2012年5月21日
同じマウス内で時間をかけて免疫応答の進行を追跡するには、リンパ節は、順次手術によって除去することができる。ここでは、この手法を実行する方法について説明します。
この手順の全体的な目的は、麻酔をかけたマウスからリンパ節を外科的に摘出することです。まずリンパ節の位置を特定し、次にリンパ節を採取して、切開部を縫合します。
最後に、実験分析に用いるための単一細胞懸濁液を得ることができます。最終的に、生存しているリンパ球集団をフローサイトメトリーで評価することが可能です。リンパ節の特定と摘出は実際に見て習得する必要があるため、この手法を視覚的に実演することが極めて重要です。
マウスを麻酔した後、眼軟膏を塗布し、ブプレノルフィンを注射して、足指つまみ法により鎮静状態を確認し、マウスを側臥位にします。まず上腕リンパ節の位置を特定し、続いて解剖部位を剃毛します。緩い毛をブラシで取り除いた後、当該部位に消毒薬を塗布し、前肢の背側に約5 mmの小さな切開を加えます。
2組のピンセットを使用して切開部を広げ、周囲の脂肪よりも灰色または暗色に見える上腕リンパ節が見えるようにします。次に、リンパ節を覆っている筋膜を1組のピンセットでつまみます。もう1組のピンセットをリンパ節の可能な限り深くに挿入し、周囲の組織を損なわないように膜を軽く引っ張ります。
次に、1組目のピンセットを使用して筋膜を破り、リンパ節を取り出します。リンパ節が正常に採取されていれば、リンパ節があった場所に血痕が現れます。切除したリンパ節を等張液に入れます。組織が沈下すれば、採取した組織が脂肪ではなくリンパ節であることが確認されます。
次に、創傷内に毛が混入していないことを確認し、皮膚の内側同士を密着させ、切開部位の大きさに応じて1〜2個のクリップでステープルして切開部を閉じます。続いて、鼠径リンパ節を特定し、解剖する領域を剃毛します。浮いた毛をブラシで取り除いた後、その領域に消毒液を塗布し、腹部近くの後肢の上方に約5 mmの小さな切開を加えます。
上腕リンパ節で行ったように、2本のピンセットで切開部を広げ、周囲の脂肪組織に囲まれた鼠径リンパ節を確認します。次に、先ほど実演したように、2本のピンセットを用いてリンパ節を取り出します。同様に、リンパ節が採取されていた箇所に血染みが現れていることを確認し、採取に成功したことを確かめてから、鼠径リンパ節を別の等張液が入った容器に入れます。
すべてのリンパ節の採取が完了した後、マウスをケージに戻し、容易に摂食できるようウェットフードを与えます。手術から約6~8時間後にマウスを確認し、痛みが生じていないかを確認してください。姿勢、歩行、同居個体との相互作用、および被毛の外観が、通常の健康なマウスと同様であるかを注意深く観察します。
最後に、シャーレ内でリンパ節をフロステッドスライドに押し付けて解離させ、チューブに移して単一細胞懸濁液を得ます。目的の細胞表面抗原で細胞を染色した後、フローサイトメトリーで細胞を分析します。ここでは、麻酔下または屠殺後の動物から採取したリンパ節の前方散乱光および側方散乱光の代表的な散布図を示します。
2つのスキャッタープロットにおける生存リンパ球ゲート内の細胞のプロファイルおよび割合は同一です。これは、リンパ節手術が細胞回収のための適切な手法であることを示しています。習得すれば、適切に実施することで、リンパ節手術はマウス1匹あたり5分から10分で完了させることができます。
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本記事では、免疫応答の経時的な追跡を目的として、麻酔下にあるマウスからリンパ節を順次摘出する外科的手法について解説します。この手順には、リンパ節の同定、採取、および切開部位の縫合が含まれ、その後、解析用の単一細胞懸濁液を調製します。
逐次的なリンパ節手術により、同一個体内で免疫応答の経時的な追跡が可能となり、実験的なばらつきを抑え、標的バリデーションにおけるメカニズムの不確実性を低減させることができます。このアプローチは、表現型解析および機能解析に十分な生存リンパ球を提供し、前臨床免疫学研究における予測的な信頼性を高めます。タイムコース実験を容易にすることで、本手法は創薬から前臨床バリデーションに至るまでのトランスレーショナルな連続性をサポートします。
本手法は、仮説検証から前臨床検証に至る発見の連続的なプロセスに統合されており、免疫応答の追跡およびリンパ球の機能解析を支援します。