19 de abril de 2011
Un método simple y eficiente para transformar Physcomitrella pantens Protoplastos se describe. Este método es una adaptación de los protocolos para Physocmitrella Protonemal protoplastos y Arabidopsis Mesófilo de transformación de protoplastos 1.
El objetivo general de este procedimiento es transformar protoplastos de SCO Metre. Esto se logra primero digiriendo las plantas con Drizly. A continuación, los protoplastos se lavan con manitol para eliminar el Drizly y luego se incuban con ADN y PEG.
Finalmente, los protoplastos transformados se siembran en placas e incubarán. En última instancia, se pueden obtener resultados que muestren protoplastos transformados expresando proteínas marcadas con fluorescencia mediante microscopía de fluorescencia. Quien demostrará el procedimiento será Y. Lu, un posdoctorado de mi laboratorio.
La principal ventaja de esta técnica es que es eficaz y genera de forma constante protoplastos que expresan la proteína de interés. Para aislar protoplastos de musgo, comience añadiendo nueve mililitros de manitol al 8 % en una placa de Petri utilizando una espátula. Coloque musgo de cinco a siete días de edad procedente de dos o tres placas PP NH cuatro en el manitol. Consulte el protocolo escrito adjunto para este y otros preparados de reactivos. A continuación, añada tres mililitros de Drizly al 2 % e incube a temperatura ambiente con agitación suave durante una hora.
Filtre la mezcla a través de una malla de 100 micrones para obtener una suspensión homogénea verde. Luego, centrifugue el filtrado a 250 G durante cinco minutos. Descarte el sobrenadante con mucho cuidado.
ReSuspender los protoplastos en 500 microlitros de manitol al 8%. Luego, añadir 9,5 mililitros adicionales de manitol al 8%. Asegurarse de que los protoplastos queden completamente suspendidos.
Realice los pasos de lavado otras dos veces, centrifugando nuevamente la solución a 250 G durante cinco minutos. Deseche el sobrenadante y resuspenda los protoplastos primero en 500 microlitros.
Luego, 9,5 mililitros de manitol al 8 % utilizando un hemocitómetro. Cuente el número de protoplastos en 10 microlitros de la suspensión para transformar el ADN en los protoplastos aislados. Primero, centrifugue la mezcla de protoplastos a 250 G durante cinco minutos.
Retire el sobrenadante y resuspenda los protoplastos a 1,6 millones por mililitro en solución MMG. Incube la suspensión a temperatura ambiente durante 20 minutos. A continuación, agregue 600 microlitros de la solución de protoplastos a un tubo de cultivo que contenga 60 microgramos de ADN. Agite.
Añada suavemente 700 microlitros de solución de PEG con calcio y agite. Incube adecuadamente la muestra a temperatura ambiente durante 30 minutos en este período de espera. Cubra las placas PRMB con papel de celofán.
Luego, diluya la suspensión con tres mililitros de solución W5 y centrifugue a 250 ×g durante cinco minutos. Para eliminar el PEG, re suspenda los protoplastos en dos mililitros de medio PRMT y plaque un mililitro por placa PRMB recubierta con celofán. Mantenga las placas a 25 grados Celsius en una cámara de crecimiento.
Finalmente, cuatro días después de la transformación, transfiera el celofán a placas de selección frescas. Esta figura muestra un ejemplo de plantas de 18 días de edad regeneradas a partir de protoplastos, transformados con 15 microgramos de ADN plasmídico superenrollado, que portan un casete de resistencia a higromicina. Aquí, 30 microgramos del mismo plásmido superenrollado, ADN, fueron transformados en protoplastos.
Se transformaron 60 microgramos de ADN de tipo plásmido en esta muestra. Y finalmente, estas plantas se regeneraron a partir de protoplastos que fueron transformados con 120 microgramos del mismo ADN plasmidial superenrollado que portaba el casete de resistencia a higromicina. La eficiencia de transformación no se ve afectada por concentraciones de ADN de hasta 60 microgramos.
Sin embargo, concentraciones más altas de ADN son perjudiciales para este procedimiento. Los datos indican que este método proporciona resultados consistentes en un amplio rango de cantidades de ADN Una vez por semestre. Esta técnica puede realizarse en tres horas si se lleva a cabo correctamente.
Tras seguir este procedimiento, se pueden realizar métodos adicionales como el ARNi transitorio y las eliminaciones génicas para responder preguntas adicionales sobre la función génica.
Este artículo describe un método sencillo y eficiente para transformar protoplastos de Physcomitrella patens. La técnica se adapta de protocolos existentes para la transformación de protoplastos y tiene como objetivo producir resultados exitosos de forma consistente.
La transformación mediada por PEG de protoplastos de Physcomitrella patens permite una entrega eficiente y reproducible de genes, favoreciendo la genómica funcional de alto rendimiento en sistemas vegetales. Esta capacidad es fundamental para equipos de descubrimiento temprano que buscan investigar la función génica, validar dianas y acelerar la elucidación de vías en un modelo genéticamente manejable. La escalabilidad del método y su potencial de estandarización lo convierten en una herramienta valiosa para cribados genéticos a escala de cartera y para la reducción de riesgos mecanicistas.
Este protocolo de transformación se enmarca dentro del continuo de descubrimiento inicial hasta la identificación del candidato principal, permitiendo la manipulación genética, la validación de dianas y el desarrollo de ensayos en modelos vegetales.