22 ביוני 2012
שיטת לתרבות monolayer תא האנדותל לאורך כל פני השטח הפנימי של המכשיר 3D microfluidic עם כלי הדם בגודל הערוצים (<30 מיקרומטר) מתואר. זה במבחנה מודל microvasculature מאפשר לימוד אינטראקציות Biophysical בין כדוריות הדם, תאים אנדותל, וגורמים מסיסים מחלות המטולוגיות.
המטרה הכוללת של הליך זה היא ליצור התקן מיקרופלואידי מצופה בתאי אנדותל. דבר זה מושג תחילה על ידי ייצור התבנית למיקרופלואידקה, ולאחר מכן, בשלב השני, יצירת תעלת ה-PDMS.
בשלב הבא, זורעים את התאי האנדותלייליים לתוך ההתקן. השלב הסופי הוא גידול התאים בתוך ההתקן. בסופו של דבר, נעשה שימוש בהתקני מיקרופלואידיקה מצופים בתאי אנדותל כדי להדגים אינטראקציות בין תאים in vitro.
היתרון המרכזי של טכניקה זו על פני שיטות קיימות הוא שהיא מספקת לחוקר בקרה הדוקה על התנאים הביולוגיים והביופיזיקליים והיא תואמת למיקרוסקופיה פלואורסצנטית. למרות ששיטה זו יכולה לספק תובנות לגבי אינטראקציות ביופיזיות בין תאים במחלות המטולוגיות, ניתן ליישם אותה גם על תופעות כגון ביולוגיה של לוקוציטים, גרורות סרטניות וביולוגיה של תאי גזע המטופואטיים. באופן כללי, אנשים שאינם מכירים את השיטה יתקשו בביצועה, כיוון שיש לשלוט בתנאים באופן הדוק כדי להבטיח קיבוע תאים מוצלח.
כהכנה לייצור, יש להכין מסכה פוטוגרפית על ידי שליחת תמונה של תכנון בעזרת מחשב (CAD) של התקן המיקרופלואידי לספק מסכות חיצוני. לאחר קבלתה, המסכה מורכבת משכבת כרום על זכוכית סודה-סיד. במקרה זה, רוחב התעלה המיקרופלואידית הוא 30 microns.
כדי להתחיל בייצור של התקן המיקרופלואידי, נקה פרוסה של סיליקון (silicone wafer) באמצעות תמיסת פיראנה למשך 15 דקות, ולאחר מכן שטוף במים דה-יוניים למשך 10 שניות. לאחר מכן, טבול את פרוסת הסיליקון בחומצה פלואוריסטית למשך 30 שניות, ושטוף במים דה-יוניים למשך כ-10 שניות. בשלב הבא, בעזרת מכשיר spin coater, מרח שכבת photoresist מסוג micro chem SU 8 20 25 על הפרוסה לעובי של 30 microns במהירות סיבוב של 3000 rotations per minute.
הניחו את הפרוסה המצופה ב-SU 8 20 25 על פלטה חמה המכוונת ל-95 °C למשך חמש דקות כדי להסיר ממס עודף. לא מומלץ להשתמש בתנור בשלב זה. כעת, הניחו את מסכת הפוטו-ליתוגרפיה מעל הפרוסה וחשפו אותה לאור UV בתוך mask liner כדי ליצור קשירה צולבת של הפוטורזיסט SU 8 20 25.
לאחר הצלבת הקשרי הגומייה (cross-linking), הנח את הפרוסה (wafer) בחזרה על לוח החימום בטמפרטורה של 95 °C למשך חמש דקות נוספות, כדי להאיץ עוד יותר את הפולימריזציה של הפוטורזיסט SU 8 20 25. לאחר מכן, טבול את הפרוסה במפתח SU-8, המורכב בעיקרו מ-PGMEA, למשך ארבע דקות.
פעולה זו תסיר את ה-SU 8 20 25 photoresist שלא עבר קשירה צולבת. שטפו את הפרוסה שפותחה זה עתה ב-100% isopropyl alcohol למשך 10 שניות, ולאחר מכן ייבשו באמצעות חנקן בלחץ, או על ידי מתן אפשרות לממס להתאדות מהפרוסה בתוך מנדף נקי למשך מספר דקות. כעת, הדביקו את הפרוסה המיובשת למרכז צלחת הפטרי באמצעות סרט דביק, תוך הקפדה להניח את הסרט בקצוות הפרוסה.
לבסוף, טפטפו 500 µL של sigma coat על גבי הפרוסה. כסו את צלחת הפטרי עם המכסה, ולאחר מכן סובבו את הצלחת כדי להבטיח ציפוי מלא של הפרוסה. הסירו את המכסה והניחו לפרוסה להתייבש במשך מספר דקות עד שכל הממס יתאדה.
לאחר ערבוב פולימר PDMS וחומר מעקב ביחס משקלי של 10 ל-1, יש להסיר בועות אוויר באמצעות דסיקטור ואקום למשך מספר דקות עד שעה, בהתאם לעוצמת מערכת הוואקום הזמינה. לאחר הסרת כל בועות האוויר, יש למזוג את התערובת אל תוך הצלחת כך שהווייפר ופני השטח של הצלחת יהיו מכוסים. פעולה זו תיצור שכבת PDMS בעובי של כ-5 מילימטרים.
יש להכין גם פיסת PDMS דקה ללא תכונות בעובי של 1 mm. לאחר מכן, יש להקשות את התערובת בתנור בטמפרטורה של 60 °C למשך לילה. למחרת, יש להשתמש בסכין או בסקלפל כדי לחתוך מסביב לווופר ולהוציא מספר התקני מיקרופלואידיקה מ-PDMS.
לאחר מכן, גזרו את היריעה כדי לבודד את ההתקנים הבודדים. גזרו את יריעת ה-PDMS בגודל הגדול מעט מההתקן המיקרופלואידי. כעת, השתמשו במקדח ידני מדויק (pin vice Harris unicorn) או במכשיר דומה כדי ליצור חורי כניסה ויציאה בהתקן המיקרופלואידי.
בשלב הבא, נקה את פני השטח של התקן המיקרופלואידי ואת היריעה באמצעות סרט דביק (scotch tape). לאחר מכן, השתמש במנקה פלסמה כדי לחשוף את פני השטח של התקן המיקרופלואידי ויריעת ה-PDMS לפלסמת חמצן למשך 30 שניות. פלסמת החמצן יוצרת מינים ריאקטיביים על פני השטח החשופים של ה-PDMS, אשר יוצרים קשרים כאשר הם מובאים למגע פיזי.
בשלב הבא, מלאו מזרק של 1 ml מצויד במחט בעלת קצה קהה במידה 20 ב-50 µg/ml של Fibronectin מפלזמה אנושית ב-PBS, ולאחר מכן התאימו קטע צינורית מעל המחט. הכניסו פיסת צינורית דקה יותר לתוך הצינורית הראשונה כדי ליצור חיבור הדוק על ידי חיכוך בין שתי הצינוריות.
לאחר מכן, חברו את הקצה השני של צינורית הגומי הדקה יותר לכניסה של ההתקן המיקרופלואידי. הפעילו לחץ על המזרק כדי למלא את התעלות לחלוטין בתמיסת fibronectin וליצור טיפה קטנה של 100 µL בפתח היציאה, כדי להבטיח שהתעלות יישארו רטובות. כעת, הדגירו את ההתקן המיקרופלואידי באינקובטור לח בטמפרטורה של 37 °C למשך 40 עד 60 דקות.
לאחר הדגירה, חברו מזרק חדש מלא ב-PBS למחט בעלת הקצה הקהה. הפעילו לחץ כדי לשטוף את ההתקן המיקרופלואידי ב-PBS. הכינו תרחיף של 500,000 עד 2 מיליון תאים למילליליטר של תאי אנדותל מווריד טביליות אנושי (hve) במצע גידול אנדותלי עם 8% dextran.
הוספת דקסטראן מגבירה את הסבירות שהתאים יבטאים ויגודלו בהצלחה בתוך ההתקן המיקרופלואידי. מלאו מזרק נקי המצויד במחט בעלת קצה קהה ובצינור רחב יותר בתרחיף התאים, וחברו אליו קטע צינור ארוך יותר באורך של כ-one meter. קריטי לוודא שהצינורות מחוברים באופן הדוק כדי למנוע דליפות בין החיבורים.
הרצו את הצינורות בתמיסת תאים, וודאו שאין בועות במזרק או באחד מהצינורות כדי למקסם את ביצועי המערכת. בשלב זה, קריטי למנוע דליפות או כניסת בועות למערכת. כל דליפה של תמיסה או נוכחות של בועות במצע ימנעו התיישבות מוצלחת של תאי אנדותל.
לאחר שכל הבועות הוסרו וכל אורך הצינור מולא בתרחיף התאים, מקמינו את המזרק על המשאבה וחברו את הקצה השני לכניסת המיקרופלואידיקה. משאבת המזרק ממוקמת באותו גובה של ההתקן המיקרופלואידי. מקטע הצינור הארוך נגלל בזהירות בתוך האינקובטור כדי להבטיח שהתאים ומדיום הגידול יחוממו כראוי לפני מגעם עם ההתקן.
לאחר מכן, תרחיף התאים מוזרם לתוך ההתקן המיקרופלואידי בקצב זרימה נפחי של 1.23 microliters per minute למשך שעתיים ב-37 degrees Celsius ו-5%carbon dioxide במערכת שלנו. קצב הזרימה הנפחי של 1.23 microliters per minute מקביל למהירות זרימה מרכזית של one millimeter per second בערוצים הקטנים ביותר. נתון זה מקריב מאמץ גזירה על הדופן של one dime per centimeter square בערוצים אלו בשימוש בדם מלא.
לאחר השלמת עירוי תרחיף התאים, השתמש באותה משאבת מזרק ובצינור הארוך עם מזרק גדול יותר כדי להזרים מצע גידול טרי במשך יומיים עד שמונה ימים בקצב של 1.23 microliters per minute. כאשר השכבה המונידאלית של התאים מגיעה לרמת ההצפיפות הרצויה, הזרק דם או תרחיף תאים למערכת לצורך הניסוי. כאן, ההתקן המיקרו-פלואידי מוצג לפני תהליך האנדותליזציה.
ההתקן המיקרופלואידי הוזן בצבע מאכל כדי להמחיש את הגודל, הקנה מידה והעיצוב הכללי של ההתקן המדמה את הפיזיולוגיה של כלי הדם. מיקרוסקופיית שדה בהיר (Brightfield) חושפת אנדותליזציה של התקן מיקרופלואידי. תמונה זו התקבלה פחות מ-48 שעות לאחר הזריעה באמצעות הפרוטוקול המתואר; טכניקת הפרפוזיה המותאמת מאפשרת לתאי אנדותל לגדול בשכבה רציפה (confluent) על פני כל השטח הפנימי של המערכת המיקרופלואידית.
בתוך 24 עד 48 שעות מהזריעת התאים. כפי שמוצג בתמונה קונפוקלית זו, גידול מיקרו-וסקולרי על שבב עם מיקרו-תעלות מדמה את הגודל של 30 מיקרון של וריד לאחר הנימיים, אתר רוב אירועי החסימה המיקרו-וסקולרית באנמיה חרמשית. בניסוי זה, דם מלא ממטופלים בריאים מוזרק למכשיר מיקרו-וסקולרי על שבב בתנאים של חסר חמצן.
סרטון זה מראה כי זרימת דם מלא בתוך המערכת המיקרופלואידית האנדותליאלית שלנו היא סדירה, חלקה ורציפה, ללא אזורים של חסימה במיקרו-תעלות. כאן, דם מלא ממטופלים עם מחלת אנמיה חרשית (sickle cell disease) מוזרק לתוך התקן של מיקרו-כלי דם על שבב. בתנאים של חוסר בחמצן (deoxygenated conditions), נראים שינויים משמעותיים בזרימת הדם, כאשר בתעלות מספר הן קיימות חסימות מלאות.
בעת ביצוע פרוצדורה זו, חשוב לזכור להימנע מהחדרת בועות אוויר בעת החלפת הצינורות. המכשיר המוגמר תואם למיקרוסקופיה פלואורסצנטית וניתן להתאימו לבדיקות פלואורסצנטיות מסורתיות. טכניקה זו סוללת את הדרך עבור המטולוגים ניסיוניים לערוך ניסויים באמצעות תאים בודדים בסביבה ביופיזית והמודינמית מבוקרת.
ללא בועות.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מתאר שיטה לגידול שכבה אחת של תאי אנדותל במכשיר מיקרופלואידי עם תעלות בגודל של כלי דם מיקרווסקולריים. מודל in vitro זה מאפשר לחקור אינטראקציות בין תאי דם, תאי אנדותל וגורמים ממיסים במחלות המטולוגיות.
פלטפורמה מיקרופלואידית אנדותליאלית זו נותנת מענה לפער קריטי במחקר של מחלות המטולוגיות על ידי מתן שליטה מדויקת בתנאים המודינמיים וביופיזיקליים של מיקרו-כלי דם. היא מספקת מערכת in vitro הניתנת לשחזור לחקר אינטראקציות פתוגניות בין תאים לאנדותל תחת זרימה, ובכך תומכת בהסרת סיכונים מכניסטיים (de-risking) בתהליכי תיקוף מטרות ופיתוח בדיקות. המודל מגביר את הביטחון החזוי עבור מועמדים לטיפולים המטולוגים על ידי שחזור פתופיזיולוגיה בקנה מידה של וריקוציות פוסט-קפילריות הרלוונטית למשברים וסוקלוסיביים.
השיטה משתלבת ברצף הגילוי, החל מסריקת השערות על יעדים ועד לבדיקות יעילות פרה-קליניות, ובמיוחד עבור סוכנים המטולוגיים המכוונים להדבקה מיקרו-וסקולרית או להפעלה אנדותליאלית.