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数据获取与预处理
本研究使用公开的转录组学和遗传学数据进行,未直接涉及人类或动物受试者。与HER2+乳腺癌治疗耐药性相关的转录组数据集从NCBI基因表达综合数据库(GEO)(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/)11中获取。选择了两个RNA-seq数据集GSE231524和GSE231525,因其特别关注HER3驱动的耐药性以及在HER2+乳腺癌细胞系(BT474和MDA-MB-453)中DUSP6的抑制作用。这些数据集包括经拉帕替尼(1 µM)处理和DUSP6敲低后获得的亲本型、药物耐受型和药物耐药型表型。使用RStudio(v4.3.2)中的GEOquery(v2.70.0)和Biobase(v2.62.0)软件包访问原始计数矩阵及相应的元数据文件12。对元数据进行整理,为每个数据集定义两个主要对比:GSE231524将对照组(BT474亲本型,第0天)与药物耐受和药物耐药样本(第9天至第9个月)进行比较,而GSE231525将对照组(随机siRNA)与DUSP6敲低组(DUSP6-KD)进行比较。使用DESeq2(v1.42.0)框架进行质量控制和数据标准化,该框架采用方差稳定变换(VST)以减少异方差性,并确保样本间的可比性。使用ggplot2(v3.5.0)和pheatmap(v1.0.12)对数据分布和聚类模式进行可视化评估,以确认数据的一致性,并在差异表达分析之前识别潜在的离群值13,14。
本研究中,严格区分了来自细胞系转录组数据集的发现与来自患者来源临床数据集的发现。细胞系数据主要用于探索性分析,包括在受控实验模型中鉴定差异表达基因以及获得初步的机制性见解。相比之下,患者来源的数据集则用于验证基因表达模式的外部一致性,并评估其临床相关性,包括预后评估。因此,细胞系模型的结果与临床队列的结果被分别解读,以避免过度泛化,并确保所有发现均具有恰当的转化研究背景。
差异基因表达分析
通过差异表达分析,鉴定在对照组与处理组之间显著变化的基因。使用整合在DESeq2中的校正回归模型(ARM)对标准化计数进行处理,以准确估计log₂倍数变化及统计显著性。实验设计公式定义为 ~condition,代表对照组与处理组之间的比较。筛选标准为:校正p值(FDR)< 0.05,且绝对log₂倍数变化 ≥ 1的基因被视为显著差异表达基因。采用apeglm方法对log₂倍数变化进行压缩调整,以提高效应量估计的稳健性。分析结果通过EnhancedVolcano(v1.22.0)15和ggplot216进行可视化,生成火山图和MA图,展示表达幅度与统计置信度之间的关系。同时在DESeq2中评估了离散估计值,以确保在生物学重复样本间实现准确的方差建模和一致的标准化17。
线粒体氧化应激相关差异表达基因(MOS-DEGs)的获取与鉴定
为了研究能量代谢、氧化应激与药物耐药性之间的关联,从多个数据库中整合编制了一份线粒体及氧化应激相关基因的综合列表,包括 Human MitoCarta3.018(https://personal.broadinstitute.org/scalvo/MitoCarta3.0/human.mitocarta3.0.html)、基因本体数据库(GO:0006979,氧化应激响应)(http://geneontology.org/)、京都基因与基因组百科全书(KEGG)氧化磷酸化通路(https://www.genome.jp/kegg/)以及人类氧化应激基因数据库(HOSGDB)(http://hosgdb.com/)。所有获取的基因均使用 org.Hs.eg.db(v3.18.0)和 AnnotationDbi(v1.64.0)统一转换为 HGNC 批准的基因符号,并剔除重复条目、假基因和非编码 RNA,以确保注释的准确性。最终构建的经人工审编的线粒体氧化应激基因集(MOS 基因)随后被用作参考基因集,与两个转录组数据集中鉴定出的差异表达基因进行整合分析。
使用 R 语言中的 dplyr(v1.1.3)19 和基础 R 的 intersect() 函数,对精选的 MOS 基因列表与从 GSE231524 和 GSE231525 获得的差异表达基因(DEGs)进行交集分析。该整合性方法用于识别与线粒体代谢、氧化还原调控及氧化应激适应功能相关的 MOS-DEGs。通过 R 中的 VennDiagram(v1.7.3)包对数据集之间的重叠情况进行可视化,以展示不同实验模型间共有和特有的基因20。获得的精炼 MOS-DEGs 基因列表用于后续分析,揭示 HER2 靶向治疗耐药背后的转录与代谢重编程机制。
MOS-DEGs 的表达谱分析与可视化
使用 RStudio 中的 ComplexHeatmap(v2.18.0)21 和 pheatmap(v1.0.12)软件包对鉴定出的 MOS-DEGs 进行表达谱分析,以可视化亲本、药物耐受及耐药条件下全局表达模式。对标准化计数数据采用 z-score 标准化方法,以使不同样本间的基因表达矩阵标准化。采用欧氏距离和完全连接法进行聚类分析,以识别共表达模式并区分不同条件特异的转录谱。使用 ggplot2 生成热图和聚类图,确保不同条件之间具有清晰的视觉区分。该可视化方法有助于识别与线粒体活性、氧化应激调控以及耐药状态下代谢重编程相关的基因群组。
功能富集与通路注释
为探究鉴定出的MOS-DEGs的生物学意义及其调控机制,使用R Studio(版本4.3.1)进行了基因本体(Gene Ontology, GO)和京都基因与基因组百科全书(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes, KEGG)富集分析。分析在tidyverse环境中进行,利用多个Bioconductor软件包实现可重复的计算与可视化。基因注释和标识符映射基于org.Hs.eg.db数据库(https://bioconductor.org/packages/org.Hs.eg.db/)完成 Homo sapiens 参考基因组(GRCh38)。使用 clusterProfiler 软件包(版本 4.8.1;https://bioconductor.org/packages/clusterProfiler/)进行基因本体(GO)富集分析,该软件将基因分为三大本体类别——生物过程(Biological Process, BP)、细胞组分(Cellular Component, CC)和分子功能(Molecular Function, MF)。enrichGO22 功能被用于参数设置为 p值 < 0.05 和 校正 p 值 (FDR) < 0.05,采用Benjamini–Hochberg校正方法。可视化图表(包括柱状图、点图和弦图)使用enrichplot(https://bioconductor.org/packages/enrichplot/)和ggplot2生成。13 (https://cran.r-project.org/web/packages/ggplot2/)和 GOplot(https://cran.r-project.org/web/packages/GOplot/)。这些工具提供了对富集的 GO 条目及其基因关联的结构化视图。
使用 clusterProfiler 软件包中的 enrichKEGG() 函数进行 KEGG 通路富集分析,并参考人类 KEGG 数据库(https://www.genome.jp/kegg/)。采用 KEGGREST 软件包(https://bioconductor.org/packages/KEGGREST/)进行通路数据的获取与注释。调整后的 p 值(q 值)< 0.05 的通路被视为具有显著性。通路的可视化与映射分析通过 pathview(https://bioconductor.org/packages/pathview/)、ggplot2 和 enrichplot 完成,而 igraph 与 ggraph 用于构建网络图谱23。所有富集分析与可视化均在 R Studio(v4.3.1)中通过可重复的代码和标准化的 Bioconductor 工作流程实现,确保可靠地识别与 MOS-DEGs 相关的富集功能类别及生物学通路。
基于ROC的乳腺癌预测性生物标志物验证
为了验证MOS-DEGs的临床预测能力,使用ROCplotter在线工具(https://www.rocplot.org/)24进行了受试者工作特征(ROC)曲线分析。ROCplotter是一个集成的基于网络的平台,整合了基因表达数据与来自3,104例乳腺癌患者的临床注释治疗反应数据集,其中包括接受化疗、激素治疗或抗HER2药物治疗的患者。
分析采用“病理学完全缓解”作为结果变量,“任何化疗”作为治疗类别。Affymetrix 芯片数据集得出的基因表达值根据平台内的临床注释自动分为应答组和非应答组。
采用受试者工作特征(ROC)曲线下面积(AUC)、Mann-Whitney U检验、倍数变化和卡方检验来评估每个基因区分应答者与非应答者的能力。曲线下面积(AUC)被用作评估区分性能的主要指标。AUC值大于0.55且ROC p值<0.05被视为具有显著性,代表转录组学生物标志物典型的中等预测性能,同时应用错误发现率(FDR)校正以保持分析的严谨性。
使用相应的Affymetrix探针ID对所有选定的MOS-DEG进行查询。通过临床乳腺癌队列评估每个基因的判别潜力,其中表达数据被分为应答者和非应答者两组。ROC曲线、箱形图及相关统计结果由ROCplotter平台直接生成,并导出用于后续可视化和比较。该分析量化了参与线粒体氧化应激的氧化还原与代谢调控因子的预测价值。在临床样本中表现出一致预测意义的基因被保留,用于最终预测面板的构建。
肿瘤、正常及转移组织中的差异表达分析(TNMplot 分析)
使用 TNMplot 网络工具 v2(https://tnmplot.com/analysis/)25,分析了前导 MOS-DEG 在正常、肿瘤及转移性乳腺组织中的表达模式。通过 RNA-Seq(TCGA + GTEx + MET500)和基因芯片数据集进行分析,以确保跨平台验证。采用“多基因分析”模块,并选择浸润性乳腺癌作为目标组织类型26。对肿瘤 vs. 正常(TvsN)、转移 vs. 肿瘤(MvsT)以及转移 vs. 正常(MvsN)三组之间的表达值进行 log₂ 转换后比较。TNMplot 使用 Mann–Whitney U 检验自动计算倍数变化(FC)和 p 值,以评估统计学显著性。表达分布以箱线图和密度图形式可视化,图形直接由 TNMplot 界面生成,其中绿色、红色和灰色分别代表正常组织、肿瘤组织和转移组织。所有图像均以高分辨率导出,用于整合至结果部分。该双平台分析有助于稳健地识别和验证与乳腺癌进展相关的关键线粒体氧化还原-代谢调控因子27。
使用Kaplan–Meier绘图仪进行生存与预后分析
为评估MOS-DEGs在乳腺癌中的预后相关性,使用Kaplan–Meier Plotter在线工具(https://kmplot.com/analysis/)进行生存分析28该数据库整合了来自超过4,900名乳腺癌患者的基因表达与生存数据,这些数据源自多个GEO、EGA和TCGA数据集。分析采用与优先基因对应的个体Affymetrix探针ID进行无复发生存期(RFS)分析:225609_at(GSR)、201761_at(MTHFD2)、201619_at(PRDX3/AOP1)和201128_s_at(ACLY)。患者被分为 高- 根据中位表达值将样本分为高表达组和低表达组,采用Kaplan-Meier法估计生存概率。使用对数秩检验(log-rank test)评估生存曲线之间的统计学显著性,风险比(HR)及其95%置信区间(CI)由工具自动计算。所有分析均以无复发生存期(RFS)为终点,未对激素受体或HER2状态(ER、PR、HER2 = 全部)进行限制。去除重复样本,并验证比例风险假设以确保统计稳健性。质量控制过滤排除了存在偏倚的微阵列数据。根据KM Plotter的默认设置,未进行人工探针筛选或对多重检验进行p值校正。统计学显著性定义为 p. < 0.05。通过高分辨率生存曲线图对每位候选MOS基因的高表达组与低表达组之间的预后差异进行可视化分析,并下载图像以供进一步解读29,30.
本研究分析最初采用完全由HER2+乳腺癌样本组成的数据库,用于鉴定差异表达基因(DEGs)和核心基因(hub genes)。随后,生存分析未限制于HER2状态(ER、PR、HER2 = 全部),以评估所鉴定基因更广泛的预后相关性与普适性。该策略作为二次验证步骤而采用,而非重新定义研究重点。因此,对所鉴定核心基因的预后意义进行谨慎解读,主要结论仍特异性地针对HER2+乳腺癌。
MTHFD2-201(ENST00000394053.7)和 PRDX3-201(ENST00000298510.4)的典型转录本序列来自 Ensembl 基因组浏览器(https://www.ensembl.org)31,32。使用 Ensembl 变异效应预测工具(VEP)(https://www.ensembl.org/vep)进行变异注释与分类,该工具为每个已识别的变异提供了详细的基因组背景、密码子改变及氨基酸替换信息。下游分析仅选择错义变异(非同义单核苷酸多态性)。
致病性预测与变异位点优先排序
每个非同义单核苷酸多态性(nsSNP)的功能后果通过多种计算预测工具联合评估。使用SIFT(https://sift.bii.a-star.edu.sg)评估氨基酸保守性,将得分≤0.05的变异归类为有害33。PolyPhen-2(http://genetics.bwh.harvard.edu/pph2)用于估计氨基酸替换对蛋白质结构和进化的影响,得分≥0.85提示可能具有破坏性34。CADD(https://cadd.gs.washington.edu)提供整合多种注释信息的综合有害性评分,评分≥20表示具有较高的致病潜力35。此外,通过VEP分析界面整合了MetaLR36、Mutation Assessor和REVEL等互补性预测指标,以提高预测的可靠性37。满足以下阈值的变异——MetaLR≥0.70、Mutation Assessor≥3.5、REVEL≥0.75——被优先认定为可能致病。
结构与机制影响预测
为了评估氨基酸替换对结构完整性和生化功能的影响,使用 MutPred2(http://mutpred.mutdb.org)38 和 DynaMut(http://biosig.unimelb.edu.au/dynamut)39 对每个排名靠前的非同义单核苷酸多态性(nsSNP)进行进一步分析。MutPred2 估算了功能破坏的概率,包括催化活性改变、金属结合残基的获得或丧失、溶剂可及性的变化以及别构调节,评分 ≥ 0.80 被归类为高度致病性。DynaMut 计算了野生型与突变蛋白之间的吉布斯自由能变化(ΔΔG),评估了稳定性改变的方向和程度,并生成了原子位移和氢键重排的可视化图谱。
二级与三级结构建模及溶剂可及性分析
MTHFD2 和 PRDX3 的实验解析晶体结构取自蛋白质数据库(Protein Data Bank, PDB),并使用 PyMOL V:3.1(https://pymol.org)40 进行处理,以可视化有害残基的空间分布。通过引入相应的氨基酸替换构建突变体模型,随后进行结构优化和能量最小化。三维结构的比较分析揭示了二级结构元件的位移、原子间相互作用的改变,以及非同义单核苷酸多态性(nsSNP)与催化位点及辅因子结合结构域之间的空间邻近性,提示其可能破坏氧化还原和代谢功能。
使用 PSIPRED V: 3.2(http://bioinf.cs.ucl.ac.uk/psipred)41,42 和 NetSurfP 3.0(https://services.healthtech.dtu.dk/service.php?NetSurfP-2.0)43 进行了二级结构和溶剂可及性分析。这些工具可预测α-螺旋、β-折叠、卷曲以及无序区域,并提供相对溶剂可及性(RSA)评分。通过映射具有中等到高 RSA 值且结构有序的残基,以识别溶剂暴露且功能关键的位点。受影响的位点在二维拓扑图中进行可视化,以判断有害突变是否发生在刚性的催化核心或柔性的环状区域,从而预测其对蛋白质折叠动力学和酶催化效率的可能影响。
数据库交叉验证、功能整合与稳定性验证
每个优先筛选的非同义单核苷酸多态性(nsSNP)均与群体水平的基因组数据库(包括dbSNP、1000基因组计划、ExAC和gnomAD)进行交叉比对,以确认其变异频率、全球等位基因分布以及先前报道的临床关联。通过整合进化保守性分析、结构建模和基于机器学习的功能预测,鉴定了MTHFD2和PRDX3中高置信度的有害变异。这些高影响突变随后被定位至功能结构域,以阐明其在乳腺癌线粒体氧化应激失衡、代谢信号通路改变及治疗耐药性中的潜在作用。为进一步验证每个有害替换的热力学效应,使用iMutant 3.0(https://folding.biofold.org/i-mutant/i-mutant3.0.html)44基于序列和结构数据预测突变对蛋白质稳定性的影响。该分析计算了ΔΔG值(kcal/mol),代表野生型与突变型蛋白质之间自由能的变化。ΔΔG值为负的变异被归类为破坏性突变,表明蛋白质稳定性降低且解折叠概率增加。将iMutant的预测结果与DynaMut和MutPred2结果整合,实现了对可能影响氧化还原功能、催化完整性及整体蛋白质构象稳定性的关键结构残基的交叉验证。
整合的功能解释与治疗相关性
所有鉴定出的有害非同义单核苷酸多态性(nsSNP)均通过与dbSNP、gnomAD和ExAC群体数据库的交叉比对进行验证,以确认其次要等位基因频率及先前报道的与癌症表型的关联。综合进化保守性分析、结构建模和稳定性数据的解读表明,高影响突变rs1471336772(MTHFD2)和rs747786383(PRDX3)对蛋白质构象和催化效率具有最强的有害效应。计算分析结果共同提示,MTHFD2基因的突变会破坏NADPH依赖性氧化还原代谢,而PRDX3基因的突变则损害过氧化物酶介导的氧化应激防御功能,从而导致线粒体功能障碍和肿瘤侵袭性增强。本基于nsSNP的结构与功能分析为未来的治疗靶点筛选和突变验证提供了计算基础,并强调MTHFD2和PRDX3可作为针对氧化还原通路的乳腺癌精准治疗的生物标志物。为提高清晰度并全面概述分析策略,图2展示了总结本研究主要步骤的示意图工作流程。该流程整合了差异基因表达分析、线粒体基因筛选、蛋白质-蛋白质相互作用网络构建、基于ROC分析的临床验证以及基于nsSNP的结构表征。这一逐步推进的分析框架凸显了从转录组数据处理到生物标志物识别及功能解读的逻辑递进过程。

图2. HER2+乳腺癌中线粒体氧化应激相关生物标志物识别与验证的整合多步工作流程。该示意图总结了本研究采用的分析流程。首先,对RNA-seq数据集(GSE231524和GSE231525)进行差异基因表达(DEG)分析,以鉴定显著改变的基因。将这些差异表达基因与人工整理的线粒体氧化应激相关基因取交集,获得MOS-DEGs。接着,利用STRING和Cytoscape进行蛋白质-蛋白质相互作用(PPI)网络分析,以识别枢纽基因和功能模块。随后,使用ROCplotter平台进行受试者工作特征(ROC)曲线分析,评估所选基因在临床队列中的预测性能。最后,对优先基因(MTHFD2和PRDX3)中的非同义SNP(nsSNP)进行分析并开展结构建模,以评估关键变异可能产生的功能和结构影响。该整合性工作流程结合了转录组学、网络分析、临床数据和结构分析,用于识别潜在的生物标志物和治疗靶点。请点击此处查看该图的放大版本。