2017年7月31日
このプロトコールは、発色免疫組織化学およびImageJを用いたグリア芽腫患者切除における腫瘍微小環境成分を定量的に同定するために開発された。
このプロトコルの全体的な目標は、発色性免疫組織化学および画像J.This方法を使用して、膠芽腫患者切除における腫瘍微小環境成分を定量的に同定することですこれらの成分が患者サンプルでどのように見えるか、細胞の生理学的に関連する比率をどのように決定できるかなど、腫瘍微小環境分野での主要な質問に答えるのに役立ちます。この手法の主な利点は、患者サンプルの分析が容易であることです。この手法の意味は、特徴が十分に示されていない複雑な神経膠芽腫腫瘍微小環境の解明にまで及びます。
一般に、この方法に不慣れな個人は、組織の過剰発達と飽和を防ぐために発色発生のタイミングを綿密に監視する必要があるため、苦労するでしょう。付属のテキストプロトコルで指定された洗浄を実行することにより、プロトコルを開始します。トリスベースの高pH抗原アンマスキング溶液と蒸留水を、メーカーの推奨値を使用して希釈します。
次に、希釈したマスキング解除溶液を非密封の電子レンジ対応容器に添加することにより、熱媒介抗原賦活化に移ります。スライドを容器に入れます。次に、容器のスライドを電子レンジに入れます。
次に、容器を高出力で20分間沸騰させます。蒸発のために液体レベルを監視し、必要に応じて容器に蒸留水を補充します。サンプルを溶液中で室温で1時間冷却します。
組織サンプルを疎水性で輪郭を描き、サンプルを覆うために必要な試薬の量を最小限に抑えます。次いで、十分な透過処理溶液をパイプでつなぎ、組織サンプルを覆うために100〜200マイクロリットルにする。溶液を取り出して廃棄し、組織サンプルを再び透過化溶液で覆います。
サンプルを室温でブロッキング溶液で1時間インキュベートします。次に、ブロッキング溶液で希釈した一次抗体を用いて、サンプルを摂氏4度で一晩インキュベートします。翌日、一次抗体宿主動物に対応する西洋わさびペルオキシダーゼポリマー試薬を使用して一次抗体を検出します。
組織サンプルを覆うのに十分な透過化溶液をパイプでつなぎ、サンプルを5分間インキュベートします。溶液を取り出して廃棄し、組織サンプルを透過化溶液でもう一度5分間覆います。スライドを0.3%過酸化水素とIX TBSで15分間インキュベートします。
ペルオキシダーゼジアミノベンジジンまたはdab基質を用いて、目的の染色強度が得られるまで2〜10分間サンプルを現像します。サンプルを対比染色して細胞核を同定します(例えば、ヘマトキシリンでメーカーのプロトコルに従います)。サンプルを100%エタノールとキシレンで脱水します。
最後に、サンプルを封入剤で永久にマウントします。私たちの腫瘍切除における 2 つの関心領域、原発腫瘍バルクと隣接領域は、主に拡散した浸潤がん細胞を持つ健康な組織で構成され、ヘマトキシリンとエオシンで染色された患者サンプルで神経病理学者と協力して特定されました。発色免疫組織化学により、各患者サンプル内のアストロサイト、ミクログリア、およびオリゴデンドロサイトの陽性染色が同定されました。
ネガティブコントロールとして一次抗体なしの染色を行いました。メーカーは、抗ALDH 1l1抗体のバックグラウンドを最小限に抑えた細胞体の最適な陽性染色とプロセスにより、1〜200の希釈に落ち着く前にさらに希釈することを推奨しました。画像Jを使用して、OSP-1陽性オリゴデンドロサイト染色のカバー率を定量化し、最終的に関心領域の違いを比較しました。
適切な閾値を画像に適用すると、閾値からのカバー率を測定し、複数の患者について比較することができます。膠芽腫またはGBM患者サンプルの5つの隣接領域およびバルク領域と健康な脳組織を比較し、オリゴデンドロサイト特異的タンパク質1またはOSP1パーセントのカバレッジを比較しました。一度習得すれば、染色技術は1日目に4時間、適切に行えば2日目に2時間で行うことができます。
この手順を試みる際には、組織の染色強度と水分補給を注意深く監視することを忘れないようにすることが重要です。
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本プロトコルでは、発色免疫組織化学染色とImageJを用いて、膠芽腫(グリオブラストーマ)患者の切除組織における腫瘍微小環境成分を定量的に同定する方法について解説します。この手法は、複雑な膠芽腫の腫瘍微小環境に関する知見を得ることを目的としています。
患者由来の膠芽腫サンプルにおける腫瘍微小環境の定量分析により、神経腫瘍学の創薬におけるグリア細胞ターゲットのメカニズム的なリスク低減が可能になります。アストロサイト、ミクログリア、およびオリゴデンドロサイトの再現性のある領域特異的な測定値を提供することで、本手法は疾患に関連したシステムにおけるターゲットの検証および表現型スクリーニングをサポートします。これにより、微小環境の組成を治療反応および耐性メカニズムに関連付けることで、前臨床モデルにおける予測信頼性が向上します。
この手法は、標的仮説の検証からリード最適化に至る創薬の連続的なプロセスに組み込まれるものであり、特に微小環境の調節に焦点を当てた神経腫瘍学プログラムに適しています。