使用实时环磷酸腺苷检测法测量气味受体激活

0 次观看3:30 分钟 • July 8th, 2025

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取一个含有转染哺乳动物细胞的多孔板。

这些细胞表达嗅觉神经元的气味受体(OR),即一种G蛋白偶联受体,同时还表达含环磷酸腺苷(cAMP)结合域与突变型荧光素酶融合的cAMP生物传感器。

移除培养基,并用缓冲液洗涤以去除残留的培养基。

加入含有cAMP生物传感器底物的缓冲液。孵育以促进底物进入细胞。

使用化学发光酶标仪,测定细胞的基础发光强度。

向各孔中加入浓度递增的测试气味物质,留一孔不加处理作为对照。

气味分子与OR结合,触发产生cAMP的信号级联反应。 

这种cAMP会结合到生物传感器的结合结构域,激活荧光素酶,后者与底物相互作用从而发出光信号。

实时测量发光信号。发光信号随气味分子浓度升高而增强,表明气味分子激活了嗅觉受体。

刺激前,在相差显微镜下观察转染的细胞,确保每孔细胞融合度在50%至80%之间,然后放回培养箱。随后,通过向Hank's平衡盐溶液中加入10 mmol/L HEPES和5 mmol/L葡萄糖,制备刺激用培养基。将实时cAMP检测底物试剂的55 µL分装液置于冰上解冻。

通过混合55 µL底物试剂与2,750 µL刺激培养基,配制2%平衡溶液。在实验台面上铺好一层厚的纸巾,将培养板倒置后轻轻并反复在纸巾上轻敲,使转染培养基被纸巾吸收。通过移液枪向每孔加入50 µL刺激培养基,对细胞进行洗涤。

轻柔地反复吸打96孔板中的刺激液。每孔加入25微升2%平衡溶液,置于室温避光孵育2小时。在孵育结束前,将解冻的气味物质储备液用刺激液稀释至工作浓度。

在添加气味物质之前,使用化学发光酶标仪测量孔板的基础发光水平。迅速将孔板从酶标仪中取出,并向每孔加入25微升的气味物质稀释液。随后,立即开始对所有孔进行连续发光检测,在30分钟内完成20个循环的测量。

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最后更新:22 八月 2026