噻虫嗪在小麦中的吸收、转运与分布测定

该方法有助于解答吡虫啉在小麦中的吸收、转运和分布过程。该技术的主要优势在于对吡虫啉检测具有高灵敏度，可广泛用于土壤、水体、植物及其他样品中吡虫啉的测定。为使小麦种子萌发，应选取1000粒籽粒饱满、胚部完整且大小均匀的适宜种子。

将种子浸入10%过氧化氢溶液中15分钟，以消毒其表面。然后用无菌水冲洗种子5次，每次10秒。现在，将小麦种子均匀铺放在含有湿润无菌滤纸的玻璃培养皿中，使胚部朝上。

将培养皿放入人工气候培养箱中，保持温度为30摄氏度、相对湿度为80%。在黑暗条件下培养小麦种子三天，直至其发芽并长出根系。小麦种子发芽后，将15株小麦幼苗放入含有100毫升半量Hoagland营养液的水培装置中。

然后，将整个水培装置置于人工气候培养箱中，在25摄氏度和80%相对湿度条件下培养七天。为建立两种不同浓度吡虫啉的农药暴露实验，准备含有半量霍格兰营养液并分别添加0.5毫克/升或5毫克/升吡虫啉的水培装置。每种吡虫啉浓度组设置15个水培装置，以确保取样时有足够的样本量。

现在，将经过七天水培期的15株小麦植株移栽至每个准备好的水培装置中。将整个水培装置置于人工气候培养箱中，在25摄氏度和80%相对湿度条件下培养三天。在吡虫啉暴露期间，每天采集植株的根部和叶片样本。

针对每个吡虫啉浓度，将15个水培装置中每五分之一的小麦样品整合为一个平行组。为从小麦根部提取吡虫啉，使用剪刀将小麦根剪碎成约一厘米长的片段。称取10克剪碎后的小麦根，放入50毫升离心管中。

然后，向离心管中加入10毫升乙腈，涡旋混匀1分钟，再向管中加入4克无水硫酸镁和1.5克氯化钠。立即涡旋混匀30秒。接下来，以6,000 G离心5分钟。

用一次性注射器吸除上清液，并通过0.22微米注射式滤器过滤，以获得样品。为了从小麦叶片中提取吡虫啉，使用剪刀将新鲜叶片剪成约一厘米大小的碎片。称取10克剪碎的小麦叶片，放入50毫升离心管中。

在50毫升离心管中，向10克切碎的小麦叶片加入10毫升乙腈，涡旋振荡1分钟。然后用无水硫酸镁和氯化钠处理混合物，并按先前所示方法进行离心。为去除样品中的色素和水分，取离心后所得上清液2毫升，加入含有石墨化炭黑和无水硫酸镁的5毫升离心管中。

涡旋振荡混合30秒后，将离心管在6,000 G条件下离心5分钟，随后用一次性注射器吸取上清液，并通过0.22微米注射式滤器过滤，以获得待测样品。按照论文中所述方法，采用液相色谱-串联质谱法对小麦样品中吡虫啉的含量进行定量分析。小麦样品中吡虫啉的回收率结果显示，暴露于0.5毫克/升及更低浓度吡虫啉的小麦根部和叶片中，吡虫啉的平均回收率相较于暴露于5毫克/升吡虫啉样品中的平均回收率有所降低。

即使在暴露一天后，小麦植株的根部和叶片中均检测到吡虫啉，表明其能迅速被植物吸收并传导。暴露第三天时，吡虫啉含量高于第一天，且根部中的吡虫啉浓度始终高于叶片。与对照组相比，即使在吡虫啉暴露三天后，也未观察到植株生长受到明显抑制。

处理样品中的根富集系数（RCF）大于1，表明小麦对吡虫啉具有富集作用。然而，叶片的转运系数（TF）小于1，说明该农药不易从小麦根部转移到叶片中。其中最关键的步骤是吡虫啉的提取与纯化。

确保在这些步骤中不会损失吡虫啉的提取量。