27 ביולי 2009
בקנה מידה גדול immunodetection של חלבונים יעד ברחבי המוח הפרימטים כולו ניתן על ידי העסקת רקמה רומן הטבעה וכן חתך שיטות בשילוב עם השימוש במנגנון יצירתיים מכתים אצווה של ריחוף ללא מקטעים מרובים בכל זמן נתון.
הליך זה מתחיל עם קבלת מוח שעבר פרפוזיה ב-4% PFA, הוצאה חיצונית והגנה בקירור (cryoprotection), אשר נשלח ל-Neuroscience associates לצורך הטמעה באמצעות נקודות ייחוס ליישור המוטמעות במטריצה המקיפה. ניתן לחתוך את המוח במישור הקורונלי כדי להפיק חתכים סדרתיים בעובי רצוי, אשר ייצגו את כל ההויעת הקדמית-אחורית של המוח באמצעות סלים ומכלים ייעודיים. ניתן לבצע עיבוד אימונוהיסטוכימי של סדרות (Batch immuno processing) כדי לקבוע את דפוס הביטוי המרחבי של חלבון לאורך המוח כולו.
שלום, אני ד"ר Shaheen Zur ממעבדת מדעי העצבים החזותיים בבית הספר לאופטומטריה באוניברסיטת מונטריאול. שלום, אני ד"ר Mark Burke, גם אני ממעבדת מדעי העצבים החזותיים בבית הספר לאופטומטריה באוניברסיטת מונטריאול. שלום, אני ד"ר Mo Petto, מנהל מעבדת מדעי העצבים החזותיים בבית הספר לאופטומטריה, אוניברסיטת מונטריאול.
היום נדגים לכם פרוצדורה לצביעה אימונוהיסטוכימית של סדרות (batch immuno staining) לצורך זיהוי חלבונים בקנה מידה רחב במוח של קוף שלם. אנו משתמשים בפרוצדורה זו במעבדה שלנו כדי לחקור את דפוסי הביטוי של חלבוני מטרה בכל רחבי המוח, וכדי להשוות ולבחון את הביטוי של חלבונים אלו בתוך אותו מוח. אז בואו נתחיל.
לפני העיבוד ההיסטולוגי, השג מוח של פרימט, שנשמר באמצעות פרפוזיה סיסטמית, קיבוע מאוחר והגנה בקירור (cryoprotection) באמצעות תמיסות סוכרוז בריכוזים מדורגים. בשלב זה, המוח נשלח ל-neuroscience associates לצורך הטמעה וביצוע חיתוכים חופשיים באמצעות הטכנולוגיה הקניינית שלהם. עם החזרת הדגימה, ניתן יהיה להבחין בשבע נקודות ייחוס ליישור שהוצבו במטריצת ההטמעה, כך שניתן יהיה להכווין את החיתוכים כראוי ולהחזירם למקומם לאחר השלמת העיבוד ההיסטולוגי.
במהלך ביצוע החיתוך, מצוללים תמונות דיגיטליות שניתן להשתמש בהן מאוחר יותר לשחזור תלת-ממדי של מפות אנטומיות. עוזר למדען עצבים מעבד את הרקמה שלנו כדי להפיק חיתוכים קורונליים רצופים צפים באופן חופשי בעובי 50 micrometer לאורך כל המוח. עם השלמת התהליך, נוכל להתחיל בעיבוד היסטולוגי של החיתוכים.
כאשר אנו מתחילים בעיבוד היסטולוגי, עלינו לטפל בדרך כלל בכ-140 חתכים עבור כל נוגדן או צבע. כאן נדגים את הטכניקה על מדגם קטן יותר של חתכים שטופלו בנוגדן SMI 32, שהוא נוגדן מונוקלונאלי נגד חלבוני נוירופילמנט שאינם זרחניים. לאורך הפרוצדורה, נעשה שימוש בערכות צביעה ובסלים ייעודיים, המאפשרים עיבוד סימולטני ויעיל של מספר רב של חתכים צפים באופן חופשי.
פעולה זו מבטיחה שהצביעה שתתקבל תהיה עקבית בכל החתכים. השלב הראשון הוא דגירה של החתכים בתמיסה מבוססת PBS המכילה TRITTON X 100 וסרום סוס נורמלי למשך 60 דקות. הדבר יפחית את הקישור הבלתי ספציפי של מולקולות הנוגדן, הגורם לצביעת רקע.
בשלב הבא, מדגגי החיתוכים מודגרו למשך לילה. למחרת, החיתוכים נשטפים במשך שלוש תקופות של 10 דקות בכל אחת בתמיססת שטיפה, ולאחר מכן מודגרו למשך שעתיים בטמפרטורת החדר בתמיססת נוגדן ראשוני SMI 32 מבוססת PBS, המועשרת ב-tritton X 100 ובסרום סוס נורמלי, ולאחר מכן בתמיססת נוגדן משני Muse ביוטינילי מבוססת PBS המכילה Triton X 100 וסרום סוס נורמלי.
לאחר סדרה של שלושה שטיפות נוספות למשך 10 דקות, המקטעים מונחים בתמיסה של קומפלקס avadon biotin conjugated horse radish peroxidase למשך שעה בטמפרטורת החדר. לבסוף, לאחר סדרה נוספת של שטיפות, המקטעים מונחים בתגובת D amino benzine למשך 10 דקות, המייצרת צבע חום בתוך הנוירונים בעלי התגובתיות החסונית. התגובה מופסקת לאחר מכן על ידי הוצאת סלסילת הצביעה והטבלת המקטעים ב-PBS.
לאחר שני עד שלושה שטיפות של חמש דקות ב-PBS, הפרוסות מוכנות להרכבה אינדיבידואלית על גלסיידים כדי להתחיל את תהליך ההרכבה באמצעות צלחת פטרי גדולה ומכחולי צבע רכים מאוד. הפרוסות מורמות ממיכל תמי विलयן ה-PBS ומוצמדות בנפרד לגלסיידים מצופים בג'לטין. לאחר מכן, הדגימות מותירות להתייבש באוויר למשך הלילה בתוך מapay fume hood למחרת.
שוטפים את החתכים על ידי טבילה במים דה-יוניים כדי להסיר גבישי מלח שעלולים להישאר מתהליך ההטמעה. לאחר מכן, מייבשים את השקופיות בשלבים מדורגים של אתנול, מנקים ב-xylene ומכסים בכיסוי זכוכית עם תסבוב Permount. בשלב זה, יש לאחסן את השקופיות למשך כשבוע עד 10 ימים במצב אופקי כדי לאפשר לתסבוב להתקשות.
לאחר מכן, ניתן לאחסן את הפלטים בקופסת פלטים או להעבירם לדימוי באמצעות מיקרוסקופיה. שיטה זו מייצרת פרופיל ביטוי מלא של חלבון מטרה רצוי לאורך מוח קוף שלם. כאן אנו מציגים חתכים קורונליים מייצגים המספקים תמומי מצב של ביטוי FMRP, new n ו-SMI 32.
באותו מוח של קוף. הרגע הצגנו בפניכם כיצד לבצע צביעה אימונוהיסטוכימית במקבץ (batch staining) עבור חלבון מטרה רצוי בכל רחבי המוח. בעת ביצוע הליך זה, חשוב לוודא שכל הנסכים עוברים ערבוב עדין בזמן הדגרה בתמיסות השונות, ושהם נותרים טבולים לחלוטין בכל עת.
בנוסף, הקדישו את הזמן הדרוש בזמן הכנת הדגימות למשטח זכוכית (glass mounting) והסירו כמה שיותר קמטים וקיפולים מבלי לפגוע בשלמות הרקמה. וזהו. תודה לצפייה ובהצלחה בניסויים שלכם.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה דן בגישה חדשנית לזיהוי אימונולוגי רחב-היקף של חלבוני מטרה ברחבי מוח הפרימט. הוא מדגיש שיטות חדשניות להטמעה וחיתוך של רקמות, יחד עם טכניקות צביעה במנות למספר רב של חתכים צפים באופן חופשי.
מיפוי ביטוי חלבונים בקנה מידה רחב במוחות של פרימטים תומך בתיקוף מטרות ובצמצום סיכונים מכניסטיים בגילוי תרופות למדעי המוח. צביעה אימונוהיסטוכימית במנות (Batch immunostaining) מאפשרת הערכה כמותית הניתנת לשחזור של התפלגות חלבונים מרחבית בכל רחבי המוח, ובכך משפרת את הביטחון החזוי במעורבות המטרה ובביצוע מודולציה של מסלולים. גישה זו נותנת מענה לפער קריטי במחקר תרגומי על ידי אספקת נתונים מערכתיים רלוונטיים למחלה לצורך זיהוי מועמדים מובילים (lead identification) והתאמה של מודלים פרה-קליניים.
השיטה משתלבת ברצף הגילוי, החל מאימות המטרה ועד למחקר פרה-קליני, על ידי מתן אפשרות לניתוח ביטוי חלבונים ברזולוציה מרחבית במערכות הרלוונטיות למחלה.