采用固定容积-截距法在猪模型中通过闭胸压力-容积环进行连续收缩功能评估

摘要

本方案旨在提供一种可行的、非开胸的猪模型方案，通过固定V₀并计算单次心跳有效动脉弹性（Ees），连续量化与负荷无关的左心室收缩功能，从而避免重复进行下腔静脉阻断，以提高血流动力学不稳定状态下急性实验的安全性和稳定性。

摘要

收缩末期压力-容积关系（ESPVR）被广泛认为是左心室（LV）收缩功能的金标准、与负荷无关的描述指标。在实际应用中，ESPVR 通常被近似为一条直线，其斜率为收缩末期弹性模量（Ees），是反映心肌收缩状态的直接指标；其在容积轴上的截距（V₀）则代表压力为零时的理论左心室容积。在体情况下，ESPVR 通常通过同时监测左心室压力-容积（PV）曲线，并在系列下腔静脉（IVC）阻断过程中获取数据而得出。然而，在心源性休克等疾病状态下，所需的前负荷降低可能引发反射性心动过速性心律失常以及短暂或持续的血流动力学不稳定，从而限制了该方法的可行性与结果的可解释性。因此，有必要开发适用于血流动力学不稳定状态下在体评估心肌收缩力的方法。

本方案旨在描述一种实用的实验模型，即在稳定的基线条件下测定一次V₀，并将其固定，用于后续通过左心室压力-容积环（LV PV loops）进行单次心跳的Ees估算。该方法为急性 大型动物研究提供了详细的逐步操作流程，可在无需重复进行下腔静脉（IVC）阻断的情况下，连续、序列化地评估心肌收缩力。在猪的心源性休克模型中，该方法能够可靠地追踪与负荷无关的心肌功能变化，同时避免因前负荷降低所引发的心律失常和血流动力学不稳定。因此，该方法特别适用于心室几何结构保持不变、且收缩力主要调节ESPVR斜率而非其截距的急性闭胸实验。然而，固定V₀的假设是一种方法学上的简化，会引入有意的系统性误差，仅应在重复前负荷调控不切实际或存在安全风险时使用。当发生结构性重构、显著的左心室扩张或明显的胸腔内压力变化时，必须重新估算V₀。总体而言，本方案为不稳定的大型动物模型中进行序列化收缩力评估提供了一种可行且符合生理学原理的方法，在方法学严谨性、实验安全性和实用性之间实现了良好平衡。

引言

左心室（LV）收缩力是指心肌在不受负荷条件影响的情况下产生压力的内在能力^1,2,3。它是决定心脏每搏输出量、心输出量和血压的关键因素。因此，当发生急性心肌缺血时，心脏可能迅速丧失收缩力⁴。由此，心肌收缩力受损可导致急性心力衰竭和心源性休克（CS）⁵。尽管采取积极治疗，CS仍会引起低血压和器官灌注不足，导致高死亡率（院内死亡率为30%–50%）^5,6。常见的药物治疗包括使用增加收缩力的正性肌力药物，如去甲肾上腺素、多巴酚丁胺和米力农，但这些药物也可能直接影响血管张力⁷。在研究新型药理学治疗方法、评估疾病严重程度或使用实验模型时，对收缩力的评估尤为重要。

诸如左心室射血分数或最大压力上升速率（dP/dt(max)）等传统指标受负荷状态影响，当前负荷或后负荷发生变化时，可能无法准确反映真实的心肌收缩状态。这凸显了使用不受负荷影响的心肌收缩力指标（如收缩末期弹性模量（Ees））的重要性，此类指标能更可靠地评估心肌功能表现¹。

因此，已开发出用于评估收缩功能的体内方法，其中压力-容积（PV）分析被认为是实验研究中的金标准⁸。经典的体内方法用于量化Ees，是通过阻断下腔静脉（IVC）以逐步且短暂地降低前负荷。在前负荷降低过程中，同步记录收缩末期压力（ESP）和收缩末期容积（ESV）的数值点，拟合出ESPVR的回归直线，并确定其斜率Ees，该直线在x轴上的截距定义为V₀——即压力产生为零时的理论容积。然而，在脆弱状态下（如心源性休克CS），即使短暂的IVC阻断也可能导致严重低血压、心律失常，或在本已极低的心输出量状态下进一步损害终末器官灌注，从而限制了该方法的可行性与结果的可解释性。

在本研究方案中，提出了一种用于急性闭胸实验的传统下腔静脉（IVC）阻断方法的实用替代方案，即在稳定的基线条件下进行一次单次IVC阻断，以确定容积轴截距V₀。随后在后续的单次心跳Ees估算中，将该值视为恒定。该方法基于离体和完整动物研究的证据，表明急性变力性改变主要影响ESPVR的斜率（Ees），而截距基本保持稳定^2,9,10。通过避免重复阻断，该方法可最大限度地减少心律失常和血流动力学不稳定，同时保留对左心室收缩功能精确且不受负荷影响的评估。在本方案中，基于既往研究经验^{4,8,11,12,13,14,15,16}，采用基于导纳的PV导管，在闭胸猪心源性休克（CS）模型中应用了这一策略。尽管这种固定截距法适用于心室几何结构稳定的急性闭胸实验，但在心腔尺寸持续变化、胸内压改变或发生结构性重构的情况下，其适用性受限；在评估该方法是否适用于特定研究时，应考虑这些实际限制。与以往的单次心跳或基于模型的方法不同，本方案在稳定的基线条件下通过实验手段确定V₀，并在整个实验过程中沿用该值，为血流动力学脆弱的大动物模型中进行系列化、不受负荷影响的收缩功能评估提供了一种更安全且更可行的替代方案。

方案

本方案已获得丹麦动物研究监察局批准（许可证号：2023–15–0201–01466，签发日期：2023年6月19日）。实验使用约60 kg的雌性丹麦长白猪。本实验为终末性操作，研究结束时在深度全身麻醉下通过静脉注射戊巴比妥（0.25 mL/kg，400 mg/mL）实施安乐死。所用试剂和设备列于材料表中。

1. 麻醉与通气

1. 使用麻醉混合物对猪进行肌内注射预麻醉，剂量为1 mL/kg，混合物包含25 mg/mL替噻咪唑（tiletamine）、25 mg/mL唑拉西泮（zolazepam）、2.5 mL布托啡诺（10 mg/mL）、1.25 mL兽用氯胺酮（ketaminol，100 mg/mL）和6.25 mL兽用赛拉嗪（xylazine，20 mg/mL）。
   注意：麻醉前给药可减少运输过程中的应激、伤害性感受及儿茶酚胺释放。
2. 将动物从农场设施转运至研究设施。
3. 使用18-20 G静脉导管经耳缘静脉建立静脉通路图1). 使用适当的胶带或敷料固定静脉导管。用10 mL生理盐水冲洗，以确认导管位置正确。
   注意：如果导管位于皮下，盐水冲洗后可能出现皮下隆起。 不 正确放置。可考虑在对侧耳部留置另一条备用静脉通路，以防发生移位。
4. 连接脉搏血氧仪传感器，以早期监测动脉血氧饱和度。
   注意：若出现血氧饱和度低于90%的低氧情况，应给予100%氧气 通过 将面罩覆盖在猪的口鼻部，直至恢复正常氧合。在进入第5步之前，确保氧饱和度充足。
5. 将猪仰卧位固定于手术台上。使用直接喉镜法，以内径7.5–8.0 mm的气管导管对猪进行气管插管。通过呼吸机上持续监测到呼气末二氧化碳，确认导管位置正确。充盈气管导管气囊，并将导管固定于猪的吻部。
6. 调整呼吸机参数，并采用以下设置开始正压通气：
   1. 压力控制、容量门控通气设置。
   2. 潮气量 8 mL/kg。
   3. 呼气末正压为 5 cmH₂O₂O.
   4. 将吸入氧浓度滴定至常氧水平，例如动脉血氧饱和度 >94%.
   5. 根据正常二氧化碳水平调整呼吸频率，例如，动脉血二氧化碳分压（PaCO₂）₂ 分压 4.5–5.5 kPa。
7. 通过静脉通路使用丙泊酚（3.5–4.5 mg/kg/h）和芬太尼（12.5–15.5 µg/kg/h）诱导并维持全身麻醉。通过角膜反射和睫状反射消失以及对有害刺激无反应来评估麻醉深度。警告：任何时候均不得使动物无人看管。确保所有实验人员具备相应的教育背景，能够正确监测麻醉深度。
8. 连接三导联心电图（右前肢、左前肢、左后肢）。
9. 将导尿管插入膀胱，并将外端连接至采样袋。
10. 使用直肠探头监测核心体温。
    注意：成年猪的正常核心体温为 38.5–39.5 °C¹⁷低体温应使用主动加温设备进行纠正，例如使用加热毯，以防止低体温引起血流动力学改变或心律失常。

2. 超声引导下血管内通路建立

1. 使用超声引导和塞丁格技术建立以下血管内通路。这些通路将用于单次心跳Ees评估。
   1. 在颈总动脉中插入8 Fr鞘管。
      注意：此鞘管将用于引入左心室压力-容积导管。
   2. 在股静脉中插入一根12 Fr的鞘管。
      注意：此鞘管将用于引入下腔静脉阻断球囊。
2. 使用超声引导和塞丁格技术建立以下血管内通路。这些通路可用于血流动力学监测。
   1. 在股动脉中插入7 Fr鞘管。
      注意：该鞘管将用于有创血压监测。有创动脉血压也可在其他部位测量，例如肢体动脉。
   2. 在颈外静脉中插入8 Fr导管鞘。
      注意：该鞘管将用于肺动脉导管的插入以及肺动脉压力的评估。
3. 建立所需疾病模型的血管通路。本实验中建立了以下血管通路。
   1. 在对侧颈总动脉插入8 Fr鞘管，步骤同1.1。该鞘管将用于冠状动脉导管插入和栓塞，以诱导心源性休克（CS）。
      注意：可根据研究方案建立进一步的访问权限。
4. 为确保血管内鞘管位置正确，使用10 mL注射器从每个鞘管中抽取血液。位置正确的鞘管在抽吸血液或用生理盐水冲洗时均无阻力。
5. 将所有鞘管缝合固定于皮肤，并将各鞘管连接至相应的监测系统。
   注意：应定期冲洗鞘管，以防止血液在鞘管内凝结。或者，根据研究方案，可对猪进行肝素化处理。
6. 按照制造商的说明进行压力校准后，将左心室PV导管按先前所述方法放置⁸ (图1).

3. 左心室压力-容积导管和下腔静脉球囊放置

1. 在插入PV导管之前，对每只动物进行血液电阻率校准。
   1. 将血液吸入0.5 mL冻存管中。在采血后立即使用校准探头测量血液电阻率。
2. 通过8 Fr颈动脉鞘插入左心室（LV）PV导管。在低剂量X线透视引导下，沿LV PV导管的猪尾形头端推进至主动脉瓣。在收缩期通过主动脉瓣。
   注意：在推进LV PV导管的任何阶段均不应遇到阻力。
3. 将LV PV导管的尖端尽可能靠近左心室心尖部放置。
4. 根据设备制造商的指南，选择适当的记录容积段数量，以基于记录的相位和幅值信号优化LV PV导管的位置。
   注意：导管位置对数据采集至关重要。可通过X线透视引导确认位置，但也可通过相位值进行验证。信号的平均值应<10°，并呈周期性波形。在放置PV导管时，应选择正确的段。在初始配置（第1段）中，电极1至4处于激活状态。在此位置，测得的容积常被低估，通常是因为电极距离主动脉瓣过远。在第2段中，电极1、2、4和5激活；根据心室尺寸，此配置仍可能产生低容积信号。当推进至第3段时，使用电极1、2、5和6，在成年猪中通常可获得生理范围内的容积及形态正常的PV环。进一步推进至第4段（电极1、2、6和7）可能会使感应区域超出心室长度，导致在较小心脏中产生不准确的信号。
5. 通过12 Fr股静脉鞘插入下腔静脉（IVC）球囊，并在X线透视引导下将球囊推进至膈肌水平。
   ​注意：在此阶段可暂停实验，以便在研究方案开始前稳定血流动力学状态。异常的血流动力学、通气及电解质参数可在该步骤进行纠正。通常1–2小时的稳定期已足够^13,14,15,16。

4. 基线测量与V₀的确定

1. 在健康基线状态下，按照所述方法进行操作后，根据制造商说明并对所有设备（包括左心室压力-容积导管）进行校准，具体步骤已在其他文献中详尽描述。⁸.
   注意：根据导管采用的是导纳式还是导电式技术，应相应校准压力和容积。导管插入前应完成压力校准。简要而言，校准包括以下步骤：
   1. 在进行之前执行压力校准 体内 LV PV 导管的插入。
   2. 确保稳定的窦性心律。
   3. 使用基于导纳技术的导管时，应采用肺动脉导管测得的每搏输出量进行容量校准。
      注意：基线容积校准扫描应在短暂的呼气末屏气期间进行。
2. 屏气于呼气末相，持续10–15个心动周期，以获取基线值。
   注意：每次呼气末屏气后，需让动物恢复，直至心率和血压等血流动力学指标，以及动脉血氧饱和度和呼气末二氧化碳等呼吸参数均恢复正常。₂.
3. 用于测定 V₀，执行以下步骤：
   1. 再次进行呼气末屏气，等待几个心跳周期，然后缓慢扩张下腔静脉球囊，直至左心室压力低于50 mmHg。迅速回缩球囊并恢复通气。
      注意：此操作将逐步降低左心室前负荷，且在前负荷减少过程中，压力-容积环（PV环）必须显示出逐步向左下方移动的趋势。^1,2,3 (图2A 和 图3A).
   2. 让动物在每次下腔静脉阻断和屏气后恢复，直至恢复正常氧合、正常碳酸血症和正常血压。此过程通常需要2–3分钟。再进行两轮下腔静脉阻断。确保心律为稳定的窦性心律。
      注意：偶尔在充盈下腔静脉球囊以降低前负荷时，可能诱发心律失常或室性期前收缩，从而干扰血流，导致数据分析困难。此时，应缓慢充盈下腔静脉球囊。需进行三次无心律失常的独立阻断操作。
   3. 三次阻断后，无需再进行下腔静脉阻断。可移除下腔静脉球囊导管。
4. 在 LabChart 8 Pro 中，打开内置的 PV 环模块。在 分析， 选择 闭塞 在减负荷过程中手动选择连续的波形环进行分析。排除异位搏动及相邻的心动周期。通过下拉菜单应用线性或二次拟合。
   注意：V₀ 可在基线测量后直接计算，或在事后数据分析期间进行。对于前负荷降低过程中保留的每一个心动周期，均使用该模块的标准定义来确定ESP和ESV。
   1. 使用软件的内置功能分析选定的心动周期。在进行渐进性前负荷降低期间，应分析10个心动周期环路。筛查所有心跳，手动排除异位搏动或伪影，仅保留单调且平滑演变的环路。如需要，可采用已报道的自动化数据清洗方法。¹⁸.
      注意：在下腔静脉阻断期间，左心室容易发生心律失常。若出现房性或室性期前收缩，应将期前收缩及其前后两个心动周期一并剔除。图2B此外，根据心率的不同，下腔静脉阻断可能触发压力感受器反射，从而影响心肌收缩力。
   2. 对于保留的心跳，需手动确认软件内置功能是否正确识别了收缩末期压力和容积。
   3. 拟合ESPVR直线。
      注意：主要可采用线性拟合的ESPVR直线^1,2 (图2A。然而，ESPVR 的直线可能呈非线性曲线^1,19,20,21 (图3）。如果ESPVR明显呈曲线形，则应采用公认的非线性拟合方法对ESPVR进行拟合，例如通过下拉菜单选择二次回归^19,21,22分析软件（如 LabChart 8 Pro）提供多种拟合选项。当 ESPVR 在视觉上呈直线趋势时，应采用线性最小二乘法拟合；当明显呈现曲线形态时，可使用二次拟合。警告：线性与二次 ESPVR 拟合的选择应同时依据内置模块提供的客观拟合优度指标以及对 ESPVR 形状的目视评估。应预先设定决策规则，例如，若二次模型能提高校正后的 R 值，则优先选用二次模型。² 与线性拟合相比，差异≥0.05（图4)²³；然而，必须始终通过目视检查环路形态和残余模式，以确认曲率在生理学上合理。R 的微小数值改善² 缺乏一致的视觉证据表明存在曲线关系时，不应使用非线性拟合。
   4. 计算 V₀ 由拟合的ESPVR直线或曲线与X轴的截距得出。
      注意：应记录模型形式和拟合优度。当观察到 ESPVR 具有显著凸性时，线性拟合可能在较高压力下低估真实弹性，在较低压力下高估真实弹性 （图4））。在这些情况下，建议采用二次拟合来确定V₀，具体方法如步骤4.3所述。尽管单次心跳Ees的估算必然是线性的，但必须认识到ESPVR存在曲率，因为非线性行为可能影响连续测量结果，特别是在后负荷发生较大变化时。
   5. 在三次独立的阻塞中重复该方法，并取三次 V 的平均值₀ 测量。
      注意：阴性对照 V₀ 并不表示具有物理意义的负向心室容积；相反，它反映了线性ESPVR模型的局限性以及心室力学本身在低容积和低压力条件下所存在的非线性特征。负值V的出现₀ 在收缩力较强的心室中更为常见，尤其是在对高负荷范围应用线性拟合时。
5. 计算 Ees 为 V 之间直线的斜率₀ 以及第2步中的平均收缩末期压力和容积点
   注意：此时已完成功能基线值的测量，可开始应用相应的疾病模型。可在本阶段暂停实验，以确保血流动力学、通气参数及电解质处于正常状态。

5. 缺血性心源性休克的诱导

注意：本方案描述了如何在缺血性心源性休克模型中无需额外进行下腔静脉阻断来估算 Ees，如文献^{4,11,12,13,14}所述。该疾病模型的详细方案不在本方案的范围之内，可参见其他文献²⁴。简而言之，心源性休克的诱导方法如下：

1. 通过将 0.125 g 微球与 5 mL 碘化对比剂和 5 mL 0.9% 生理盐水混合，制备栓塞颗粒的储备悬浮液，最终总体积为 10 mL。使用前及使用过程中轻轻振荡悬浮液，并通过冠状动脉导引导管以 1 mL 等分量注射（图 5）。
2. 将一根冠状动脉导引导管（5–7 Fr，例如 JL 3.5）经颈动脉内的动脉鞘（见步骤 2）插入左冠状动脉开口。
3. 使用市售的聚乙烯醇栓塞颗粒，对左主冠状动脉进行逐步冠状动脉内微栓塞，以诱导心肌缺血和心源性休克。每次注射后，等待血流动力学稳定 2–5 分钟，并重复注射，直至热稀释法测得的心输出量或混合静脉血氧饱和度较基线水平下降 30%（图 6）。
   ​注意：心源性休克成功诱导的标志是压力-容积环变窄以及收缩末期容积向右移动，反映心肌收缩力急剧下降^4,9。

6. 研究全程中每搏连续测定Ees

注意：PV 数据可使用 LabChart 8 Pro 或其他具有专用 PV 环分析模块的类似软件进行分析。所有记录均应进行目视检查，以确保窦性心律稳定且无信号漂移。软件会自动分割各个心动周期，随后需进行人工复核。应排除室性期前收缩，以及早搏前一个和早搏后一个心动周期，因为这三个心动周期的负荷条件均会发生短暂改变。

1. 在基线时确定受试者特异的 V₀ 后（见前述部分），无需额外进行下腔静脉阻断，即可进行单次心跳的 Ees 估算。
2. 在每个时间点，连续进行三次呼气末屏气，持续 10–20 个心动周期，同时记录压力-容积（PV）环。针对每个时间点，根据屏气期间的数据确定平均收缩末期压力（ESP）和收缩末期容积（ESV）。
   注意：确保在短暂的呼吸暂停期间保持稳定的窦性心律。需仔细检查每个单独的心动周期形态。仅当心动周期代表生理上合理的、负荷条件稳定且心室压力生成符合实际的情况时，方可纳入分析（图2）。异位搏动以及紧邻异位搏动前后的搏动不应纳入分析。有关心搏选择的详细方案，请参阅已发表的方法学指南^8,18。
   注意：较高的呼气末正压（PEEP）可能影响静脉回流和负荷条件¹²。应确保各 PV 环相互重叠，表明负荷条件一致。尽管通常约 10 个心搏足以用于 ESPVR 分析，但在某些情况下可能需要更长的下腔静脉阻断记录，以确认随着压力持续下降，收缩末期点不再进一步向左移动（图2，图3，和 图4）。
3. 利用屏气期间获得的 PV 环数据，结合固定的 V₀ 值以及平均 ESP 和 ESV 值，计算每个时间点的 Ees² 
   注意：在后续实验流程中，V₀ 保持恒定，而根据研究方案和干预措施的不同，ESP 和 ESV 可能在不同时间点发生变化。因此，负荷状态或收缩状态的变化仅影响 Ees，不会影响 V₀。

结果

上述说明介绍了一种基于单次心跳计算Ees的方案，同时保持零压力状态下的理论容积V₀恒定。本节展示了我们实验室开展的两项研究的数据。首先，进行了一项独立的预试验，以观察在心源性休克（CS）诱导后V₀和Ees的发展变化。其次，在一项包含30头猪的大型数据集中（数据来自先前已发表的研究），展示了心源性休克的缺血模型⁴。

研究1
在本项未发表的初步研究中，诱导心源性休克（CS）后，心输出量下降了32.5%。在诱导CS后，放置下腔静脉（IVC）球囊和肺动脉导管（PV导管）。通过IVC阻断进行PV测量，以评估V的稳定性₀ 随时间变化。在针对受试者设置随机截距的线性混合效应模型中，V未呈现显著的时间变化₀ 被观察到（P=0.61，表明 V₀ 在CS诱导后整个观察期间保持稳定（图7）。此外，固定V的性能₀

讨论

本方案描述了一种实用、可重复且可行的策略，用于进行连续、负荷无关的左心室收缩功能评估，即使在缺血性心源性休克等急性心脏疾病状态下亦可实施。该方案采用固定的容积轴截距 V₀，通过单次心跳估算收缩末期弹性（Ees），避免了重复进行下腔静脉（IVC）阻断，从而降低了心血管状态不稳定期间发生心律失常和低血压的风险。本方案的方法学创新之处在于，明确结合了通过 IVC 阻断实验获得的、个体特异性的实测 V₀ 值，随后进行连续的单次心跳 Ees 估算。现有的单次心跳弹性估算方法通常通过数学方式推断 V₀。本方案通过将单次心跳弹性估算锚定于实验测得的、个体动物特异的 V₀ 值，实现了经典多心跳 ESPVR 推导方法与纯模型依赖的单次心跳方法之间的一种实用折中方案。

在急性实验中假设V₀保持恒定的依据，来源于离体心脏研究和体内观察结果。事实上，在离体犬心实验中，当通过去甲肾上腺素或异丙肾上腺素增强心肌收缩力时，收缩末期压力-容积关系（ESPVR）的斜率，即有效动脉弹性模量（Ees），显著增加，而V₀

材料

本文使用的材料清单

姓名	公司	目录编号	评论
0.9% 生理盐水	Fresenius Kabi, Germany	921046	微球悬浮液及冲洗
10 mL 注射器	BD, USA	BD Plastipak 302143	微球注射
12 Fr 股静脉鞘	Terumo, Japan	Radifocus Introducer II	用于下腔静脉阻断球囊插入
20 G 静脉导管	BD, USA	BD Insyte 381223	耳静脉静脉通路
7 Fr 股动脉鞘	Terumo, Japan	Radifocus Introducer II	有创动脉压监测
8 Fr 颈动脉鞘	Terumo, Japan	Radifocus Introducer II	左心室压力-容积导管通路
8 Fr 颈内静脉鞘	Terumo, Japan	Radifocus Introducer II	肺动脉导管通路
Contour PVA 微球	Boston Scientific, USA	Contour 355–500 µm	诱导缺血性心源性休克
冠状动脉指引导管	Boston Scientific, USA	JL 3.5 / JR 4.0	冠状动脉通路用于微球注射
心电图电极（3导联）	Ambu, Denmark	BlueSensor P	持续心电图监测
气管插管 7.5–8.0 mm	Smiths Medical, UK	Portex ETT	气管插管
芬太尼（静脉注射）	Hameln Pharma, Germany	Fentanyl Hameln	持续静脉镇痛
X线透视系统	-	-	导管引导
加热毯	3M, USA	Bair Hugger Warming Unit	维持正常体温
肝素	Leo Pharma, Denmark	Innohep	如使用则用于抗凝
Iomeron 对比剂	Bracco Imaging, Italy	Iomeron 350	冠状动脉造影及微球悬浮液配制
下腔静脉阻断球囊导管	Fogarty / Edwards Lifesciences, USA	Fogarty Occlusion Balloon	暂时性前负荷降低
LabChart 8 Pro 软件	ADInstruments, New Zealand	LabChart 8 Pro	压力-容积环数据采集与分析
左心室压力-容积导管（电导式）	Millar Inc., USA	MPVS Ultra PV Loop Catheter	基于电导法的左心室压力–容积测量
机械通气机	GE Healthcare, USA	Datex Ohmeda S/5	正压通气
MPVS 模块	ADInstruments, New Zealand	MPVS Ultra/Duo	压力-容积导管接口
PowerLab 数据采集系统	ADInstruments, New Zealand	PowerLab 16/35	信号采集
丙泊酚（静脉注射）	Fresenius Kabi, Germany	Diprivan / Propofol-Lipuro	持续静脉麻醉
肺动脉导管 7.5 Fr	Edwards Lifesciences, USA	Swan-Ganz 131HF7	热稀释法心输出量及肺动脉压测量
脉搏血氧仪	-	-	外周血氧饱和度监测
直肠温度探头	-	-	核心体温监测
Seldinger 导丝	Terumo, Japan	Radifocus Guide Wire M	血管通路建立
无菌生理盐水冲洗液	Fresenius Kabi, Germany	0.9% NaCl	鞘管冲洗
缝合材料	Ethicon, USA	Vicryl 3-0	鞘管固定
注射泵	Becton Dickinson (BD), USA	BD Alaris	持续麻醉药物输注
超声系统	-	-	血管通路引导
导尿管	Teleflex, USA	Rüsch Foley catheter	膀胱引流
赛拉嗪（替来他明/唑拉西泮）	Virbac, France	Zoletil 100	用于麻醉前用药；根据方案与布托啡诺、氯胺酮、赛拉嗪混合使用