2018年8月25日
本文介绍一种从成人皮肤组织中高效分离原代人角质形成细胞的方案。该方法通过在接种培养基中使用ROCK抑制剂Y-27632,使表皮细胞与真皮细胞自发分离,从而简化了传统操作步骤。
本视频的总体目标是介绍一种从成人皮肤组织中分离和培养原代人表皮细胞的新型简便方法。该先进技术更适合于为实验室和临床应用大量制备高潜能的表皮细胞。在称重前用PBS洗涤组织。
使用电子天平称量皮肤组织。用70%乙醇冲洗皮肤组织30秒。将组织在含抗生素的PBS中孵育,每次5分钟,共孵育两次。
将组织转移至另一个无菌培养皿中,使用手术刀片充分匀浆。每5分钟加入200微升PBS,以保持组织湿润。将匀浆后的组织转移至50毫升离心管中。
每1克皮肤组织加入10毫升酶混合液。将酶与匀浆后的组织充分混合。在37°C水浴中振荡孵育该混合物。
随后,加入体积为原液1/5的0.25%胰蛋白酶。在37°C水浴中继续孵育30分钟。按1:100的比例向混合物中加入DNase I溶液。
然后继续孵育五分钟。加入等体积的中和培养基以终止消化过程。用移液器将溶液上下吹打约20次。
将解离的细胞通过100微米细胞滤筛过滤,以去除组织碎片。在200 g条件下离心五分钟。观察试管底部的沉淀物。
移去上清液,并用10毫升中和培养基洗涤细胞沉淀。然后在200 ×g下离心5分钟。将细胞沉淀重悬于含有10 µM ROCK抑制剂的接种培养基中。
在100毫米培养皿中接种2×10⁶个细胞。三天后,将接种培养基更换为无血清角质形成细胞培养基。每两天更换一次培养基。
当细胞密度达到约80%时,进行传代。用PBS洗涤细胞。如有必要,用胰蛋白酶消化两分钟,并用PBS洗涤细胞以去除污染的真皮细胞。
加入等体积的中和培养基。在200 g条件下离心5分钟。最后,弃去上清液并重悬细胞沉淀。
从人皮肤组织中分离的角质形成细胞采用两种方法分别进行培养。传统方法为两步消化法,需进行为期两天的操作;相比之下,新方法为一步消化法,操作时间约为三小时。
在第三天,使用新方法培养可观察到大量细胞簇,而采用传统方法则不会出现此现象。第五天时,观察到新方法产生的原代细胞数量更多。为检测培养的角质形成细胞的分化状态,我们分析了基底细胞标志物K5和终末分化标志物Loricrin。
我们发现,第3代培养时90%的总细胞呈K5阳性,但表达兜甲蛋白(Loricrin)的细胞不到10%,表明这些细胞为未分化的角质形成细胞。我们检测了真皮成纤维细胞中表达的波形蛋白(vimentin),以评估分离过程中是否存在真皮细胞污染。结果显示,初始代次中约有3%的真皮细胞存在,但在第3代培养中仅检测到约0.02%的真皮细胞,表明经过传代后表皮细胞纯度较高。
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本文介绍了一种从成人皮肤组织中分离原代人角质形成细胞的简化方案。该方法利用ROCK抑制剂Y-27632促进表皮细胞与真皮细胞的分离。
从成人皮肤中分离高纯度的原代人角质形成细胞由于得率低和污染风险,仍然是皮肤病学和再生医学研发中的一个瓶颈。本简化的一步酶解法结合ROCK抑制剂Y-27632,可提高表皮细胞的回收率和干性,实现靶点验证和临床前建模所需的规模化生产。该方法降低了操作复杂性和耗时,有助于从发现到先导优化阶段的可重复检测开发和转化研究的连续性。
该方法通过提供经过验证的原代人角质形成细胞,用于早期靶点验证,推动筛选项目的检测方法开发,并支持皮肤治疗药物的临床前评估,从而契合发现研究的连续进程。