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蚊虫的触杀测试实验依赖于将活性待测化合物直接施加于成蚊的背部胸部,以检测其杀虫特性。
首先,通过将成年雌性蚊子暴露于临界低温(即能够终止其神经肌肉活动的低温)来对其进行麻醉。
将单只麻醉的雌性蚊子置于解剖显微镜下。使用连接微施用器的玻璃注射器,其中装有测试化合物——一种多巴胺受体拮抗剂——溶于非极性溶剂中。将针头置于胸部附近,利用微施用器小心地将一滴测试化合物滴加至蚊子背表面。
施加处理后,将处理过的蚊子转移到具有受控环境条件的培养室中,保持一段确定的时间。
液滴中的非极性溶剂可溶解表皮(最外层覆盖物)中的脂质,从而使化合物渗透进入内部。该化合物穿过下方的表皮层,并到达胸神经节——这是一团与神经系统相连的密集神经细胞。
当该化合物到达神经细胞后,会结合到多巴胺受体上的别构位点——即调节分子的额外结合位点。这种别构结合会阻碍多巴胺结合后引发的下游信号级联反应——多巴胺是一种调控关键生物过程的神经递质——最终导致细胞死亡。
实验周期结束后,记录死亡蚊虫的数量——即无任何活动迹象的处理个体——以评估测试化合物的杀虫潜力。
将3至5日龄的成年雌性蚊子在20升的塑料笼中进行培养。用测试化合物的名称和浓度标记9盎司的纸杯。
接下来,在20毫升玻璃小瓶中,用丙酮配制浓度为10 µg/µL的待测化合物储备液。然后,将该储备液进行系列稀释,以获得所需的使用浓度。
用丙酮清洗一支1毫升的玻璃注射器,然后吸入适当浓度的待测溶液。将注射器固定在微量施用器上,并调整至递送0.25微升的体积。
接下来,使用吸虫器从笼中移出10只3至5日龄的成年雌性蚊虫,并在4摄氏度下麻醉5分钟。然后将蚊虫转移至培养皿中,并将培养皿置于冰上10分钟。
为避免损伤成蚊(损伤可能导致其死亡),确保将其置于冰箱中麻醉的时间不超过5分钟,或在冰上固定的时间不超过10分钟,并尽量减少对蚊虫的操作。若您可使用冷台和带有可移动载物台的显微操作仪,则可进一步减少对蚊虫的接触操作。
使用精细镊子从培养皿中取出每只蚊子。在解剖显微镜下,用注射器微量点样器将 0.25 µL 测试溶液滴加至蚊子的背部胸区。随后,将蚊子转移至预先标记并置于冰上的纸杯中。用 10 cm × 10 cm 的网筛覆盖杯口,并用橡皮筋密封。然后将纸杯转移至培养箱中,记录死亡蚊子的数量。