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取针对人巨细胞病毒(HCMV)的抗体进行系列稀释。
加入HCMV后,抗体与病毒包膜上的糖蛋白B结合,从而中和病毒。
将混合物转移至人成纤维细胞上并进行孵育。
非中和病毒上的三聚体糖蛋白复合物与特定的细胞受体结合,触发糖蛋白B介导的病毒-宿主膜融合,从而将含有基因组DNA的核衣壳释放到细胞内。
释放的基因组进入细胞核,编码定位于细胞核的早期即刻蛋白(immediately early, IE蛋白)。
抗体中和可防止病毒进入细胞。
去除未被内化的病毒。在零下温度下用乙醇处理,以固定并通透细胞。
加入一种可结合IE蛋白的一抗。
加入与一抗结合的荧光标记二抗以及与DNA结合的荧光染料。
在显微镜下检测被双重染色的病毒感染细胞。计算感染细胞的百分比,以确定不同抗体浓度下的病毒中和效果。
实验前一天,将成纤维细胞在完全培养基(含10% FBS的DMEM)中培养,以制备用于感染的靶细胞。, 在无菌的96孔板中。
24小时后,向新鲜的96孔板的孔中加入90微升稀释的抗体溶液,制备病毒-抗体混合物。使用完全培养基对抗体溶液进行系列稀释。
此外,将用完全培养基预稀释的病毒溶液 60 微升加入每孔含抗体的孔中,以生成不同浓度的病毒-抗体混合物,并进行孵育。
现在,为了感染靶细胞,取接种了成纤维细胞的培养板。向细胞中加入 100 微升不同浓度的病毒-抗体混合物,并将靶板在 37°C 下孵育 24 小时。
24小时后,为通过免疫荧光检测病毒感染,使用无水乙醇固定细胞,并将其置于-20摄氏度冰箱中孵育。固定完成后,在实验台面上进行后续步骤。
向板的所有孔中加入100 µl的一抗。将板置于室温下孵育1小时。
从孔中移除一抗溶液。向所有孔中加入荧光素标记的二抗与 DAPI 溶液的混合液。在避光条件下孵育 1 小时,然后洗涤平板。
为了定量分析感染情况,在显微镜下观察培养板,并使用蓝色和红色通道采集图像。根据文本方案中所述,计算每个孔的感染百分比。