$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
まず、低融点アガロースに包埋された生きた脱絨毛膜トランスジェニックゼブラフィッシュ胚を胚培地で満たされたチャンバーに入れます。
胚は、強化された緑色蛍光タンパク質(EGFP)標識神経堤細胞を発現します。
チャンバーを顕微鏡ステージに配置します。明視野照明を使用して、対物レンズを調整して、胚の焦点を合わせ、視野の中央に配置します。
水浸の目的に切り替えて、胚に再び焦点を合わせます。
イメージングパラメータを調整して、外側から内側の端までZスタック画像を取得し、目の幅をキャプチャします。
明視野照明をオフにし、ステージを覆い、タイムラプスイメージングを開始します。
イメージング中に必要に応じてチャンバーに培地を補充します。
レーザー照射下では、神経堤細胞は蛍光を発します。
これらの細胞が神経管から頭蓋顔面領域、発達中の目の周囲に移動して眼周囲間葉系と前鼻突起に、腹側に咽頭弓を形成する
様子を視覚化します。
セットアップ全体を顕微鏡のステージに配置した後、テキストプロトコルに従って、5倍の対物レンズを使用して胚を見つけます。次に、手動でステージを最も高い位置まで上げ、ファインフォーカスを使用して胚を顕微鏡範囲の中央に配置します。
ステージを手動で下げ、5倍の対物レンズを25倍の水浸の対物レンズに変更します。慎重にステージを持ち上げて、胚に焦点を合わせます。ソフトウェアで、xyztモードをクリックして、zの深さのxy平面内の時間またはt間隔で複数の画像を取得します。
落射蛍光または明視野ビューを使用して、関心領域の焦点深度を見つけ、Zスタックを区切ります。これらの実験では、目の外側の端がzスタックの始まりです。ソフトウェアのここでフォーカスしたら、[開始]ボタンをクリックします。Zスタックの端である胚の正中線に焦点を合わせたら、終了ボタンをクリックします。
重要なステップは、Z ステップが関心のある領域を網羅していることを確認することです。この場合、外側から内側の端までの目の幅をキャプチャしたいと考えています。
メニューをクリックすると、取得時間と撮像周波数を調整します。蛍光色素の適切な回復と胚の生存のために、レーザー出力がオンのときのzスタック取得とレーザー出力がオフのときの回復時間の間に少なくとも1対3の比率を許容します。胚の回収に適切な時間を設けて、zスタックと指定されたウィンドウの間の時間を設定します。次に、適切なウィンドウで実験の合計時間を設定します。
次に、ライブ画像設定をオンにして、レーザー設定を最終調整します。ソフトウェア内でレーザー透過率、ゲイン、オフセットのスライダーバーを調整して、蛍光画像を最適化します。また、実験の長さ、予想される胚の成長などに応じて、必要に応じて胚の向きを調整します。実験中、対象領域がフレーム内にとどまるようにしてください。
タイムラプス取得中は、落射蛍光光源をオフにしてください。ステージをレーザーセーフティボックスで覆い、背景光から保護するのに十分です。次に、[スタート] を押します。
レーザーセーフティボックスのスライドドアからオープンバスチャンバーにアクセスし、8〜12時間ごとにタイムラプス胚培地を補充します。画像取得後、画像処理ソフトウェアでファイルを開きます。正しい画像シリーズをハイライト表示します。
ソフトウェアで、[プロセス]メニューを選択します。[3D デコンボリューション] をクリックし、各 Z スタックをデコンボリューションに適用します。個々のTIFFファイルをビデオ処理ソフトウェアにインポートします。次に、すべての TIFF ファイルを選択し、ビデオ エディターにドラッグします。ビデオ内の各画像の長さを 0.1 秒に調整します。最後に、ビデオを MOV または MP4 ファイルとしてエクスポートします。