$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
組
換えC型肝炎ウイルス、または分泌されたルシフェラーゼレポーターをコードするRNAを含むHCV懸濁液を含むチューブを採取します。
抗ウイルス試験化合物と溶媒を試験管と陰性対照管に加えます。
試験化合物は HCV 糖タンパク質に結合し、ウイルスを不活性化します。
インキュベーション後、混合物を希釈して、後続のステップでの化合物と細胞の相互作用を防ぎます。
これらの希釈した混合物を、HCV複製をサポートする肝癌単層に加えます。インキュベート。
化合物で不活化されたHCVは特定の細胞表面受容体に結合できませんが、活性HCV糖タンパク質はこれらの受容体に結合し、細胞の付着を促進します。
未
吸着のHCVを除去し、バッファーで洗浄し、培地を追加します。長時間インキュベートします。
結合したHCVは内在化され、ウイルスRNAを放出し、細胞から分泌されるウイルスタンパク質とルシフェラーゼの合成につながります。
ルシフェラーゼ含有培養上清を採取します。遠心分離し、ルシフェラーゼ基質を上清に加えます。
ルシフェラーゼは基質を酸化し、発光します。
テスト
よりもコントロールウェルの発光が高い場合は、化合物によるウイルスの不活性化を示します。
ウイルス不活化アッセイを開始するには、まず、96ウェルプレートのウェルあたり4番目の細胞に10回1回プレートします。細胞を摂氏37度で5%二酸化炭素とともに一晩インキュベートして付着させます。感染の場合は、テキストプロトコルで参照されているように、Gaussia luciferaseレポータータグ付きC型肝炎ウイルスまたはHCV粒子を調製します。
滅菌チューブ内で、100マイクロリットルの100マイクロモルのCHLAまたはPUGを100マイクロリットルの10マイクロリットルをHCVの4番目のフォーカス形成ユニットまたはFFUに混合します。ポジティブコントロールの場合、HCVとヘパリンを1,000マイクログラム/ミリリットルの最終濃度で混合します。摂氏37度で3時間インキュベートします。
3時間後、ウイルス化合物混合物を室温で9.8ミリリットルの基礎培地で50倍に希釈します。次に、新しいウイルス化合物混合物を調製し、この混合物を基礎培地ですぐに希釈し、0時間のインキュベーションサンプル用にします。細胞からインキュベーション培地を除去した後、1ウェルあたり100マイクロリットルの希釈ウイルス薬液を3回ずつ加えます。
ソリューション
には、ウェルあたり10〜2番目のFFUが含まれています。摂氏37度、二酸化炭素5%で3時間インキュベートし、細胞のウイルス感染を可能にします。インキュベーション後、ウェルからウイルス懸濁液を取り出し、200マイクロリットルのPBSで細胞を2回穏やかに洗浄します。
細胞
を100マイクロリットルの基礎培地で72時間インキュベートし、ウイルス複製とルシフェラーゼレポーターの上清への放出を行います。次に、培養物から上清をマイクロチューブに集め、17,000 g で摂氏 4 度で 5 分間遠心分離して細胞破片を除去します。各上清20マイクロリットルをガウスルシフェラーゼアッセイ試薬50マイクロリットルと混合し、ルミノメーターでルシフェラーゼレポーター活性からの発光を測定します。