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マウスの脳では、扁桃体には、内側前頭前野、またはmPFCニューロンとのシナプス接続を形成するニューロンが含まれています。
mPFCニューロンが蛍光タンパク質に融合した光感受性チャネルロドプシンを発現する扁桃体の脳スライスを取ります。
スライスを記録チャンバーに入れ、蛍光顕微鏡で視覚化してmPFCニューロンを見つけます。
明視野ビューに切り替えて、内部溶液を含むパッチピペットを導入します。
陽圧を加えてピペットを扁桃体ニューロンに向かって進めます。
ニューロンが接触すると、くぼみが形成されます。
吸引を加えてしっかりと密閉します。
吸引を続けて膜を破裂させ、細胞内部との接触を確立します。
スライスを照らしてmPFCニューロンチャネルロドプシンを活性化し、正イオン流入、活動電位の生成、神経伝達物質の放出を引き起こします。
神経伝達物質はシナプス後扁桃体ニューロン受容体に結合し、イオン流入と電流生成を引き起こします。
シナプス後ニューロン電流を記録して、mPFC-扁桃体の接続性を分析します。
線維や細胞の光遺伝学的活性化のためにパッチ顕微鏡を準備するには、取り付けられた発光ダイオード(LED)を光送達経路の中央に配置します。パワーメーターを使用して、背面焦点面と各対物レンズの出力で470ナノメートルの波長でLED光強度を測定します。スプレッドシートを使用して、ミリワット/ミリメートル平方メートル単位の光強度を計算し、各対物レンズの検量線を作成します。
次に、界面チャンバーから急性扁桃体スライスを取り出し、顕微鏡に取り付けられたスライスチャンバーに入れます。インターフェースチャンバーで上を向いているスライス面が記録チャンバーでも上を向くようにスライスを配置します。スライスに新鮮な酸素化されたACSFを毎分1〜2ミリリットルの速度で灌流します。温度は摂氏約31度である必要があります。蛍光灯を点灯し、発現する特定の蛍光タンパク質に適したフィルターセットを選択します。5倍の目標を使用して概要を取得します。
次に、実験の必要に応じて、顕微鏡の光路の開口部を開いたり制限したりします。パッチ記録を取得するには、パッチピペットに内部溶液を充填し、電極ホルダーに取り付けます。パッチピペットに陽圧を加え、ゆっくりと浴液に下げます。次に、視覚制御下で、マイクロマニピュレーターを使用してパッチピペットをスライスに下げます。パッチピペットで目的のニューロンに側面と上部からアプローチします。
ピペットがセルの表面に到達したら、セルの表面に見えるディンプルで示されるように、陽圧を解放します。負圧を加えてギガシールを取得します。さらに吸引を加えて膜パッチを破裂させ、全細胞記録を取得します。次に、細胞からの電気応答を記録しながら、470ナノメートルの波長の光でチャネルロドプシンを活性化することにより、接続されたLEDで標識された繊維を刺激します。
シナプス刺激の場合は、データ収集ソフトウェアのデジタル出力を使用してLEDをトリガーします。LED刺激強度を手動で調整します。次に記録された細胞に必要に応じて、または特定の試験物質の存在下で、開口部または開口部を制限して刺激を繰り返します。