大鼠股骨头无张力负重型激素性骨坏死模型

我们主要开发了用于负重干预的大鼠模型，以研究负重运动对股骨头坏死的影响。目前，大多数模型均为非负重模型。然而，股骨头坏死的进展可能与负重运动相关。

实际上，让大鼠在休息时保持固定非常困难，因为多种固定方法会严重限制其活动，从而使其难以达到负重训练的目的。开始适应性训练时，首先将大鼠放入不透明的笼子中，并将其放置在尽可能远离非模型大鼠的位置，确保其他大鼠处于其最大可视范围之外。

打开电源，将跑步机设置为每分钟10米的速度，坡度为0度。将大鼠放置在跑步机上，确保其运动尽可能轻柔，以避免产生应激反应。15分钟训练结束后，清理大鼠留下的粪便和尿液。

用酒精喷洒跑步机以消除动物气味。持续训练所有动物一周。准备两支试管、一个挂钩和一个长约80厘米的环扣固定带。

将钢球放入试管中，确保试管、挂钩和环扣的初始总重量为150克。准备以10克为增量、总重量不同的试管，最大重量为350克。现在戴上手套，用手固定住大鼠。

将绑带的钩面和毛面固定在大鼠背部，距离中线约一厘米处。从较轻的重量开始，逐渐增加管状重物的重量，直至大鼠在受到刺激或实验者离开时无法站立。然后将重量减少10克，使大鼠能够站立。

该重量代表大鼠的最大负重能力。准备负重时，首先使用一根1至1.5米长的弹性治疗胶带固定固定物。用黏土调节试管的重量，以减少负载的摆动。

称量离心管和固定物体后，向离心管中加入适量黏土，调节至目标重量。然后使用玻璃搅拌棒将离心管内的黏土均匀铺开。若黏土集中于离心管一端，可能在训练过程中导致其容易脱落。

将调整后的试管和黏土的总重量设定为大鼠最大负重能力的50%。为建立激素诱导的股骨头骨坏死（steroid-induced osteonecrosis of the femoral head，SONFH）模型，使用白化大鼠。每隔24小时，向大鼠腹部中线腹腔注射脂多糖。

末次脂多糖注射后，在规律喂养后每隔24小时向另一侧单侧臀肌注射甲基泼尼松龙。随后，在大鼠背部中线两侧各1至2厘米处做标记，作为负重的参考点。确保标记位置适当，以防止大鼠在跑台训练期间发生倾倒或活动受阻。

现在在另一位研究人员的协助下，戴手套的手握住大鼠。一只手置于大鼠腋下，固定其前肢和下颌；另一只手固定后肢和尾巴。

将弹性治疗胶带无张力地粘贴在试管上，以固定大鼠背部的负载。请第二位研究人员将试管平行于大鼠脊柱方向固定在大鼠背部。为尽量减少大鼠的痛苦，应在无张力状态下完成固定。

将装有适当配重的试管粘贴到弹性治疗胶带上，然后用无张力技术将试管缠绕固定在大鼠体表。将大鼠置于开放空间或单独笼具中，观察其呼吸状况和行动方向。

如果大鼠呼吸急促或张口，应立即释放。理想的固定状态应允许大鼠自由活动，并能进行饮水、抬起前肢和进食等行为。若固定效果不理想，20分钟后应释放并重新固定。

接下来，打开跑步机，将速度设置为每分钟1米，坡度为0度。轻轻将大鼠转移到跑步机上，并开始计时。如果大鼠无法完成30分钟的训练，则将其放入笼中休息10分钟，期间不要移除固定装置。

训练结束后，清理大鼠留下的粪便和尿液，并喷洒酒精以消除动物气味。操作动物时应尽可能轻柔，防止动物发出叫声，避免对其他大鼠造成创伤性应激。训练完成后应立即解除大鼠的固定。