (1), 87-144 (2022).
  28. Tumilaar, S. G., et al. A comprehensive review of oxidative stress and antioxidant mechanisms of flavonoids. J Chem. 2024, 5594386 (2024).
  29. Michalak, M., et al. Phenolic profile and biological activities of Borago officinalis extracts on skin cells. Molecules. 28, 868 (2023).
  30. Abdallah, W. E., et al. Phytochemical analysis and biological activities of Casuarina equisetifolia extracts. BMC Complement Med Ther. 24, 128 (2024).
  31. Arunachalam, K., Sreeja, P. S. MTT assay protocol. Advanced Cell and Molecular Techniques. , 271-276 (2025).
  32. Choi, B. H., et al. Interference of porphyrin-related compounds in MTT assays. Int J Mol Sci. 24 (1), 562 (2022).
  33. Ramezani Farani, M., et al. Green synthesis of magnesium oxide nanoparticles for antimicrobial applications. Catalysts. 13 (4), 642 (2023).
  34. Miu, B. A., Dinischiotu, A. New green approaches in nanoparticles synthesis: An overview. Molecules. 27 (19), 6472 (2022).
  35. Jeevanandam, J., et al. Biosynthesis and characterization of MgO nanoparticles from plant extracts. New J Chem. 41, 2800-2814 (2017).
  36. Carvalho, P., et al. Application of light scattering techniques to nanoparticle characterization. Front Chem. 6, 237 (2018).
  37. Eaton, P., et al. A direct comparison of experimental methods to measure nanoparticle dimensions. Ultramicroscopy. 182, 179-190 (2017).
  38. Hoo, C., et al. Comparison of AFM and DLS for nanoparticle size characterization. J Nanopart Res. 10 (1), 89-96 (2008).
  39. Alharbi, N. S., et al. Green synthesis of silver nanoparticles using medicinal plants. J Radiat Res Appl Sci. 15 (3), 109-124 (2022).
  40. U.S. Food and Drug Administration (FDA). . Cosmetic Good Manufacturing Practice Guidelines/Inspection Checklist. , (2013).
  41. International Organization for Standardization (ISO). . ISO 22716:2007: Cosmetics — Good Manufacturing Practices (GMP): Guidelines on Good Manufacturing Practices. , (2007).
  42. Semenzato, A., et al. Formulating O/W emulsions with plant-based actives: A stability challenge. Cosmetics. 5, 59 (2018).
  43. Besrour, N., et al. Valorization of Juglans regia leaves as cosmeceutical ingredients. Antioxidants. 11 (4), 677 (2022).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Stryphnodendron Adstringens
الفيديو قريباً

مقالات ذات صلة