6 febbraio 2026
Qui illustriamo processi passo dopo passo per la fenotipizzazione dei nettari foglari e bracteali nelle piante di cotone utilizzando immagini generate tramite microscopia digitale. Questo è un metodo efficace per punteggiare i nettari sia delle foglie che delle brattee del cotone, poiché le informazioni possono essere raccolte e conservate sotto forma di immagini digitali.
L'attuale studio mira al metodo che valuta con precisione l'espressione del tratto nettario. Per illustrare l'espressione del tratto nettario, sono stati utilizzati sia nettari di foglie di cotone che nettari bracteali come tessuti modello. Questo metodo supera le limitazioni del punteggio tradizionale, che è inaffidabile e impreciso per il punteggio nettario del commercio.
Per cominciare, trasporta un frigorifero e sacchetti Ziploc etichettati in serra per la raccolta dei campioni, raccogli tessuto fogliare giovane da piante di cotone cresciute in serra di due o tre mesi e mettilo nei sacchetti campioni etichettati. Inserisci almeno due foglie per ogni campione nella rispettiva busta etichettata e sigilla saldamente la busta dopo la raccolta. Metti ogni sacchetto sigillato contenente tessuto fogliare nel frigorifero.
Raccogli fiori sani dai rami superiori quando le piante sono a metà fase di fioritura. Metti almeno due fiori in un sacchetto con etichetta e sigillalo. Trasferire i sacchetti sigillati contenenti fiori nel frigorifero per il trasporto in laboratorio.
Accendi un microscopio e completai i primi passaggi di avvio. Posiziona un foglio bianco A4 mezzo piegato tagliato per corrispondere alla dimensione dello stadio del microscopio sul palco. Usa le piccole manopole della luce sul controller della console per regolare la luce sul palco del microscopio all'intensità massima.
Poi ruota la manopola grande della luminosità per tre quarti per impostarla su medio-alto. Sul computer, seleziona ingrandimento 10x nel software del microscopio. Posiziona il tessuto fogliare sul foglio bianco pretagliato sul palco del microscopio con il lato abassiale rivolto verso l'alto e centralo sul palco.
Ruota delicatamente le manopole di regolazione e le manopole di regolazione fine per concentrarle sulla costola centrale della foglia. Continua a regolare finché l'immagine non appare chiara e senza sfocatura. Posizionare l'estremità inferiore della costola centrale dove si trova il nettario al centro del campo visivo, assicurando una chiara visibilità delle vene laterali divergenti.
L'uso delle manopole di regolazione del percorso e fini affina ulteriormente la messa a fuoco per migliorare la nitidezza digitale dell'immagine. Cattura l'immagine nettaria. Quando il software lo richiede, salva l'immagine con il numero di identificazione del campione nella posizione richiesta, poi assegna un punteggio da uno a quattro in base al fenotipo osservato del nettario fogliare.
Usa le pinze o la mano per rimuovere le brattee dal fiore. Metti il fiore su un tagliere pulito. Utilizzando una lama sterile, taglia il gambo del fiore, poi fai un'incisione dritta lungo il bordo delle brattee rimosse.
Posiziona il tessuto floreale preparato capovolto sul foglio bianco pre-tagliato sul palco del microscopio. Usa le manopole di regolazione del percorso e fini per migliorare la nitidezza dell'immagine visualizzata sullo schermo. Salva l'immagine con il numero di identificazione del campione appropriato.
La valutazione digitale delle immagini della superficie abassiale della foglia sul lato inferiore della costola centrale ha mostrato due fenotipi, con uno senza nettari sulla costola centrale. E punteggio quattro con un nettario completamente sviluppato con nettare. Quando i campioni di fiori sono stati analizzati per nettari bracteali, sono stati osservati due fenotipi: il punteggio uno non mostrava nettario e il punteggio quattro un nettare completamente formato.
Le immagini digitali delle piante nettarie hanno mostrato chiaramente sia le strutture di nettare fogliare che quelle bratecali con ingrandimenti 10x, 20x e 40x. Immagini digitali selezionate delle foglie corrispondenti al formato standard di punteggio hanno mostrato il primo punteggio con assenza di nettario, il secondo con un nettario poco sviluppato, il terzo punteggio con un nettare più piccolo e il quarto punteggio con un nettario completamente sviluppato. La corretta valutazione delle piante senza nettario dalle popolazioni segreganti di incroci nettari e senza nettario è essenziale per la selezione di piante senza nettario che possano ridurre i danni da parte degli insetti delle piante e ridurre le perdite di produzione.
Quindi la selezione di questo tratto è importante per applicazioni a valle come i marcatori del DNA associati al tratto meno nettario, che sono strumenti preziosi per la selezione assistita dai marcatori.
Questo articolo presenta un metodo digitale passo dopo passo per l'imaging, volto a valutare con precisione l'espressione del tratto dei nettari nelle piante di cotone. I metodi tradizionali di valutazione dei nettari sono poco affidabili a causa della sottile variabilità dei fenotipi e delle influenze ambientali. Il protocollo descritto utilizza la microscopia digitale per acquisire immagini ad alta risoluzione dei nettari fogliari e bratteali, consentendo una differenziazione fenotipica precisa e la conservazione affidabile dei dati per analisi future.
La valutazione fenotipica accurata dei caratteri delle piante è fondamentale per la validazione dei caratteri, la mappatura genetica e le applicazioni successive in ambito riproduttivo nella biotecnologia agricola. La valutazione basata sulla microscopia digitale delle nettaree del cotone migliora l'affidabilità predittiva e l'integrità dei dati nelle fasi iniziali di scoperta e selezione dei caratteri. Questo approccio supporta decisioni solide sui portafogli consentendo una fenotipizzazione riproducibile e ad alta risoluzione, allineata con le strategie di selezione assistita da marcatori.
Questo metodo di microscopia digitale si integra nel percorso dalla scoperta del carattere alla selezione, supportando la validazione precoce del carattere, lo screening quantitativo e lo sviluppo di marcatori traslazionali.