18 février 2009
Nous présentons une méthode pour générer des ADNc de l'ARNm de l'environnement. En général, l'ARN total est d'abord recueilli de l'environnement, l'ARNr est enlevé sélectivement, l'ARNm est sélectivement amplifié, et l'ADNc synthétisé à partir de la piscine ARNm enrichi est séquencé. Séquences récupérés peuvent être annotés en utilisant des techniques standard de la bioinformatique pour identifier les gènes exprimés.
Cette procédure commence par l'acquisition de biomasse microbienne marine à partir d'échantillons d'eau par préfiltration à travers des filtres de cinq et trois micromètres, suivie de la collecte sur un filtre de 0,22 micromètre. L'ARN total est ensuite extrait des organismes retenus sur le filtre de 0,22 micromètre. Notre ARN est éliminé de l'ARN total par dégradation enzymatique sélective, puis l'ARNm enrichi est amplifié linéairement par ajout d'une queue polyA et par transcription in vitro.
L'ARN antisense amplifié est ensuite converti en ADN bicaténaire à l'aide d'un hexamère aléatoire. L'ADN bicaténaire obtenu peut être cloné et séquencé ou directement soumis à un séquençage par pyroséquençage. Bonjour, je suis Rachel Persky du laboratoire de la Dre Marianne Moran au Département des Sciences Marines de l'Université de Géorgie.
Aujourd'hui, nous allons vous présenter une procédure permettant d'analyser l'expression génique à partir d'échantillons environnementaux, en utilisant la méta-transcriptomique environnementale. Scott Gifford vous montrera comment traiter des échantillons environnementaux afin de recueillir l'ARN.
Je vais vous montrer comment extraire l'ARN à partir des échantillons et des RIN de Johanna. AON démontrera la suppression de l'ARN. Maria Kosta présentera ensuite les étapes d'amplification de l'ARN et de synthèse de l'ADNc.
Commençons. Pour initier le prélèvement d'ARN environnemental, nous mettons en place le système de filtration en plaçant une extrémité du tube dans l'eau à la profondeur souhaitée pour l'échantillonnage, et en raccordant l'autre extrémité à un filtre à haut débit de trois micromètres, le pompe étant positionnée entre les deux extrémités du tube. Le filtre de trois micromètres est ensuite relié à la colonne de filtration de 0,22 micromètre, et l'écoulement de sortie est dirigé depuis la colonne de 0,22 micromètre vers un récipient gradué.
Faites circuler plusieurs litres d'eau dans le système pour rincer. Une fois terminé, retirez le tube de l'eau tout en laissant la pompe en marche afin d'évacuer l'eau restante de la conduite. Ensuite, utilisez une paire de forceps pour placer un filtre de 0,22 micromètre sur la tour de filtration et fermez-la.
Replongez l'extrémité du tuyau dans l'eau et mettez la pompe en marche. Laissez l'air s'échapper des deux filtres et surveillez le volume d'eau filtrée à l'aide du bidon. Une fois le volume souhaité filtré, retirez le tuyau de l'eau et purgez l'eau restante du système.
Dès que le filtre est sec, retirez rapidement la plaque supérieure du filtre et pliez le papier filtre. Placez le filtre dans un tube whirl pack et congélez-le instantanément dans de l'azote liquide. Avant de commencer l'expérience, il est important de noter que, les ARN étant omniprésents et les ARNm se dégradant rapidement, des précautions standard pour travailler dans un environnement exempt de ribonucléase doivent être respectées, y compris pour les surfaces de travail et les pipettes.
À cet effet, des gants propres doivent être portés lors de la manipulation de tout matériau utilisé dans cette procédure. Les échantillons doivent être traités dans un délai aussi court que possible. Pour commencer l'extraction d'ARN total à partir du filtre de 0,22 micromètre, nous préparons des tubes de lyse à billes en ajoutant huit millilitres de tampon RLT contenant de l'éthanol bêta méto à un tube conique de 50 millilitres.
Ensuite, un à deux millilitres de billes à ARN provenant d'un kit d'extraction PowerSoil mobile sont ajoutés. Retirez rapidement le filtre congelé du congélateur et maintenez-le dans le pack réfrigérant. Faites-le éclater à l'aide d'un maillet.
Ajouter le filtre broyé au tube conique de 50 millilitres préparé et sceller le couvercle du tube avec du ruban parafilm ou du ruban de laboratoire. Vortexer pendant 10 minutes. Puis centrifuger le tube de 50 millilitres à 5 000 tr/min pendant une minute. À température ambiante, retirer autant que possible le lysat et le transférer dans un tube de 15 millilitres avant de centrifuger à nouveau pendant cinq minutes.
À 5 000 ×g, le surnageant est ensuite transféré dans un nouveau tube de 50 millilitres et un volume égal d'éthanol à 100 % est ajouté au lysat. À l’aide d’une seringue de 10 millilitres, aspirez le lysat à travers une aiguille de 18 à 21 gauge et faites-le passer environ cinq fois. Pour les étapes suivantes d’extraction, utilisez le kit KaiGen R et easy mini selon les instructions du fabricant, en appliquant le lysat sur la colonne fournie, soit à l’aide du manifold sous vide, soit par centrifugations répétées.
Quantifiez l'ARN total par spectrophotométrie. Après avoir déterminé le rendement total en ARN, nous utilisons le kit Ambien turbo DNA free selon les instructions du fabricant pour éliminer toute contamination par l'ADN. Maintenant que les extractions d'ARN sont terminées, je vais remettre l'ARN total à Johanna, qui effectuera les étapes de suppression de l'ARNr premier et second.
Merci Rachel. Pour commencer la suppression de l'ARNr, mélangez doucement et centrifugez brièvement le tampon de réaction 10x pour la seule ARNm avant utilisation dans un tube stérile sans ARNase de 0,5 millilitre, puis mélangez les volumes appropriés de tampon de réaction 10x, d'inhibiteur d'ARN, d'échantillon d'ARN total et d'exonucléase Terminator. Selon le protocole d'Epicentre, incubez la réaction à 30 degrés Celsius pendant 60 minutes dans un thermocycleur avec un couvercle chauffant ou dans un bain d'eau.
Ensuite, arrêter la réaction par une précipitation au phénol-éthanol en ajoutant d'abord de l'eau libre de RNAses jusqu'à un volume total de 200 microlitres, puis en ajoutant un volume égal d'une solution phénol-chloroforme (1:1) à l'ARNm centrifugé. Recueillir la phase aqueuse, puis précipiter avec de l'éthanol à cent pour cent et du sel. Ce point constitue un arrêt possible du protocole.
L'ARN peut être conservé à moins 80 degrés Celsius jusqu'à ce que l'échantillon soit prêt à être utilisé dans des applications en aval. Une fois l'enrichissement initial en ARNm terminé, nous utiliserons les kits Ambien Microbe Enrich et Microbe Express conformément aux instructions du fabricant afin d'éliminer tout ARNr résiduel de notre échantillon. Pour faciliter l'élimination de l'ARNr eucaryote, nous utiliserons le kit Microbe Enrich.
Tous les volumes sont déterminés en lisant attentivement les instructions du fabricant. Commencez par pipeter 300 microlitres de tampon de liaison dans un tube de 1,5 millilitre. Ajoutez de 5 à 100 microgrammes d'ARN total dans un volume maximal de 30 microlitres et vortexez.
Ajoutez délicatement deux microlitres du mélange d'oligonucléotides de capture pour cinq microgrammes d'ARN dans le tampon de liaison et tapez doucement sur le tube. Faites une courte centrifugation du mélange. Dénaturez le mélange à 70 degrés Celsius pendant 10 minutes, puis incubez le mélange à 37 degrés Celsius pendant une heure.
Pendant cette incubation, préparez les billes magnétiques oligo en les lavant une fois avec de l'eau sans nucléase et une fois avec le tampon de liaison, en récupérant les billes sur un support magnétique entre chaque lavage. Conservez les billes sur de la glace et laissez-les atteindre la température ambiante. Cinq minutes avant utilisation, chauffez la solution de lavage à 37 degrés Celsius dans un bloc chauffant.
Ajouter le mélange d'oligonucléotides de capture d'ARN aux billes magnétiques recouvertes d'oligonucléotides, mélanger doucement le tube puis centrifuger brièvement. Incuber le mélange à 37 degrés Celsius pendant 15 minutes. Placer le tube sur le support magnétique et attendre environ trois minutes avant d'aspirer le surnageant contenant l'ARNm, puis le transférer dans un tube de collecte placé sur de la glace.
Ensuite, ajoutez 100 microlitres de solution de lavage préalablement réchauffée sur les billes capturées. Vortexez doucement pour capturer les billes et récupérez le surnageant. Ce surnageant contenant l'ARN doit être placé dans un tube de collecte sur glace.
Placer un tube de collecte sur de la glace pendant la préparation du retrait de l'ARNr procaryote à l'aide du kit Ambion Microbe Express, que nous utiliserons pour éliminer l'ARNr procaryote résiduel. Utiliser un bioanalyseur ou un Experion pour vérifier la contamination par l'ARNr et la qualité de l'ARNm. Ce point constitue une étape possible d'arrêt.
L'ARN peut être conservé à moins 80 degrés Celsius. Une fois que l'ARNr a été éliminé, nous utiliserons le kit Ambien Message AMP Two Bacteria selon les instructions du fabricant afin d'amplifier notre ARNm. Maintenant que nous disposons d'un échantillon pur d'ARNm, je remets l'expérience à Maria, qui vous guidera à travers l'amplification de l'ARNm et la synthèse d'ADNc.
Merci, Hannah. Avant de commencer l'amplification de l'ARNm, calculez les volumes de chaque composant des mélanges maîtres du kit Ambien message AMP deux bactéries en ligne. Nous commençons la polyadénylation de l'ARN matrice en plaçant jusqu'à 1000 nanogrammes d'ARN total dans un tube microfuge stérile sans ARNase. Utilisez 6,5 microlitres d'échantillon et pas d'eau sans ARNase dans le premier tampon pour synthétiser un ARN par transcription in vitro.
Il est recommandé d'utiliser un four à hybridation ou un incubateur en raison de leur température uniforme. Étant donné qu'il est extrêmement important qu'aucune condensation ne se forme à l'intérieur des tubes, nous recommandons vivement une incubation de 14 heures pour la réaction de transcription in vitro. Pour maximiser le rendement en ARN afin d'obtenir le plus haut rendement possible en ARN A, réalisez la réaction IBT dans un volume final de 40 microlitres et stockez l'ARN A à -80 degrés Celsius en aliquots d'environ 10 microlitres.
Une fois l'ARN amplifié, il est temps de synthétiser l'ADN complémentaire ou ADNc. Le kit Promega Universal RiboClone™ System de synthèse d'ADNc est utilisé pour synthétiser l'ADNc à partir de l'ARN. Le kit fournit des instructions pour convertir deux microgrammes d'ARN en ADNc. Nous recommandons d'utiliser six à dix microgrammes d'ARN et d'ajuster les réactions en conséquence.
Nettoyez l'ADNc à l'aide d'une précipitation par éthanol ou du système de purification d'ADN Promega Wizard. Conformément aux instructions du fabricant, conservez les échantillons à moins 80 degrés Celsius. À ce stade, l'ADNc double brin peut être directement séquencé. À partir de 10 litres d'eau de mer, nous avons extrait environ 10 microgrammes d'ARN environnemental et l'avons amplifié 20 fois par conversion en ADNc double brin, obtenant ainsi des quantités suffisantes de matériel pour le séquençage et l'analyse des transcrits environnementaux. Nous venons de vous montrer comment évaluer l'expression génique à partir de communautés microbiennes marines en utilisant la méta-transcriptomique environnementale.
N'oubliez jamais que lors de cette procédure, l'ARNm se dégrade rapidement et que les ARN sont ubiquitaires. Prenez donc les précautions standards pour travailler dans un environnement exempt de ribonucléases et traitez les échantillons aussi rapidement que possible. Voilà, c'est tout.
Merci d'avoir regardé et bonne chance avec vos expériences.
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Cette étude présente une méthode de production d'ADNc à partir d'ARNm environnemental, en mettant l'accent sur la biomasse microbienne marine. Le processus comprend la collecte d'ARN total, l'élimination sélective de l'ARNr, l'amplification de l'ARNm et la synthèse d'ADNc en vue du séquençage.
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Ce protocole de transcriptomique fait le lien entre l'échantillonnage environnemental et l'analyse moléculaire, le plaçant à l'interface entre la découverte précoce et l'identification de candidats pour les pipelines de biopharmacie.