2025年5月2日
RAS病是一类由RAS-MAPK信号通路过度激活引起的多系统遗传综合征。随着大量潜在致病变异不断被发现,亟需对其进行功能验证,然而临床前证据的缺乏限制了治疗策略的开发。本文中,我们描述了一种在Teen-报告基因斑马鱼中通过活体FRET成像检测RAS病相关ERK活化水平及其在胚胎发育过程中药物调控作用的体内实验方案。
我们构建斑马鱼复杂发育性疾病的模型,将患者测序数据与功能基因组学相联系,以支持变异解读以及临床前药物测试。尽管FRET传感器已有改进,但仍缺乏具有足够时空敏感性的稳健体内检测方法,用于检测Ras-MAPK信号通路的细微致病性变化。首先,将含有模制2%琼脂糖的定制显微注射板置于E3培养基中,并放置于工作平台上。
将受精的斑马鱼胚胎按适当的位置排列并固定在培养板的加样槽中,以限制其在显微注射过程中的移动。使用微量移液器向注射针头后部加载 2 µL 注射材料。根据显微注射装置上针头和胚胎的质量,调节压力和时间参数,以校准每次注射条件。
将溶液注射到斑马鱼胚胎的单细胞期。在受控的饲养条件下培养显微注射后的胚胎。在受精后三小时内清除任何呈现浑浊或退化迹象的卵。
受精后约4小时,使用标准荧光体视显微镜,在465至500纳米波长范围内观察胚胎的荧光报告基因表达。筛选出荧光阳性的幼鱼用于FRET成像,将阴性同胞幼鱼保留用于免疫组织化学分析。
将数量相等的胚胎分组放入六孔板的不同孔中。开始处理时,将胚胎浸入含有溶剂对照(DMSO)或稀释后的MEK(目标浓度)的3毫升E3培养基中。首先,在ThermoMixer中将1.5%至2%的低熔点琼脂糖 aliquot 在50摄氏度下融化。
溶解后,将温度降至约 30 摄氏度。将一枚注射过的 teen positive 胚胎置于 35 毫米玻璃底培养皿中央,用于活体成像。吸除多余的 E3 培养基,加入一滴低熔点琼脂糖以固定胚胎。
在室温下使琼脂糖聚合。在采集图像前至少一小时打开培养箱控制器,并将温度设置为28摄氏度,以维持胚胎的健康状态。待培养箱温度稳定后,将含有胚胎的成像培养皿放置在样品支架上,使用10倍干镜物镜观察样品。
打开氩离子激光器,并将激光功率调节至50%。在硬件设置中,选择8位深度分辨率以采集图像。接着,在采集面板中选择光谱检测xy、gamma、lambda、z扫描模式,设置图像格式为512×512像素,扫描速度为400赫兹,光学放大倍数为0.75。激活氩离子激光器的458纳米激光线,并将其强度值设为8.5%。然后选择混合探测器,并将其灵敏度设置为增益值500。
在检测器栏中打开下拉菜单,选择青色荧光蛋白或ECFP发射曲线。如需显示YPET发射曲线,请激活第二个检测器,然后选择黄色荧光蛋白YFP发射曲线。
开始实时采集时,将检测光标置于YFP信号最强的范围内以观察样品。在Z-Stack LASX窗口中设置样品厚度的起始和终止位置。将伽马扫描范围的检测属性设置为从460纳米开始,至570纳米结束。
将检测带宽定义为5纳米,扫描步长设为5纳米。开始z轴层扫描采集。在配置窗口的染料数据库中插入并保存CFP和YFP的两种经调整的参考发射光谱,以排除光谱串扰。
从成像会话中选择生成的光谱图像文件,并打开处理窗口。接着,在染料分离工具中选择光谱染料分离,并配置染料分离的设置。在对话框左侧的下拉列表中,第一个位置选择新的CFP发射光谱,从光谱数据库中选择新的YFP发射光谱。
在图像的伽马扫描中,确定信号强度最大的图像。然后沿 z 轴扫描选择光学切片,以突出显示边缘区感兴趣区域。在动物极的边缘区激活 ROI 选择模式,以定义具有最佳光谱的区域。
在显示窗口中单击 ROI 十字准线,并在测量区域将参考 ROI 的大小调整为 40 个体素。打开新生成的包含两个分离通道的文件。使用最大强度投影法,从三维图像序列生成二维投影图像。
在“处理”窗口中,选择裁剪以将通道分离为两个独立的文件,即通道一和通道二。在“处理”窗口中,选择“合并图像”,然后选择通道二文件并将其插入第一个选项中。接着选择通道一文件并将其插入第二个选项中。
设置一个缩放因子为五的重缩放,并选择比值运算。单击“应用”以生成包含比值度量图像的新文件。保存该文件以进行数据分析。
将光谱成像和染料分离的图像文件导入开源的 Fiji 软件进行分析。在 Fiji 中使用“分析”和“设置测量”功能来配置读数测量参数。选择面积、积分密度和平均灰度值作为感兴趣的参数。
使用工具栏中的多边形选择工具,选中与原肠胚边缘相对应的兴趣区域。依次点击分析、工具和ROI管理器,以保存该ROI的xy坐标信息。如需对选定的ROI进行测量,请点击分析并选择测量。
在工作表中按实验分组列排列每个 ROI 的 CFP 比值 FRET 值,原始数据以行排列。对于单个生物学重复,创建一个包含一个分组变量的列联表,每组由一列定义。在原肠胚形成结束时,将胚胎浸入用 PBS 配制的 4% 多聚甲醛中,在室温下固定 20 分钟。
固定后,用 PBS 多次洗涤胚胎。使用移液枪将胚胎置于含有新鲜 PBS 的 12 孔板的一个孔中,并使其呈侧向排列。使用体视显微镜,配备 2.7 倍放大倍率的物镜、0.63 倍扫描物镜和 8.6 倍变焦系数,在明场模式下采集图像,以评估是否存在椭圆形结构。
将捕获的胚胎图像导入 Fiji 软件。为测量胚胎各轴的长度,从工具栏中选择直线工具,然后点击分析,接着选择测量。完成选定的测量后,将其添加到 ROI 管理器列表中,并保存 ROI 文件。
将数据导出至工作表中。通过将长轴长度除以短轴长度来计算轴长比。计算不同重复组的平均值、平均值的标准偏差或平均值的标准误差。
我们在斑马鱼中建立的活体FRET检测流程能够早期敏感地检测致病性ERK信号通路的激活,有助于基因变异的功能解析以及MEK抑制剂疗效的测试。
查看完整文字稿并访问数千部科学视频
本研究介绍了一种利用斑马鱼的体内实验方案,通过活体FRET成像技术来研究与RAS病相关的ERK激活水平。该方法旨在验证致病性变异体,并评估在胚胎发育过程中药物对通路的调节作用。
在斑马鱼体内快速评估ERK活性调控,可实现RAS病相关变异体的早期功能性验证,直接支持罕见病研究管线中的靶点验证和机制去风险化。该方案结合活体FRET成像与免疫荧光技术,提供定量且可重复的输出结果,对药理学调节剂的临床前评价至关重要。这一可扩展的方法提高了预测可信度,加速了遗传病研究中变异体的优先级筛选,推动项目组合的进展。
本方案通过实现斑马鱼胚胎中实时测量ERK活性并进行药理学测试,架起了早期发现与临床前验证之间的桥梁。