29 avril 2007
Cette vidéo montre la préparation d'un ultra-mince de matrice / analyte couche pour analyser des peptides et des protéines par Matrix-Assisted Laser Désorption Ionisation Mass Spectrometry (MALDI-MS).
Bienvenue dans le tutoriel du laboratoire CHI sur la méthode de la couche ultrafine, particulièrement utile pour la détermination précise de la masse des protéines. En raison de la sensibilité de la spectrométrie de masse, nous n'utilisons que des réactifs de qualité HPLC ainsi que des gants en latex ou en nitrile sans poudre pour nettoyer la plaque. Rincez alternativement avec du méthanol, de l'eau, puis à nouveau du méthanol.
Entre chaque rinçage, essuyez délicatement l'excès de solvant à l'aide d'un papier-lentille. Vous pouvez répéter ces étapes de lavage autant de fois que nécessaire pour obtenir une plaque propre. Une fois la plaque nettoyée et sèche, elle doit être utilisée immédiatement.
Appliquez et répartissez 20 à 30 microlitres de solution de substrat en couche mince sur la plaque MALDI propre. Ici, nous utilisons une pipette P2-50 pour répartir uniformément la solution tout en évitant de rayer la plaque. Au fur et à mesure que la couche mince sèche, retirez les gouttelettes d'eau résiduelles éventuelles en tamponnant délicatement avec un essuie-tout.
Ensuite, essuyez délicatement la plaque d'un seul mouvement uniforme avec un essuie-tout Kim pour former correctement la couche mince. Enfin, nettoyez les bords de la plaque afin d'éviter de contaminer le spectromètre de masse. Il est essentiel de tester la couche mince avant d'appliquer votre échantillon.
Si la tache-témoin met trop de temps à sécher là où les cristaux ne sont pas homogènes, le problème peut provenir de la couche mince elle-même ou de la solution matricielle ; nettoyez la plaque, réappliquez la couche mince, puis refaites le test. Lors du dépôt sur la couche mince, vous ne devez pas laisser vos taches s'évaporer jusqu'à séchage complet. Au contraire, une fois que la cristallisation a ralenti et cessé, retirez le solvant en excès.
À l'aide d'un aspirateur sous vide, la présence de contaminants tels que les sels et les détergents, ainsi qu'une concentration élevée de l'analyte, peut interférer avec la cristallisation. Une dilution supplémentaire de l'échantillon pourrait améliorer la cristallisation. Repérez les fourmis en proximité immédiate de l'échantillon. Cela permettra une calibration pseudo-interne au cours de laquelle la plaque est déplacée du point d'échantillon au point d'étalonnage.
Lors de l'acquisition de l'échantillon, l'ajout de quelques tirs laser du CAS au spectre garantit un calibrage de masse plus précis qu'un calibrage externe seul. Il est très important d'éliminer par lavage toute contamination pouvant interférer avec l'ionisation de l'analyte, telle que le sel ou les détergents. Pour ce faire, déposez directement sur les points des gouttes d'acide trifluoroacétique à 0,1 % dans de l'eau HPLC glacée.
Retirer la solution de lavage à l’aide d’un aspirateur à vide, comme illustré ici. Cette méthode produit d’excellents spectres aussi bien pour les protéines membranaires que pour les protéines solubles.
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Ce vidéo montre la préparation d'une couche ultra-fine de matrice/analyte pour l'analyse de peptides et de protéines par spectrométrie de masse avec désorption/ionisation assistée par laser et matrice (MALDI-MS). Cette méthode est essentielle pour la détermination précise de la masse des protéines.
La détermination précise de la masse des protéines est essentielle pour la validation des cibles et l'identification des composés candidats en phase précoce de découverte. La méthode de préparation d'échantillons MALDI en couche ultra-mince améliore la qualité des données en augmentant la tolérance aux impuretés et l'uniformité spatiale, ce qui permet une évaluation fiable des composés. Cette méthode confère une confiance prédictive dans la caractérisation des protéines, réduisant ainsi l'ambiguïté mécanistique dans le choix des modèles précliniques.
La méthode de la couche ultramince s'inscrit dans le continuum de découverte allant de la validation précoce de cibles jusqu'à l'identification de composés actifs et au profilage préclinique, permettant une analyse fiable des protéines à chaque étape.