2022年2月3日
本文介绍了DNA纤维实验的两种改进方法,用于在诱导损伤后研究复制DNA中的单链DNA缺口。S1纤维实验利用特异性识别单链DNA的S1核酸内切酶来检测复制后缺口,而缺口填补实验则可用于可视化并定量分析缺口修复过程。
本方案为研究DNA损伤后复制过程的机制开辟了新的可能性。该技术能够检测与DNA损伤相对应的单链DNA缺口的形成与修复。S1核酸酶可切割单链DNA,从而实现对复制后缺口的检测。
该方法最初由巴西的 Dr.Meneghini 和 Dr.Cordiero-Stone 于 20 世纪 70 年代首次使用,最近我们将其改进并应用于 DNA 纤维实验。利用此处所述技术研究复制后缺口的形成与修复,有助于深入理解维持基因组完整性的 DNA 修复机制及复制应激反应机制。对于本文所描述的 S1 纤维实验和缺口填补实验两种方案,均必须包含所有对照,以确保数据解读的准确性。
该操作将由本实验室的博士生 Davi J. Martins 和曾在我课题组工作期间开发了这些技术的合作者 Annabel Quinet 博士进行演示。首先,吸除培养基,立即向细胞中加入含有 20 微摩尔 IDU 的培养基。将细胞在 37 摄氏度、5% 二氧化碳条件下精确孵育 20 分钟。
随后,用预热的PBS快速洗涤细胞两次,并用20焦耳/平方米的UV-C照射细胞。以未处理的细胞作为对照。立即向细胞中加入含有200微摩尔CldU的培养基,在37摄氏度和5%二氧化碳条件下精确孵育60分钟。
随后,用预热的 PBS 洗涤细胞两次,并根据细胞系在室温下用 CSK 100 缓冲液处理 2 至 10 分钟以进行透化。经 CSK 透化后,与透化前相比,可见细胞核几乎不含细胞质。洗涤时,小心沿每孔孔壁倾注 PBS,以清洗细胞核。
然后,用S1缓冲液洗涤细胞核。将细胞核分别在含有20单位/毫升S1核酸酶和不含S1核酸酶的S1缓冲液中,于37摄氏度孵育30分钟。接着,吸去S1缓冲液,并加入含0.1% BSA的PBS。
刮取细胞核并将其转移至一个大约标注为1.5毫升的离心管中。始终将离心管置于冰上。在4°C条件下,以约4,600 ×g离心5分钟。
将沉淀重悬于PBS中,浓度约为每微升1,500个细胞。将试管置于冰上,并立即进行DNA纤维制备的铺展操作。用碳素铅笔在显微镜载玻片上做好标记,并将其平放在托盘上。
轻弹管底以确保混匀,取2微升细胞加至相应载玻片顶部。加入6微升裂解缓冲液,上下吹打约5次以裂解细胞。用移液枪头将液滴轻轻向载玻片底部拉动,室温孵育5分钟,以裂解细胞核。
将载玻片倾斜约20至40度,使液滴以恒定的低速扩散至载玻片底部。在室温避光条件下干燥10至15分钟。随后,将载玻片浸入含有新鲜配制固定液的容器中,在室温下孵育5分钟,以将DNA固定在载玻片上。
用 PBS 清洗载玻片两次,每次五分钟,然后在室温下用新鲜配制的 2.5 摩尔盐酸变性 DNA 40 至 60 分钟。用 PBS 清洗载玻片三次,每次五分钟,再在 37 摄氏度下用预先温育的 5% BSA 封闭 30 至 60 分钟。轻轻拍打滤纸以去除载玻片上的多余液体。
将 30 微升一抗以滴加方式加入载玻片,盖上盖玻片。在避光、湿润的室温环境中孵育 1 至 1.5 小时。将载玻片放入盛有 PBS 的染色缸中浸泡 1 至 2 分钟,然后小心移除盖玻片。
用PBST在染色缸中洗涤三次,每次五分钟,然后将玻片置于PBS中。用纸轻轻拍打以去除多余液体,再向玻片上滴加30微升二抗。盖上盖玻片。
在避光湿润的室温环境中孵育45至60分钟。重复洗涤载玻片并除去多余PBS的步骤一次,然后将20微升封片试剂逐滴加至载玻片上。盖上盖玻片,避免产生气泡。
在载玻片顶部细胞裂解位置附近滴加一滴镜油。使用绿色通道,在背景中寻找绿色荧光点以找到焦平面。打开 Leica Application Suite 软件,点击采集(Acquire),并选择绿色通道。
在分析前先调整绿色通道的设置。然后切换至红色通道并调整设置。找到纤维的主要聚集区域,再移动至边缘位置,寻找分布良好、无重叠的单根纤维。
仅使用一个通道选择图片的区域,以避免潜在的偏差。单击“采集叠加”图标,并根据显微镜的正确放大倍数调整软件设置。每张切片在绿光通道下沿整个切片采集约15至20张图像,随后在红光通道下重复采集。
两个通道现已合并,生成的叠加图像被移至一个独立的文件夹中。可以观察到呈红色和绿色的纤维。打开 ImageJ 软件,左键单击第五个图标,选择第二个选项,然后选择“分段线”工具。
单击鼠标左键绘制红色或绿色纤维束的精确路径,单击右键停止绘制。按下键盘上的 M 键以测量长度。对于 S1 纤维,记录每根纤维的红色和绿色纤维束测量值,并从不同图像中至少 150 根纤维测量红色和绿色纤维束的长度。
这些代表性图像显示了一条S1纤维。此处展示的是对照组新生DNA片段,该片段无缺口且对S1核酸酶切割具有抗性。经S1核酸酶切割后呈阳性的含缺口DNA片段导致CldU片段长度变短。
可在文本手稿中广泛描述的差异标记方案用于标记缺口填补事件。在此称为缺口填补检测的实验中,较长的IDU轨迹若至少含有一个CldU斑块或含有较少的CldU斑块,则对应于低密度的缺口填补;而较短的IDU片段(至少含有一个CldU斑块)以及较长的IDU轨迹中含有较多CldU斑块的情况,则对应于高密度的缺口填补。
本方案中的透化步骤对于 S1 核酸酶作用于受损 DNA 复制过程中形成的缺口至关重要。S1 核酸酶也可用于彗星试验方案中,以检测经处理后仍持续存在的受损 DNA 复制过程中所形成的缺口。S1 纤维试验为一种新范式奠定了基础,即复制后缺口可导致癌症脆弱性,特别是在携带 BRCA1 和 BRCA2 基因突变的乳腺癌和卵巢癌中。
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本文介绍了DNA纤维实验的两种改进方法,用于在损伤诱导后研究复制DNA中的单链DNA缺口。S1纤维实验利用特异性识别单链DNA的S1核酸内切酶来检测复制后缺口,而缺口填补实验则可对缺口修复过程进行可视化和定量分析。
检测和定量复制后单链DNA缺口对于降低靶向基因组稳定性和DNA修复通路的早期发现项目的风险至关重要。采用S1核酸酶的改良DNA纤维实验可直接测量复制应激反应和修复动态,为肿瘤学及基因组维持相关项目的靶点验证和作用机制的确信度提供依据。该技术能力支持对DNA修复缺陷进行预测性评估,并为临床前研究中的风险调整型推进决策提供信息。
这种改良的DNA纤维实验已整合到基因组稳定性与肿瘤学项目的发现至临床前研究连续流程中。