2010年1月29日
血凝反应是一种抗体与红细胞结合的凝集现象。红细胞易于获取,且结果可用肉眼直接观察。本视频演示了血凝反应实验的操作步骤、结果判读以及效价的确定方法。
使用血凝素检测法测定血清的反应性及滴度。凝集反应是可溶性抗体与颗粒性抗原之间发生的反应。这些抗原可包括细胞或偶联分子。
载体表面的表位可使抗体结合并相互交联载体,从而形成一种称为抗原-抗体复合物的复杂晶格结构。血凝是凝集反应的一种特定形式,其中抗体与作为颗粒性抗原的红细胞结合。红细胞是理想的检测靶标,因为它们不仅易于获得,而且实验结果可通过肉眼直接观察。
血清样本经连续稀释后,加入96孔U型底培养板中。随后加入红细胞(Riva细胞)悬液。当存在高浓度抗体时,抗体会与红细胞结合,形成较大的晶格结构。
当该晶格在重力作用下沉淀时,会贴合ubo板的形状。从上方观察,可见一片广泛的红细胞聚集现象。此为阳性血凝反应。
当抗体水平较低时,无法形成网格结构,红细胞会顺应UBO板的形状并聚集在底部,形成一个小的沉淀物。这是阴性血凝反应。此图显示的是阳性反应。
细胞在沉降过程中形成晶格结构,并贴合U型底板的形状。在左侧和右侧,我们看到的是俯视图,其中可见一片广泛的红细胞层。如果存在中等量的抗体,则会观察到部分字母状结构的形成。
血凝反应还可用于检测不同血清样本对已知抗原的反应性。同时可以确定血清样本的滴度,即仍能观察到阳性反应的最高稀释倍数。
通常情况下,血清样本中的抗体浓度越高,滴度也越高。此图显示为阴性血凝反应,抗体数量不足,无法介导红细胞发生交联。
当细胞因重力沉降时,会沿孔壁滑落,在孔底形成紧密的沉淀。右侧示意图显示了从上方观察时的红细胞。本实验需要1块96孔U型底板。
必须使用U型底板,因为平底板无法使细胞沉淀形成细胞团,从而导致结果无法判读。用移液器向第A行第1至第12列各孔中分别加入50 µL待测血清、1%瑞氏细胞悬液以及一份维罗纳缓冲盐溶液。向各孔中再加入50 µL罗氏缓冲盐溶液。
此溶液用作您的稀释液。现在将50微升血清加入A1孔中。这是您的第一次1:2稀释。
使用移液器确保血清样本充分混匀。混匀后,从A1孔中取出50微升,转移至A2孔。这是您的1:2二次稀释,得到四倍稀释。
继续使用第3至第11孔进行此系列稀释。不要向第12孔加入任何血清,因为该孔为罗氏缓冲盐水阴性对照。现在取已充分混匀的1%瑞氏细胞悬液,向A1至A12各孔中分别加入50 µL。
细胞加入后,盖上培养板,轻轻敲击培养板,以确保样品与细胞充分混匀。随后在37摄氏度条件下孵育60分钟。应使用带加湿功能的培养箱。
在60分钟的孵育期间,抗原与抗体将发生相互作用,细胞将开始沉降。您所观看的视频是整个60分钟过程的延时摄影图像。此为第5至第10孔的放大图像。
我们已经观察过,嗯,12号孔,这是本实验的VBS对照孔。该孔中的细胞已形成紧密的沉淀,表明实验体系正常发挥作用。5号和6号孔是阳性血凝反应的示例。
其中,第七孔为中等凝集结果的示例,而第八、九、十孔则为血凝阴性。根据此结果,滴度应以第七孔的稀释度为准,因为这是最后一次观察到阳性反应的孔。
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本文演示了血凝抑制试验,这是一种用于检测和定量结合红细胞的抗体的技术。该方法包括对血清样本进行系列稀释,然后在U型底微量滴定板中与红细胞混合,通过肉眼观察凝集模式来确定抗体的反应性和滴度。该试验快速、简便,可直接观察结果。
血凝试验提供了一种快速、可直观读取结果的方法,用于量化抗体反应性及滴度,支持生物制药领域早期靶点验证和检测方法开发&D. 区分阳性、阴性和中度凝集反应的能力有助于开展可靠的假设检验,并为项目组合的优先级决策提供依据。该检测方法操作简便且可扩展性强,是标准化发现研究与转化研究中血清学工作流程的有力工具。
血凝试验通过实现早期假设验证、检测方法标准化以及基于抗体项目的定量分析,融入了从发现到临床前研究的连续过程。