2025年5月16日
本实验方案描述了拟南芥(Arabidopsis thaliana)种子中完整胚乳细胞层样品的制备方法。该方法仅需常规实验室设备,如注射针和精密镊子,即可实现对发育中和成熟种子胚乳细胞的高分辨率荧光活细胞成像。
我们的研究领域之一是种子科学。我们旨在解答胚乳如何影响种子萌发这一科学问题。一种名为种子生长抑制试验的体外检测方法,揭示了胚乳在种子萌发过程中的生理重要性。拟南芥种子非常微小,其胚乳细胞层位于种皮(testa)下方,即细胞内部。在不进行化学固定的条件下制备胚乳样品具有较大挑战性。以往对胚乳的研究分析均采用化学固定的样品,因此无法观察活体蛋白的动态变化。本实验方案可实现对胚乳细胞动态过程的五维细胞成像。该方案仅需使用常规实验室设备,即可深入探究胚乳细胞间的细胞事件、分子机制及其正常功能。
[旁白] 首先将拟南芥植株种植于土壤或岩棉中,直至开花阶段。用彩色线标记完全开放的花朵,以指示开花后零天。选择开花后12至16天的角果用于下一步操作。使用精细剪刀在果柄处剪下标记的发育中角果,并将其收集到1.5毫升离心管中。准备湿润的滤纸用于解剖,以防止样品干燥,并将样本置于体视显微镜下。使用两把镊子,一把尖端较粗用于固定,另一把尖端尖锐用于撕开。从果瓣与果柄连接处(replum)分离出一个果瓣。然后使用闭合尖端的镊子,轻柔地从角果中夹取发育中的种子,避免损伤。使用27号注射针头,在包围胚的种皮(testa)和胚乳(endosperm)上制造一个约0.1至0.2毫米大小的切口。用镊子夹住种子,注意不要压碎,并在子叶与胚根交界处进行划痕。接着,用镊子轻轻挤压种子,将胚推出,注意不要压碎空的种皮囊,并保持其圆形形态。将注射针头从切口插入空的种皮囊内,并由内向外穿刺。随后保持针头位置不动,用闭合尖端的镊子刮擦种皮表面。然后剪开种皮囊的一侧,使其能够展开。现在使用尖头镊子将种皮囊展开成片状。分离后的样品应为由胚乳和种皮组成的双层片状结构。将干燥的拟南芥种子放入1.5毫升离心管中,加入1毫升双蒸水。在室温下浸泡种子至少40分钟。在体视显微镜载物台上准备一张湿润的滤纸用于解剖,使用1000微升移液器将吸胀后的种子转移至湿润滤纸上。将样品置于体视显微镜下观察。使用注射针头在包围胚的种皮和胚乳上制造一个约0.2毫米大小的切口。用镊子夹住种子,避免压碎,并在子叶与胚根交界处进行划痕。随后用镊子轻压种子,将胚推出。避免压碎空的种皮囊,保持其圆形形态。使用注射针头切割空种皮囊的上下两侧,将其塑造成圆柱形。接着沿圆柱形种皮囊的中心轴剪开,将其分为两部分。最终应得到由胚乳和种皮组成的双层片状结构。将分离出的胚乳样品以片状置于载玻片上,并用水封片。最后,轻轻盖上盖玻片,确保胚乳层朝上贴近盖玻片。使用指甲油或封片胶密封盖玻片边缘,防止干燥,然后在显微镜下观察样品。利用既定的制备方案,成功观察到开花后14天收获种子中的大量胚乳细胞及其细胞内结构。在白光条件下,表达PHYB-GFP的胚乳细胞核内检测到光体(photo bodies),证实其存在及核内定位。在交替红光与远红光照射下,胚乳细胞表现出可逆的光体形成,证实PHYB具有光可逆性及生物学活性,至少可持续至解剖后4.5小时。对种子抑制3小时后完整胚乳细胞中的线粒体进行荧光延时成像,检测到线粒体运动。在种子抑制1天后,胚乳细胞中观察到更活跃的线粒体运动,表明其活性随时间逐渐增强。
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本研究探讨了拟南芥(Arabidopsis thaliana)种子中完整胚乳细胞层的制备方法,揭示了其在种子萌发过程中的关键作用。利用常规实验室设备,本方案可实现对发育中和成熟种子胚乳动态的高分辨率荧光活细胞成像。
对拟南芥种子中完整胚乳层进行高分辨率活细胞成像,能够直接观察蛋白质定位和细胞器动态,解决了植物发育生物学中的一个关键难题。该技术能力有助于在聚焦种子生理学和分子功能的早期发现流程中实现机制层面的风险降低和预测信心提升。本方案依赖常规实验室设备,增强了企业研发团队在实验可及性和可重复性方面的优势。
该方案可融入从基于假设的靶点验证到植物系统中临床前模型开发的整个发现流程。