2022年1月21日
介绍了一种便捷的重力灌注法,用于小鼠中枢神经系统的组织学分析。在帕金森病小鼠模型中,展示了磷酸化α-突触核蛋白的免疫荧光检测。本研究还全面描述了经心脏灌注、解剖、组织冷冻/包埋以及冷冻切片等步骤。
本方案提供了一种在小鼠中进行固定剂灌注的简单方法,可实现对中枢神经系统组织的组织学研究,且无需大量投入。本文所述重力灌注法的主要优势在于,灌注装置可使用 readily available 组件构建。演示该操作的是陈新杰博士实验室的医学博士生 Arnav Rana。
首先,使用锋利的剃须刀片,将两个500毫升冲洗瓶内部的导管修剪平整,使其与瓶盖螺纹内侧齐平。在每个缓冲液瓶的底部切割一个4厘米×4厘米的方形孔,然后在每个瓶底再切一个小孔,以便插入弯曲的不锈钢微型刮勺。接下来,将微型刮勺弯成S形,使其可用作钩子来悬挂缓冲液瓶。
将弯曲的微型刮勺插入缓冲液瓶的相应开口中。接着,用两根25厘米长的管子分别紧密连接外瓶的吸管出口,并用Y型连接头将这两根管子的末端连接在一起,然后将一根2米长的管子连接到Y型连接头的自由端。从1毫升注射器上取下推杆后,先用剃刀片在距离注射器尖端约6厘米处划痕,然后迅速折断注射器塑料部分。
将注射器的切割面充分插入塑料管的自由端,并确保密封紧密。接下来,将一个缓冲液瓶标记为PFA,另一个标记为PBS。从瓶口起测量约三分之一瓶身长度,在该位置围绕瓶身画一条线,以标示灌注液的适当填充液位。
将一个大号回形针拉直后,弯成一个可环绕管路周长的环形结构,并将此环固定在靠近注射器的管路位置。然后将一块大小合适的泡沫塑料块放入玻璃托盘中,将回形针的两端插入泡沫塑料块内以固定管路,并用纸巾将玻璃托盘前端抬高约2厘米。用蒸馏水冲洗一个1升烧杯后,加入约800毫升18兆欧·厘米的分子生物学级水。将烧杯放入微波炉加热3分钟,或直至水温达到65摄氏度,随后将其放置于通风橱内的加热板或搅拌板上。
接着,用蒸馏水冲洗玻璃棒,并将其放入烧杯中。启动搅拌器,将电热板调至中等加热档位,确保水温不超过70摄氏度。佩戴外科口罩、手套和实验服后,称取40克PFA粉末,加入加热的水中,然后使用移液管向溶液中加入数滴5摩尔的氢氧化钠。
让粉末充分溶解。如果粉末未完全溶解,可根据需要添加更多氢氧化钠。当所有PFA几乎完全溶解后,立即停止搅拌和加热,然后加入100毫升10×PBS,再用18兆欧·厘米的分子生物学级水定容至1升刻度线。
用塑料膜盖住烧杯,并将其放入-20摄氏度的冷冻机中,直至溶液达到室温。使用适当的标准溶液校准pH计后,将烧杯置于搅拌台上,测量溶液的pH值。逐滴加入盐酸,直至pH值达到7.4。
如果pH值过低,加入5摩尔的氢氧化钠以提高pH值。接下来,将真空瓶连接至真空泵,并在瓶口放置一个带有滤纸的洁净陶瓷布氏漏斗。开启真空泵后,使用装有4%PFA溶液的移液管润湿滤纸,然后缓慢将溶液倒入漏斗中的滤纸上,直至所有溶液完成过滤。
过滤后,将溶液置于避光容器中,在 4 摄氏度保存直至使用。在通风橱内,将泡沫塑料解剖板放入玻璃托盘中。确保解剖板上有五到六根短针,用于手术过程中固定小鼠,另需两根长针用于支撑灌注管路。
接下来,用蒸馏水冲洗灌注装置。待所有水排尽后,将灌注瓶悬挂于待灌注动物上方一米处,然后使用分子生物学级水稀释10x PBS,配制非无菌的1x PBS。用止血钳夹闭灌注装置的主线路,再用另一把止血钳夹闭PFA管路。
用 PBS 填充缓冲液容器后,将灌注装置的注射器端放入烧杯中以收集废液,并移除阻断主通路的止血钳。在 PBS 流经管路时,用力轻敲管壁以去除 trapped 的空气。当缓冲液和主通路中的所有空气均被排出后,通过在主通路上夹紧止血钳来阻断液体流动。
接下来,从PFA管路中移除止血钳,使PBS逆向流入PFA瓶中,同时轻弹PFA管路以排出其中的气泡。继续让PBS进入PFA管路,直至在瓶口上方可见液体,然后用止血钳夹闭PFA管路,阻止PBS继续流入PFA瓶。随后,将蝶形输液针连接至灌注注射器,并打开主路止血钳,使PBS流经管路,以排出灌注注射器中的气泡。
气泡去除后,关闭主通路止血钳。确保 PBS 瓶中的 PBS 体积约为其容量的 1/3。如有必要,可通过主通路冲洗 PBS,或向缓冲瓶中添加更多 PBS,直至达到其满容量的 1/3。
当 PBS、PFA 和主线路中的所有气泡均被排尽后,将室温下的 4% PFA 溶液加入 PFA 瓶中,直至液面达到瓶身的黑色标记处。接着,先用清水、再用 70% 乙醇清洁所需器械,以准备非存活性手术。将麻醉后的 C57 black 6J 小鼠固定于泡沫板上后,用皮肤镊提起腹部皮肤,并用大剪刀剪开腹壁,开始手术操作。
继续向上方沿腹部切开至肝脏,然后将肝脏从腹前壁分离,并继续向上方延长初始切口至膈肌。当切口到达膈肌时,使用精细解剖剪在膈肌上打一个小孔,沿小鼠右侧肋骨剪开,约至右侧腋窝的一半位置;随后在膈肌左侧做类似但更长的切口,几乎延伸至左侧腋窝。将胸壁翻折并用针固定于泡沫板上。
确定左心室后,使用精细弯头镊子轻轻夹住心脏以保持稳定,随后打开主路止血钳,使 PBS 流经针头,并立即用针头穿刺左心室。确保针头插入心室的深度不超过 0.5 厘米。接下来,将蝶形导管放置在聚苯乙烯泡沫上由两根较大的 18 号针头交叉形成的 X 形支架上。
辨认下腔静脉从肝脏穿出处,使用精细解剖剪将其剪断。继续用 PBS 灌注,直至从下腔静脉流出的液体无血液成分。随后迅速用止血钳夹闭 PBS 管路,打开 PFA 管路。让 PFA 灌注数分钟,直至小鼠尾部开始卷曲。
一旦尾部开始卷曲,立即启动50分钟计时器。50分钟后,用止血钳夹闭主输液管,并将针头从左心室撤出。随后,将小鼠放入标记好的容器中,置于4摄氏度的PFA溶液中固定过夜。
高质量灌注的标志是肝脏、脊髓和中枢神经系统深部结构中无血液残留。观察到的脑部血液位于颅骨与硬脑膜之间,因此并不影响灌注质量,也不提示灌注效果不佳。采用此灌注方法后检测α-突触核蛋白发现,与表达人源A53T突变型α-突触核蛋白的7月龄无症状小鼠相比,15.5月龄有症状小鼠中磷酸化α-突触核蛋白的累积量显著更高。
该结果与已有报道一致,即这些小鼠脊髓前角和中脑区域存在细胞病理学改变的富集现象。在暴露胸腔时,应注意避免切割任何腹腔器官。此外,灌注针头插入左心室时不可过深。
本研究介绍了一种便捷的重力灌注法,用于小鼠中枢神经系统的组织学分析。该方案展示了在帕金森病小鼠模型中磷酸化α-突触核蛋白的免疫荧光检测,并详细描述了经心灌注、组织解剖、冷冻、包埋和切片的各个步骤。
这种重力灌注方法为制备小鼠中枢神经系统组织以进行组织学分析提供了一种经济、便捷的途径,有助于在神经退行性疾病模型中实现靶点验证和生物标志物检测。通过实现对磷酸化α-突触核蛋白的可靠固定及后续免疫荧光染色,该方法提高了帕金森病病理学临床前研究的预测可信度。该技术通过降低设备门槛并保持组织完整性以用于后续分析,支持早期发现阶段的研究流程。
该方法通过支持神经退行性疾病机制的靶点验证、检测方法开发和临床前评估中的组织学制备,融入了发现研究的连续过程。