11 de diciembre de 2009
Neurexinas y neuroliginos son las neuronas de membrana las proteínas de adhesión que realizan funciones esenciales en la diferenciación sináptica y la transmisión. Neuroligina mutantes deficientes de C. elegans Son defectuosos en la detección de la fuerza osmótica, pero cuando, además, contienen una mutación en el gen que codifica neurexin, recuperan el fenotipo de tipo salvaje.
Hola, mi nombre es Manuel Ruiz Rubio, del Departamento de Genética de la Universidad de Córdoba en España. Estamos utilizando *C. elegans* como herramienta experimental en el estudio del autismo, aprovechando el sistema nervioso completamente caracterizado de este nematodo. Estamos estudiando mutantes del nematodo afectados en genes implicados en la sinapsis neuronal y que se han relacionado con el autismo.
Las neureginas son moléculas de adhesión de membrana presentes en la sinapsis. La cabeza de C. elegans contiene el amfídico, un órgano sensorial del nematodo que media respuestas a diferentes estímulos, incluyendo la fuerza osmótica. El amfídico está compuesto por 12 neuronas sensoriales bipolares con dendritas ciliadas y un axón terminal presináptico.
Dos de estas neuronas, llamadas ASHR y ASHL, son particularmente importantes en la función sensorial osmótica, ya que detectan repelentes solubles en agua con alta fuerza osmótica. Aquí se presenta un método basado en un anillo de fructosa para medir la evitación osmótica en mutantes del C. elegans con defectos en la sinapsis.
Para evaluar las implicaciones de la neurexina y la neuroligina en la evitación de alta fuerza osmótica, informamos la respuesta diferente de C. elegans frente a mutantes defectuosos en los genes nrx-1 y nlg-1 utilizando un método basado en una solución de fructosa cuatro molar. El día del experimento, prepare una solución stock de fructosa cuatro molar con 1% de rojo de Congo y disuélvala completamente a temperatura ambiente. Dibuje un anillo de un centímetro de diámetro sobre la placa de NGM, trazado en el centro del medio sólido.
Utilizando 15 microlitros de la solución roja de fructosa cuatro molar. Deje que la fructosa se absorba en el agar durante aproximadamente cinco minutos. El experimento debe realizarse de forma ciega. La placa con cada cepa que se va a analizar debe ser etiquetada por un segundo experimentador.
El SA se realiza utilizando estas marcas que se obtienen sin solicitarlas. Cuando el experimento haya terminado, aproximadamente 24 horas antes de llevar a cabo la prueba, es necesario seleccionar cuatro larvas de cada genotipo y transferirlas a una placa AFL NGM que contenga bacterias e coli, manteniéndolas a 20 grados Celsius durante el día siguiente. El experimento debe iniciarse con adultos jóvenes.
Coloque un gusano individual de cada cepa dentro del círculo de reposo y siga a cada animal para cronometrar su respuesta al obstáculo de tic. Se deben utilizar 10 animales de cada cepa y realizar al menos tres experimentos por réplica para obtener un resultado concluyente. Aquellos que eviten el anillo rojo seis veces seguidas se clasifican como normales.
Aquellos que salen del anillo en menos de seis intentos se consideran defectuosos en el control de la sensibilidad al ósmosis; se debe utilizar una cepa de control en cada SA Bristol, y se emplean dos animales como controles positivos porque evitan la barrera del anillo. Las cepas de control responden moviéndose hacia atrás cuando encuentran una barrera osmótica compuesta por fructosa cuatro molar. Los mutantes deficientes en neuro carecen de un comportamiento similar a estos respecto a un tipo de intensidad.
Sin embargo, los mutantes deficientes en NEUR no lograron detectar esta barrera osmótica. Los dobles mutantes en distintos alelos de neur y nlg recuperaron el fenotipo silvestre, respondiendo a la fuerza osmótica para obtener gusanos descendentes. Mediante alimentación con interferencia de ARN, se aíslan colonias de E. coli cepa HD11, una cepa que ha sido transformada con el vector L4440 que contiene un fragmento correspondiente al gen diana. Al día siguiente, las bacterias se aíslan en placas LBA o con canamicina.
Seleccione una colonia de bacterias e inocule medio líquido LV. Incube durante aproximadamente siete horas con agitación a 37 grados. Coloque una gota de este cultivo sobre una placa NGM con cubierta de carbonato y IPTG, y espere durante la noche a temperatura ambiente, permitiendo que las bacterias crezcan e inicien la inducción de la expresión del fragmento del gen diana.
Es necesario utilizar un control positivo y un control no negativo para el experimento de interferencia por ARN. Experimentos de alimentación. El control negativo es igual.
La cepa I HT 11 cinco transformada con el vector TL 44 40. Los controles positivos ELI HT 11 cinco células transformadas con el vector L 44 40 que contiene una secuencia del gen 22. La interrupción de este gen origina un fenotipo de temblor fácilmente distinguible bajo el microscopio estéril.
El primer día. Cuatro estadios L1 procedentes de PLA NGM con bacterias se transfieren a una placa con bacterias y Kuwait a 20 grados Celsius durante 12 horas. Este es un período de ayuno.
Al día siguiente, transfiera el adulto joven rápido a una placa inoculada con bacterias que expresen el gen específico diana de interferencia por ARN. Incube aproximadamente 48 horas a 20 grados Celsius para obtener la progenie F1. Luego, seleccione algunos adultos F1 y transfiéralos a otra placa inoculada con las mismas bacterias durante los dos días siguientes.
Seleccione y aísle adultos jóvenes de la progenie F2, identificando los fenotipos de la cepa silvestre Bristol N2 grasa con bacterias, ocurriendo empatía. El vector L4440 iba hacia atrás cuando estaba bien. La barrera osmótica.
La cepa de tipo salvaje Bristol alimentada con bacterias que expresan un fragmento del gen neur de C. elegans no logró detectar las soluciones osmóticas. Sin embargo, el mutante deficiente en neur, incapaz de detectar la barrera osmótica, recuperó esta capacidad cuando se alimentó con bacterias que expresan un fragmento del gen nlg-1 de C. elegans. En este video, mostramos un método sencillo que permite estudiar el efecto de los genes que afectan la respuesta de evitación osmótica en C. elegans.
Se utiliza un anillo de fructosa formal apretado con rojo Congo para analizar la respuesta del gusano a la fuerza osmótica. Los mutantes deficientes en neurologina presentan defectos en esta respuesta; sin embargo, los mutantes NU no tienen dificultades para detectar el estrés osmótico, mostrando una respuesta similar a la cepa silvestre. Este video muestra que las cepas dobles mutantes que portan diferentes alelos nulos en los genes de entrada y liberación recuperan el fenotipo de tipo silvestre al responder a la fuerza osmótica.
Estas observaciones se confirmaron mediante interferencia de ARN, utilizando un enfoque de silenciamiento por alimentación. De este modo, la cepa silvestre mostró déficits en el reconocimiento de la barrera osmótica cuando se alimentó con bacterias que expresaban la secuencia correspondiente del gen ING. Por otro lado, los mutantes defectivos en neur, que son incapaces de detectar la solución de fructosa más concentrada, recuperaron este comportamiento cuando se alimentaron con bacterias que expresaban la secuencia correspondiente del gen NNU.
Los resultados mostrados en este experimento indican que nrx-1 y nlg-1 podrían estar involucrados en la conexión sináptica de las neuronas sensoriales del nematodo y también que interactúan entre sí de una manera que afecta la función sináptica. Bien, adiós y buena suerte con sus experimentos.
Vea la transcripción completa y acceda a miles de videos científicos
Las neurexinas y neuroliginas son proteínas de adhesión membranal cruciales implicadas en la diferenciación y transmisión sináptica. Este estudio investiga el papel de estas proteínas en C. elegans, centrándose especialmente en mutantes deficientes en neuroligina y su capacidad para detectar la fuerza osmótica.
Este estudio establece a C. elegans como un modelo genéticamente manipulable para investigar moléculas de adhesión sináptica relacionadas con los trastornos del espectro autista, lo que permite la validación temprana de objetivos mediante fenotipos conductuales cuantificables. Al vincular los ortólogos nrx-1 y nlg-1 con la evitación osmótica —una respuesta cuantificable del circuito neuronal—, este enfoque apoya la reducción mecanicista de riesgos en las interacciones neurexina-neuroligina dentro de las vías de procesamiento sensorial. El ensayo proporciona una plataforma escalable y reproducible para evaluar modificadores genéticos de la función sináptica antes de invertir en modelos mamíferos.
El ensayo se integra en los flujos de trabajo de descubrimiento temprano en los que la perturbación genética de genes sinápticos se asocia con salidas cuantificables de circuitos neuronales, lo que orienta las decisiones de continuar o descartar antes del cribado de compuestos o la validación en mamíferos.