19 בדצמבר 2011
וריאציה פנוטיפי עבור תכונות יכול לנבוע מוטציות cis-הרגולציה (Cre) רצפים אלמנט השליטה דפוסי ביטוי גנים. שיטות נגזר לשימוש תסיסנית melanogaster יכול כמותית להשוות את רמות דפוסי במרחב ובזמן של ביטוי גנים בתיווך או שונה באופן טבעי וריאנטים cre.
המטרה הכללית של הליך זה היא למדוד באופן כמותי את פעילויות הבקרה הגנטית של אלמנטים רגולטוריים מסוג CIS או CRE הפעילים במהלך ההתפתחות המטמורפית של drosophila melanogaster. התחל בשיטות אינטגרציה ספציפיות לאתר כדי להפיק שושלות שבהן ה-CREs מוטמעים טרנסגנית כטרנסגנים של דגמי דיווח (reporter transgenes). באמצעות מיקרוסקופ סטריאו, השג פרטים טרנסגניים בשלב ההתפתחותי המתאים.
הוציאו את הדגימות מהמקום החיצוני והעבירו אותן למשקוף זכוכית למיקרוסקופ. התמידו בתיעוד הרמה ותבנית הביטוי של חלבון הדגם הפלואורסצנטי בדגימות שלמות באמצעות אנליזה במיקרוסקופ קונפוקלי. לבסוף, כמתו את רמת הביטוי של חלבון הדגם הפלואורסצנטי עבור התמונות הקונפוקליות שתועדו באמצעות כלי התוכנה Image J.
תוצאות אלו מקצות רמה של פעילות בקרה גנטית כדי לסייע לאלמנט הבקרה ולהקל על מחקרי ביטוי גנים השוואתיים נוספים בגרסאות שונות של CRE. הליך זה יכול לסייע במתן תשובות לשאלות מפתח המעניינות חוקרים בתחום הבקרה הגנטית ואופן קידוד הבקרה הגנטית הזו. ה-DNA רלוונטי לביולוגיה התפתחותית ואבולוציונית.
נוהל זה פותח כדי לספק תובנות לגבי אלמנטים רגולטוריים של cis הפועלים במהלך ההתפתחות המטמורפית של drosophila melanogaster. עם זאת, באופן עקרוני, ניתן להחילוו על אלמנטים רגולטוריים של cis הפועלים במהלך שלבי התפתחות אחרים ובמינים אחרים של זבוב הפירות, או אפילו באורגניזמי מודל אחרים. כדי להרחיב את קווי התוצאה הטרנסגניים, הכינו שני מבחנות (vials) עם מספר זבובים זכרים ונקבות בימים חלופיים.
העבירו את הזבובים מאחד הבקבוקונים לבקבוкон חדש. חזרו על פעולה זו למשך שבוע. בסוף שבועיים, ודאו שזבובי הפירות הטרנסגניים נמצאים בשלבי התפתחות שונים, מהשלב הלרבלי ועד לשלב הבוגר.
התחילו במיון שלבי ההתפתחות של הדגימות בסוף שלב הלערבה השלישי (third instar), כאשר ה-ER כבר נוצר. שימו לב שהדגימה אינה ניידת. ה-ER רך ולבן והאלמנטים הכדוריים (sphericals) נסוגים; הגדירו נקודת זמן זו.
בנקודת הזמן 0 HAPF. הבדילו בין זכרים לנקבות על ידי נוכחותן של גונאדות הממוקמות באופן בילטרלי סביב מרכז הגוף, אשר נראות כעיגולים שקופים המשמשים לקביעת השלב ההתפתחי על בסיס אורך המטמורפוזה. בנקודת הזמן 0 HAPF, העבירו את הדגימות למבחנה נקייה באמצעות מכחול לח.
הוסיפו פיסת נייר Kim wipe והרטיבו במים כדי למנוע מהדגימות להתייבש. כעת, דגרו את המבחנה בטמפרטורה של 25 °C עד להגעה ל-HAPF הרצוי. לחלופין, ניתן למיין את הדגימות על בסיס זיהוי הנוכחות והמיקום של מספר סממנים מורפולוגיים, כפי שפירוטם מופיע בטקסט המלווה.
הדביקו בעזרת סרט הדבקה מעבדה פיסה של סרט אריזה ללוח ניתוח, כאשר הצד הדביק פונה כלפי מעלה. הרטיבו מברשת צבע והשתמשו בה כדי להחליק את הדגימות.
העבירו את הדגימות לסרט ההדבקה והדביקו אותן כאשר הגב פונה כלפי מעלה. הניחו לדגימות להתייבש במשך 15 דקות. פתחו בהדרגה את ה-ER באמצעות פינצטה.
התחילו מהקצה הקדמי או מה-perm והמשיכו לכיוון הקצה האחורי. לאחר מכן, העבירו את ה-pui לטיפה של שמן צמיגי על סמיכה של מיקרוסקופ ובחנו את הדגימה תחת המיקרוסקופ עבור דגימות של mount שלם. השתמשו בעדשה של Forex או בעדשה של 10x כדי להביא את הדגימה למיקוד.
באמצעות התוכנה של המיקרוסקופ הקונפוקאלי, התאימו את אורך גל העירור עבור החלבון הפלואורסצנטי הרצוי כדי למנוע פוטובליצ'ינג (הבהרה פוטוכימית). התחילו עם עצימות לייזר של 5% עד 10%. אם האות חלש, הגבירו את העצימות לפי הצורך כדי לשפר את יחס האות לרעש. עבור תמונות קונפוקאליות, הפעילו בהגדרות התוכנה מיצע של מדידות פיקסלים מסריקות חוזרות, כגון kalman averaging, לצורך השוואות כמותיות של פעילות CRE בחתך C, שבו הפלואורסצנציה נראית העזה ביותר.
עברו לטבלת ביצועים (lookup table) של אזהרת רוויה וכוונו את הגבר (gain) וההיסט (offset) של מתח הערוץ להגדרות שבהן מספר מועט של פיקסלים נמצאים ברוויה. במידת הצורך, כוונו את מפתח המיקוד (confocal aperture). לאחר קביעת ההגדרות האופטימליות, בצעו סריקת ZS כדי להשיג סדרת תמונות לאורך ציר Z.
עם השלמת הסריקה, המיר את ערימת התמונות להיטל (projection) ושמור קובץ תמונה זה בפורמט TIF. לצורך השוואה כמותית של פעילויות CRE, השתמש באותן הגדרות מיקרוסקופ קונפוקאלי עבור כל הדגימות החוזרות וקווי הגנים של הגן המדווח (reporter transgene). עבור הניסוי, פתח תמונת TIFF להערכה לאחר הפעלת תוכנת Image J.
לחצו על כפתור הבחירה החופשית (freehand selection) ותחמו את אזור הדגימה שבו רצוי לבצע את הכימות. כדי לקבל נתון סטטיסטי של ערכי פיקסלים, לחצו על לשונית הניתוח (analyze) ולאחר מכן בחרו באפשרות מדידה (measure). רשמו את הציון הממוצע של ערכי הפיקסלים מתיבת התוצאות.
אסוף בנוסף ערך פיקסל ממוצע שני מאזור רקע שבו ה-CRE אינו פעיל. כדי להגיע לערך פיקסל ממוצע מתוקנן, המשך להפיק סטטיסטיקות של ערכי פיקסלים עבור דגימות חוזרות. לאחר מכן, מתוך ערכי הפיקסלים הממוצעים המתוקננים של החזרות, קבע את הפעילות הרגולטורית הממוצעת עבור A CRE וחשב גם את השגיאה הסטנדרטית של הממוצע.
ניסוי זה משתמש בעוצמת הפנוטיפ של הצלת העין הלבנה כדי להפוך קווים טרנסגניים להומוזיגוטים. רקע גנטי של מוטציה בגן white עם רצף אתר נחיתה A TTP משמש לאינטגרציה ספציפית של טרנסגן לאתר. פרטים טרנסגניים, המיזיגוטים והומוזיגוטים לווקטור המשולב, נבחנים על פי עוצמת פנוטיפ צבע העין המנושל, בהתאם למספר העותקים של גן ה-mini white המשולב.
לאחר מכן מקריבים קווים הומוזיגוטים על ידי הכלאה של זבובים זכרים ונקבות בעלי הפנוטיפ של צבע העין הכהה ביותר. סמנים מורפולוגיים משמשים לקביעת שלב הגלגול של הדרוזופיליה במהלך הגלגול מפשעת לזבוב פירות בוגר. הפרט עובר סדרה של מורפולוגיות סטריאוטיפיות שניתן להשתמש בהן כדי לקבוע את המין ולהעריך את שלב ההתפתחות. כאן.
גרסה של סוג בר (wild type) של אלמנט בקרה (CRE), המכונה האלמנט הדימורפי, מניעה רמות גבוהות של ביטוי של חלבון הדווח EGFP במקטע הבטני של ה-ASIC בנקבות זבוב הפירות. רצף של 13 זוגות בסיסים בתוך CRE זה נמצא כאתר קישור עבור גורם השעתוק DSX, והחשיבות של רצף זה במצב in vivo הודגמה על ידי כימות הפעילות הרגולטורית של ה-CRE כאשר אתר קישור זה מוטג. ניתוחים כמותיים מצביעים על כך שהמוטציה באתר DSX זה הפחיתה את הפעילות הרגולטורית ל-28 פלוס או מינוס 3% מהביטוי של סוג הבר, בהקשר של אתר השבחה של הגן המעובּר (transgene) שנעשה בו שימוש כאן.
השוואות דומות מעריכות פעילויות רגולטוריות עבור אללים של CRE תוך-מיניים או בין CREs אוטולוגיים ממינים נפרדים, לדוגמה, בהשוואה לרמות של EGFP במקטע הנשי. CREs אוטולוגיים עבור המינים D stimulants ו-D willi, המונעים על ידי זן D Melin gastric Canin S, בעלי פעילויות רגולטוריות השוואות ל-75% פלוס או מינוס 4% ואפס% פלוס או מינוס 0%, בהתאמה. ניתן להשתמש בשיטות פרוצדורליות עוקבות, כגון השתקה של RNA (RNA interference), עם גנים של גורמי שעתוק כדי לענות על שאלות נוספות לגבי האופן שבו גנים אלה של גורמי שעתוק מקיימים אינטראקציה עם אלמנטים רגולטורים של CYS.
דבר זה יבוא לידי ביטוי בעלייה ובירידה של ביטוי חלבון רהפורטר פלואורסצנטי המונחים על ידי אלמנטים רגולטוריים מסוג CIS לאחר פיתוחם. הליך זה סלל את הדרך עבור חוקרים בתחום הבקרה הגנטית לבחון את החשיבות התפקודית של מוטיבים באלמנטים רגולטוריים מסוג cis ושל מוטציות שהתפתחו על ביטוי גנים.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מחקר זה מתמקד במדידה כמותית של פעילויות ויסות גנים של אלמנטים רגולטוריים מסוג cis (CREs) במהלך ההתפתחות המטמורפית של Drosophila melanogaster. השיטות כוללות יצירת קווים טרנסגניים עם טרנסגנים של דגמי דיווח (reporter transgenes) לצורך ניתוח דפוסי ביטוי גנים.
הערכה כמותית של פעילות אלמנטים לוויסות סיס (CRE) ב-Drosophila טרנסגנית מאפשרת בחינה מדויקת של הלוגיקה של ויסות גנים, ובכך תומכת בגילוי מוקדם ובתיקוף מטרות במחקר גנטי והתפתחותי. גישה זו מגבירה את הביטחון החיזויי בגנומיקה פונקציונלית על ידי מתן אפשרות למדידה ישירה של השפעות רצפי ויסות, ובכך מקלה על קבלת החלטות מותאמות סיכון בנקודות מפנה מרכזיות בשרשרת הגילוי. יכולת ההסתגלות של השיטה לשלבי התפתחות שונים ולאורגניזמי מודל ממצבת אותה ככלי רב-שימושי עבור מחקר ופיתוח בקנה מידה ארגוני.
שיטה זו משתלבת ברצף הגילוי, החל מבדיקת השערות ראשונית דרך זיהוי מובילים ועד לתיקוף פרה-קליני, ובכך היא תומכת במטרות מחקר מכניסטיות וטרנסלציונליות כאחד.