2023年10月20日
分离的外周血单个核细胞可用于免疫功能和免疫相关疾病、代谢性疾病或线粒体功能的研究分析。本文中,我们描述了一种从全血中制备外周血单个核细胞(PBMCs)并进行后续冷冻保存的标准方法。冷冻保存使得实验在时间和空间上具有独立性。
通过该方法,我们旨在描述一种适用于冻存外周血单个核细胞(PBMCs)的实验流程,使其在解冻后生物能量学参数保持不变。细胞冻存的主要实验挑战之一在于,冻融过程可能对PBMCs造成损伤,从而影响后续的生物能量学检测结果。本实验方案致力于提供一种可靠保存PBMCs的方法,避免细胞受损,从而确保所测得的生物能量学参数不受干扰。
保存PBMCs的可能性使得样本可以从不同中心收集,并在同一个地点进行检测。这还使检测在时间上更具独立性。PBMCs的冷冻保存使得在多个采集并保存细胞的地点可同时开展研究。
随后可对收集的样本进行集中检测。这可以简化研究的流程与规划。首先,向无菌的50毫升锥形管中加入8毫升DPBS。
向其中加入 8 mL 血液,并使用一支 3 mL 塑料巴斯德吸管充分混匀内容物。在另一支锥形管中加入 15 mL 淋巴细胞分离液,将管子倾斜 20 至 30 度。
然后,使用一支三毫升的巴斯德吸管,将血液与DPBS混合液轻轻加至分离介质上方,形成第一层。将剩余混合液沿离心管管壁小心地叠加上去。缓慢将离心管竖直,使剩余血液叠加在已形成的血液层上。
将离心管置于水平转子中,于室温下以 1,000 G 离心 10 分钟,离心时关闭刹车。血液/外周血单个核细胞混合物将分为四层。用巴斯德吸管移除上层血浆的 2/3,然后用 1 毫升移液器收集外周血单个核细胞(PBMCs)。
将PBMCs转移至一个新的50毫升离心管中,直至收集完整个细胞层。随后,用DPBS补足体积至25毫升,以去除残留的分离液及其他杂质。在室温下,以100 ×g离心10分钟,离心时开启刹车。
然后,用真空泵吸去上清液。接着,用一毫升 DPBS 重悬沉淀,并加入更多 DPBS 至总体积为 25 毫升,以洗涤并重悬沉淀。将冻存容器冷却至 4 摄氏度。
然后,将胎牛血清置于冰上。用一毫升胎牛血清重悬含有分离出的外周血单个核细胞的细胞沉淀。接着,按1:5的比例在冰上将DMSO与冷却的血清混合。
使用每个收集管对应一支标记好的2毫升冻存管,将细胞悬液转移至冻存管中。使用自动细胞计数仪测定细胞数量和细胞活力。用1毫升移液器向管中加入1毫升DMSO/FBS混合液。
然后,将试管放入预冷的冻存盒中,将冻存盒置于零下80摄氏度的冰箱中冷冻24小时。次日,从冰箱中取出试管,储存于液氮的气相中。
细胞计数和活力在冻存前后保持一致,表明分离和保存成功。
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本文介绍了一种用于制备和冷冻保存外周血单个核细胞(PBMCs)的标准化方法。该方案旨在维持细胞解冻后的生物能量学参数,确保在免疫功能研究中获得可靠的测量结果。
可靠的外周血单个核细胞(PBMC)冷冻保存及生物能量学评估可实现一致性的多中心样本采集和集中化分析,从而应对转化研究中的物流与时间挑战。该方法支持高可信度的线粒体功能评估,对代谢性疾病和衰老研究至关重要。标准化的PBMC操作流程可提高早期发现及生物标志物研究中的预测价值和项目决策能力。
该方法整合了从早期发现到转化研究的全过程,能够对多中心临床研究中的外周血单个核细胞(PBMC)线粒体功能进行集中分析。