24. Februar 2011
Übung ist in der Lage die Apoptose in Immunzellen. Es gibt verschiedene Mess-Beschränkungen, insbesondere in Bezug auf die benötigte Zeit zu isolieren und zu behandeln, eine Blutprobe vor der Bewertung. Nachgewiesene ist eine schnelle und minimal-invasives Verfahren für die Analyse von belastungsinduzierten Lymphozyten Apoptose.
Hallo, ich bin James Volta vom Exercise Science-Programm der Abteilung für Kinesiologie, Freizeit und Sport an der Western Kentucky University. Wir werden Ihnen den von uns entwickelten und angewandten Versuchsablauf zur Messung der Apoptose von Lymphozyten nach körperlicher Belastung vorstellen. Schauen wir uns das genauer an.
Eine Blutprobe aus dem Finger wird unter Anwendung allgemeiner Vorsichtsmaßnahmen durch einen Fingerstich entnommen. Die Fingerspitze wird desinfiziert und anschließend punktiert. Der erste Blutstropfen wird abgewischt, danach wird das Blut in Kapillarröhrchen oder Mikrogefäße aufgenommen.
10 Mikroliter Vollblut wurden in ein Antikörperfeld pipettiert, das für die Durchflusszytometrie geeignete Fluorochrome enthält, darunter Annexin V, Seven Aminoactin D, entweder CD4, CD8 oder CD19 sowie CD45ra. Zusätzlich wurde eine Kontrollprobe mit Zellen allein verwendet. Als Kontrolle zur Einstellung unserer Experimente haben wir Kompensationsperlen eingesetzt. Die Probe wird gründlich durch Vortexen gemischt und anschließend 30 Minuten bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Nach der Inkubation werden die Proben 10 Minuten lang zentrifugiert und danach in einer einzigen Bewegung dekantiert.
300 Mikroliter Puffer zur Lyse roter Blutkörperchen werden hinzugegeben und die Proben gründlich verwirbelt. Es ist sehr wichtig, dass die Probe und der Lysepuffer gründlich vermischt werden. Um eine maximale Entfernung roter Blutkörperchen zu ermöglichen, werden Sie bemerken, dass Ihre Probe trüb wird.
Doch nach mindestens 15 Minuten Inkubation bei Raumtemperatur wird die Lösung klar, da die roten Blutkörperchen lysiert sind. Anschließend werden 300 Mikroliter gepufferte Phosphatlösung hinzugefügt, die als Stopplösung dient, um die Lyse-Reaktion zu beenden. Danach werden die Proben erneut 10 Minuten lang zentrifugiert. Beachten Sie, dass nach dem Zentrifugieren ein Zellpellet am Boden des Reaktionsgefäßes zurückbleibt. Gießen Sie die Überstände in einer fließenden Bewegung ab und wirbeln Sie den Pellet gründlich im Vortex um, um die Zellen in der Lösung erneut aufzuschwemmen.
Und Ihre Probe ist bereit, durchflusszytometrisch analysiert zu werden. Hier zeigen wir repräsentative Forward- und Side-Scatter-Diagramme mit Gating in Lymphozyten-Subfraktionen sowie die Identifizierung von Annexin-V-positiven Zellen innerhalb dieser Teilpopulation. Wir haben somit die Methodik beschrieben, die wir zur Bestimmung der durch körperliche Aktivität induzierten Lymphozyten-Apoptose verwenden, und sind der Ansicht, dass diese Methodik noch zahlreiche weitere Anwendungsmöglichkeiten bietet.
Es kann tatsächlich verwendet werden, um jeden Typ von weißen Blutkörperchen zu untersuchen, nicht nur Lymphozyten und deren Subfraktionen. Außerdem kann es zur Messung jedes Markers eingesetzt werden, der sich auf der Außenseite der Zelle befindet. Wir sind daher der Ansicht, dass dieses Verfahren breitere Anwendungsmöglichkeiten bietet.
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Diese Studie stellt ein schnelles und minimalinvasives Verfahren zur Analyse der durch Bewegung induzierten Lymphozytenapoptose vor. Die Forschung unterstreicht die Auswirkungen von körperlicher Aktivität auf die Apoptose von Immunzellen und behandelt Messgrenzen im Zusammenhang mit der Verarbeitung von Blutproben.
Die schnelle Beurteilung der durch körperliche Betätigung induzierten Lymphozytenapoptose adressiert eine zentrale Herausforderung in der Immunologieforschung: die Unterscheidung echter biologischer Effekte von Artefakten, die durch verzögerte Probenaufarbeitung entstehen. Diese Methodik ermöglicht eine genauere Messung der Dynamik von Immunzellen und unterstützt die Validierung von Zielstrukturen in der Sportphysiologie und Immunpharmakologie. Durch die Minimierung der Aufarbeitungszeit und des Probenvolumens verbessert sie die Datenzuverlässigkeit für mechanistische Studien zur Immunmodulation.
Diese Methode fügt sich in die Entdeckungskontinuum von der Hypothesenprüfung bis zur Zielvalidierung ein, insbesondere in Programmen der Immunologie und der Trainingsphysiologie, bei denen der Zelltod von Immunzellen als mechanistischer Endpunkt dient.