2017年1月18日
我们介绍一种开源的高内涵分析(HCA)仪器,该仪器利用自动化的荧光寿命成像(FLIM)技术,通过基于荧光共振能量转移(FRET)的检测方法来分析蛋白质相互作用。openFLIM-HCA 仪器的数据采集由基于 µManager 编写的软件控制,数据分析则在 FLIMfit 中进行。
本实验的总体目标是演示如何利用开源软件和基本仪器,在自动化的多孔板工作流程中实现时间门控荧光寿命成像显微技术(FLIM)。该方法可应用于一系列固定细胞或活细胞的基于FLIM的检测,尤其适用于细胞信号转导或蛋白质相互作用的研究。
该技术的主要优势在于,荧光寿命成像(FLIM)可提供可靠的定量读数,并能在单次测量中获得相互作用分子群的比例。通过对数百个视野中的数千个细胞应用全局分析技术,我们可以利用荧光共振能量转移(FRET)读数,并能够检测到例如荧光寿命低至约20皮秒的变化。
将由我们的研究助理 Sunil Kumar 和软件开发人员 Ian Munro 与 Frederik Gorlitz 一同演示该操作流程。首先启动 MicroManager,打开 openFLIM-HCA 插件。在 FLIM 控制选项卡下,选择延迟盒校准文件,并打开校准文件。
选择针对特定延迟发生器单元和激光重复频率组合的校准文件。在文件菜单下,选择设置基础文件夹,并指定用于保存数据的文件夹。在确认所有相关参数均已正确设置后,在整个实验过程中,手动将选通式光学增强器控制箱的门宽设置为四纳秒。
为获取仪器响应函数图像数据,需手动将光束挡板放置于物镜前的滤光立方盒内,以阻止任何激光逸出,并调整光束挡板角度,尽量减少反射光返回显微镜主体。在光路控制选项卡下,设置转盘单元中的激发、二向色镜和发射滤光片,使得来自旋转尼普科夫转盘的激发光散射部分能够在不少于200毫秒的相机积分时间内成像,且系统不发生饱和。在荧光寿命成像(FLIM)控制选项卡下,对可编程快速延迟盒所覆盖的全部延迟范围,使用“查找最大值点”功能。
然后检查显示的输出轨迹,并设置粗调延迟时间,使整个仪器响应函数曲线位于快速延迟盒的扫描范围内。调节中性密度和曝光时间参数。
此外,还需进行帧累积,以确保相机在亮度时间门内不发生饱和,且有效积分时间不少于200毫秒。在FLIM控制菜单下,选择快速延迟框,并在整个延迟范围内设置25皮秒的延迟步长。接着,选择填充延迟,然后点击拍摄FLIM图像,以获取仪器响应函数图像。
等待采集完成。在光路控制菜单中,选择中性密度,并点击“阻断”以关闭激光。打开荧光寿命成像控制菜单,选择快速延迟框,通过增加增量框中的数值来减少延迟步数。
然后点击“拍摄FLIM图像”以获取背景相机图像。为获取参考染料数据,请转到XYZ控制选项卡,并在“转至孔”对话框中输入H4孔。接着,转到光路控制选项卡,选择适当的激发滤光片、二向色镜和发射滤光片,使用“查找最大值点”功能,在快速延迟框的全范围内对M turquoise荧光蛋白进行成像。
然后设置适当的参数以获取参考芯片数据和相应的背景图像,方法如前所述。要从多孔板样品中获取FLIM数据,请进入高内涵筛选(HCA)序列化采集菜单。选择XYZ位置选项卡,并设置需要成像的孔以及每个孔采集的视野数量。
选择一个包含待成像样本的代表性视野,并调整相机的积分时间及中性密度滤光片,使读出相机的信号达到其动态范围的75%。在XYZ控制选项卡下,于自动对焦对话框中选择返回焦点控制,并手动将显微镜聚焦于目标细胞或结构。将自动对焦搜索范围设置为2000微米,然后按回车键。
然后点击“AF now”以启动自动对焦程序。聚焦偏移自动对焦字段中将显示一个偏移值。将此偏移值输入到AF偏移窗口中,然后连续两次点击“AF now”以重复自动对焦程序。
此时,偏移值应设置为零,表明自动聚焦系统工作正常。接下来,在FLIM控制选项卡下,选择自动门控功能,以确保延迟时间点的对数采样。将累积帧数设置为一个能够达到所需总数据采集时间的数值。
然后,在FLIM采集对话框中,单击“启动HCA序列”按钮以运行FLIM多孔板采集,并如前所示获取背景相机图像。此处展示了一个使用共表达细胞中的模型FRET系统进行的代表性FLIM FRET检测,以及各孔中典型视野下自动采集的荧光寿命图像示例。在本实验中,阴性对照孔显示出最长的寿命,而供体寿命在具有最短连接子长度的FRET构建体中表现最短。
总体而言,每个孔内所有视野的平均寿命在多孔板之间存在差异。对A1孔中所有成像细胞的供体荧光强度衰减曲线进行平均,并结合单指数衰减模型拟合及仪器响应函数,表明该拟合模型是有效的。进一步对多孔板各列的平均荧光寿命进行分析(基于逐像素单指数拟合获得),显示在FRET构建体中,随着连接子长度变短,荧光寿命降低,模拟了不同FRET效率实验的结果。
在本实验中,采用单指数衰减模型对不同抑制剂作用于蛋白质寡聚化的FRET实验的FLIM数据进行拟合。荧光寿命平板图显示了每个孔的平均寿命,该值是基于八个视野的平均结果。其中一个小规模实验每孔成像四个视野,而我们的FLIM实验总耗时约为两个半小时,包括获取仪器响应函数、参考寿命数据以及在FLIM拟合软件中完成分析的时间。
进行荧光寿命成像(FLIM)实验时,重要的是要同时采集仪器响应函数和参考染料数据及其背景图像,以确保拥有分析FLIM数据所需的全部信息。利用我们的开源软件FLIM fit,还可以将这些数据拟合到更复杂的衰减模型中,例如,可用于确定FRET群体比例。
我们的FLIM高内涵分析(HCA)技术正在帮助药物发现领域的研究人员对FRET进行可靠的测量。未来,我们希望该技术能够实现基于细胞的检测中解离常数的测定。我们希望本视频论文以及我们Wiki中的信息能够帮助其他研究人员构建自己的FLIM HCA仪器,并将其应用于FRET及其他检测方法中。
请务必注意,使用激光可能存在危险,操作此类仪器时应始终采取预防措施,例如将所有激光束封闭起来。
本文介绍了一种开源的高内涵分析(HCA)仪器,该仪器利用自动化的荧光寿命成像(FLIM)技术,通过基于荧光共振能量转移(FRET)的检测方法来分析蛋白质相互作用。该方法适用于固定细胞和活细胞,可提供关于细胞信号转导及蛋白质相互作用的可靠定量数据。
采用多孔板形式的自动化荧光寿命成像(FLIM)可通过FRET实现对蛋白质相互作用的稳健且定量的检测,支持早期药物发现中的靶点验证和作用机制去风险化。该开源工作流程降低了技术应用门槛,使研发团队能够在化合物库或基因扰动条件下获得可重复的相互作用数据。这使得该方法成为机制性筛选项目中先导化合物发现和项目组合筛选的可扩展、经济高效的工具。
该方法可融入从靶点假设验证到先导化合物鉴定的整个发现流程,能够在进入临床前研究之前对蛋白质相互作用进行定量评估。