2023年2月3日
本方案描述了如何建立、维持、基因改造、分化、功能表征以及移植源自小鼠和人类原代组织的泪腺类器官。
利用泪腺类器官,可以研究特定基因如何调控泪腺的稳态。此外,类器官还可用于再生医学。成体干细胞来源的泪腺类器官技术的主要优势在于,能够培养和研究健康且未发生转化的泪腺上皮细胞。
这些类器官最终可用于治疗干眼症患者。首先准备实验所需的培养基和材料,然后在实验前将消化培养基的所有组分混合均匀。用该培养基预先润湿手术刀片,以防止组织碎片粘附其上。
从培养基中取出小鼠泪腺组织,放入培养皿中,用预先润湿的手术刀将其切碎。当组织块小于0.5立方毫米时,用手术刀将其从培养皿上刮下,并转移至含有消化液的15毫升离心管中。对于非常小的人类活检样本,可直接将其放入消化液中,无需切碎。
将含有组织块的15毫升离心管置于37摄氏度水浴中孵育最多15分钟。在此期间,用火焰将巴斯德吸管尖端拉细,并用基础培养基预润湿。为促进解离过程,每隔5分钟使用预润湿并拉细的巴斯德吸管将剪碎的组织上下吹打一次。
当在显微镜下观察到大量单细胞和少量小细胞团时,加入 10 毫升基础培养基以终止消化。在 400×g 离心 5 分钟后,弃去上清液,并将沉淀物重悬于 10 毫升基础培养基中,重复洗涤并再次离心收集细胞。通过 70 微米细胞筛过滤剪碎的混合物,以去除未消化的大块组织和残留的胶原纤维。
将洗脱液在400g下离心5分钟。去除上清液后,将细胞沉淀重悬于100微升冷的细胞外基质(ECM)中,用于单个小鼠泪腺;或重悬于50微升冷的ECM中,用于人活检组织,操作过程中避免产生气泡。使用P200移液器将每孔最多100微升细胞悬液接种至12孔悬浮培养板中,每孔形成约20微升的液滴。
将培养板倒置放入37摄氏度的加湿培养箱中,孵育20至30分钟,以使ECM凝固。待ECM完全凝固后,在12孔板的每个孔中加入约1毫升室温小鼠扩增培养基。新鲜配制1毫升含诱导泪腺类器官分泌的各组分的人类分化培养基。
在自动明场延时显微镜上,设置好培养板中需要成像的位置,时间间隔为五分钟,持续时间为四小时。确保每个位置均能完整看到整个细胞外基质(ECM)液滴。开始成像前,将待成像孔中的培养基移除,操作时不要将培养板从显微镜上移开,并立即替换为新配制的、充分重悬的人类分化培养基,其中包含佛司可林(forskolin)和去甲肾上腺素(noradrenaline)等化合物。
作为阴性对照,设置一个含有新鲜分化培养基的孔。点击显微镜上的运行按钮,并在四小时后分析结果。按照文中所述方法解离类器官后,弃去上清液。
将细胞重悬于80 µL电穿孔缓冲液中。在1.5 mL离心管中,制备实验所需的质粒。将质粒加入细胞中,通过上下吹打充分混匀。
根据打孔脉冲和转移脉冲的参数设置电穿孔仪。将含有质粒的细胞加入电穿孔比色皿中。立即测量电阻,电阻值应在 0.3 安培至 0.55 安培之间,并立即进行电穿孔。
完成后,将细胞转移至1.5毫升离心管中,并加入400微升含有Rho激酶抑制剂的电穿孔缓冲液。室温下孵育30分钟使细胞恢复。接着,在500×g离心5分钟以收集细胞沉淀。
弃去上清液后,将细胞接种于 200 µL ECM 中。待凝固后,加入小鼠扩增培养基。进行类器官制备时,需在移植前约三天对人泪腺类器官进行传代。
为了从细胞外基质(ECM)中分离类器官,将dispase加入培养基中,使其终浓度达到每毫升0.125单位,并使用P1000移液器充分重悬ECM液滴以将其打散。将培养板放回37摄氏度培养箱中孵育30分钟。用10毫升基础培养基重悬类器官,以洗去酶。
在400×g离心5分钟后收集细胞,将其重悬于50 µL含有5% ECM的冷的人类扩增培养基中。将类器官悬液置于冰上,并立即进行移植。对于小鼠原位移植,用胰岛素针头吸取类器官悬液。
当小鼠处于睡眠状态时,迅速将其侧放,使主泪腺暴露以便操作。将五微升类器官悬液直接通过皮肤注射至泪腺内。让小鼠恢复,并每日评估是否存在与移植相关的不适症状,尤其是眼部情况。
在分离小鼠泪腺后,通过酶消化和机械消化获得包括腺泡和导管在内的小块组织。在成功建立小鼠泪腺类器官的过程中,约500微米直径的囊状类器官在7天后出现。人泪腺类器官在组织分离后3至4天内形成囊状结构,并在10至14天内达到成熟大小。
分别在分化培养基中培养五天和七天后,小鼠和人类泪腺类器官变得更为致密。加入环磷酸腺苷激活剂佛司可林或神经递质去甲肾上腺素后,类器官在不到三小时内出现肿胀。在成功的电穿孔实验中,能够耐受潮霉素的类器官得以生长。
在分化前挑选出直径大于300微米的类器官克隆。针对向导RNA靶向的Pax6位点进行PCR扩增,所有选中的克隆均产生一条367个碱基对的条带。使用靶向Pax6的向导RNA,从测序的六个克隆中获得了一个纯合敲除小鼠泪腺克隆。
一些克隆生长良好,但部分类器官克隆在挑取后丢失或开始发生分化。在挑取的10个类器官克隆中,有7个生长良好。通过染色人源特异性标志物——人核仁抗原,证实了在将类器官注射到小鼠泪腺一个月后,类器官成功移植。
需要注意的是,避免对组织或类器官过度消化,否则可能导致细胞死亡,从而降低类器官的建立效率。泪腺类器官可通过组织学方法进行分析。
通过这种方法,可以深入了解它们的细胞组成。
本研究建立了一种从鼠源和人源组织中构建并维持泪腺类器官的实验方案。该类器官可用于探索影响泪腺稳态的遗传因素,并具有再生医学领域的潜在应用价值。
泪腺类器官系统能够在受控且与疾病相关的环境中,对腺体稳态和基因功能进行机制性研究。该平台有助于提高靶点验证和功能基因组学的预测可靠性,架起了眼部表面疾病早期发现与转化研究之间的桥梁。通过对小鼠和人类类器官进行操控、分化和移植,该工作流程可作为整个研究项目中生物学风险评估的可重复利用资源。
该类器官工作流程整合了从早期发现到先导化合物鉴定及临床前验证的全过程,支持眼生物学领域的机制研究和转化研究。