23 novembre 2011
Il citocromo c ossidasi / sodio deidrogenasi (COX / SDH) doppio metodo di etichettatura permette di visualizzare direttamente mitocondriale deficit enzimatici respiratori nei fresco congelato sezioni di tessuto. Questa è una tecnica semplice istochimiche ed è utile nelle indagini malattie mitocondriali, invecchiamento e patologie legate all'invecchiamento.
L'obiettivo generale di questa procedura è consentire la visualizzazione diretta delle carenze degli enzimi respiratori mitocondriali in sezioni di tessuto fresco congelato. Questo viene ottenuto innanzitutto raccogliendo sezioni criostatiche dall'organo di interesse. Il secondo passaggio della procedura consiste nell'eseguire l'istochimica della Cox, seguita dall'istochimica della SDH.
Infine, le sezioni di tessuto vengono disidratate, montate e coperte con un vetrino. In definitiva, i risultati possono mostrare il grado di disfunzione mitocondriale in base all'intensità della colorazione blu cellulare. Ciao. Oggi parleremo della tecnica istochimica di doppia marcatura Cox-SCH.
E mentre questo metodo può essere applicato per lo studio delle malattie mitocondriali, può anche fornire informazioni sull'invecchiamento e sui disturbi correlati all'età. Dopo aver rimosso il cervello da un animale sacrificato in conformità al permesso etico, congelarlo rapidamente su ghiaccio secco. Il tessuto congelato può essere conservato a meno 80 gradi Celsius, avvolto in foglio di alluminio, fino al momento del sezionamento.
Preparare il tessuto per la criosezione posizionando il cervello su un mandrino del criostato e circondandolo con un composto di inclusione. Posizionare rapidamente il mandrino nel criostato ed eseguire sezioni di 14 micron a meno 21 gradi Celsius. Scongelare le sezioni sui vetrini utilizzando un blocco riscaldante, quindi lasciare asciugare i vetrini a temperatura ambiente per un'ora.
Posizionare i vetrini in una camera per colorazione con strisce di carta umida. Poiché i tempi di reazione sono importanti in questo saggio, si raccomanda di elaborare al massimo 10 vetrini per esperimento sotto cappa chimica. Preparare l'incubazione, il mezzo contenente dab e citocromo C in PBS ed eseguire il vortex.
Aggiungere rapidamente due microgrammi di CDE bovini al mezzo e mescolare accuratamente mediante vortex. Per disperdere tutti i grumi di CDE ancora presenti sotto cappa, applicare da 150 a 200 microlitri di mezzo di incubazione su ogni vetrino utilizzando la punta della pipetta per distribuirlo uniformemente su tutte le sezioni. Incubare i vetrini per 40 minuti a 37 gradi Celsius.
Dopo 40 minuti, rimuovere il mezzo di incubazione dai vetrini. Lavare i vetrini quattro volte in PBS per 10 minuti ogni volta. Dopo il lavaggio, riposizionare i vetrini nella camera per colorazione con strisce di carta umida, operando sotto cappa chimica.
Preparare la soluzione di NBT in PBS avendo cura di proteggere il PMS dalla luce; vortexare rapidamente la soluzione. Applicare da 150 a 200 microlitri di soluzione NBT su ogni vetrino utilizzando la punta della pipetta per distribuirla uniformemente su tutte le sezioni. Incubare i vetrini per 40 minuti a 37 gradi Celsius. Dopo 40 minuti, rimuovere la soluzione in eccesso dai vetrini. Lavare i vetrini quattro volte in PBS per 10 minuti ogni volta.
Disidratare i vetrini per due minuti ciascuno nelle seguenti concentrazioni sequenziali di etanolo: 70%, 70%, 95%, 95% e 99,5%. Infine, lasciare per 10 minuti in un ulteriore passaggio con il 99,5%. Posizionare i vetrini nello xilene per 10 minuti, montarli con LAN e applicare le copri-oggetti.
Lasciare asciugare i vetrini durante la notte o almeno da una a due ore in un'area ventilata qui. Sezioni cerebrali di topi di tipo selvaggio e di topi Mutator con invecchiamento precoce del DNA mitocondriale sono state etichettate in sequenza per le attività di COX e SDH.
L'attività normale della Cox, indicata dalla colorazione marrone scuro, è osservabile nell'ippocampo di topi di tipo selvaggio. Deficit di Cox, indicati dalla colorazione blu, sono stati rilevati nell'ippocampo di topi mutatori del DNA mitocondriale a 12 e 46 settimane. Si è osservato un ulteriore calo dell'attività della Cox a 46 settimane di età nei topi mutatori M-T-D-N-A, suggerendo un'ampia aggravazione della disfunzione della catena respiratoria.
Tempi di incubazione inadeguati di 10 e 25 minuti hanno determinato una ridotta deposizione del prodotto di reazione bruno della DAB. I tempi di incubazione abbreviati hanno permesso la formazione del prodotto finale blu di Foran durante l'incubazione della SDH, suggerendo in modo fuorviante la presenza di cellule con carenze di COX durante il copricampionamento. Le vetrini durante l'incubazione della COX hanno inoltre causato una formazione e una deposizione inaccurate del prodotto di reazione della DAB.
Sebbene le attività di Cox e SDH possano essere etichettate singolarmente come mostrato qui, l'etichettatura sequenziale si è rivelata vantaggiosa per individuare cellule con disfunzione mitocondriale. Un esempio di controllo della specificità per le attività COX e SDH nel cervello di un topo di tipo selvaggio mostra un'etichettatura negativa. Pertanto, non dimenticare che lavorare con i reagenti nel protocollo chimico di doppia colorazione COX-SDH comporta rischi estremamente elevati, e precauzioni come indossare un'adeguata dotazione da laboratorio e una maschera, operare sotto cappa chimica e smaltire correttamente il mezzo di incubazione devono essere adottate ogni volta che si esegue questo saggio.
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Il metodo di doppia marcatura citocromo c ossidasi/deidrogenasi del succinato (COX/SDH) consente la visualizzazione di carenze enzimatiche respiratorie mitocondriali in sezioni di tessuto fresco congelato. Questa tecnica istochimica è particolarmente utile per lo studio delle malattie mitocondriali e dei disturbi legati all'invecchiamento.
La valutazione della funzione respiratoria mitocondriale è fondamentale per la validazione degli obiettivi nei programmi di studio delle malattie neurodegenerative e legate all'età. Il metodo istochimico con doppia marcatura COX/SDH consente una visualizzazione diretta delle carenze enzimatiche, supportando la riduzione del rischio meccanicistica dei bersagli mitocondriali. Questo approccio fornisce una previsione affidabile nella fase iniziale della scoperta, collegando l'integrità del mtDNA a letture funzionali della bioenergetica.
Il metodo si integra nel percorso di scoperta, dal test dell'ipotesi sul bersaglio fino all'identificazione del composto promettente e alla validazione preclinica, fornendo letture funzionali delle mitocondrie.