2018年9月5日
ここでは、パラフィン切片を改善するためのプロトコルを提案する.このメソッドは、切断と従来の方法に必要な転送処理を避けるために簡単な恒温室を使用して浮動小数点を兼ね備えています。その結果、そのままパラフィン切片数と効率が大幅に向上。
この方法は、パラフィン切片などの形態学的分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、切断と折り畳み手順を最高潮にし、従来の方法で必要とされる転写プロセスを回避することです。まず、事前に製造されたすべての部品をドラフトに集めます。
ここに示すように、クロロホルムを使用して7枚のアクリル板を組み合わせます。最終製品は、セクションチャネルとウォーターバスを備えたタンクになります。アクリル板番号2の穴を通して管状電気発熱体を取り付けます。
電気ドリルを使用して、アクリル板の7番に小さな穴を開け、デジタルサーモスタットをタンクに取り付けて、タンクの黒い点で示されている目的の水面のレベルから少なくとも1センチメートル下にあることを確認します。巻を調整するtag機器の電源を入れる前に、24ボルト未満になるようにします。切片廃棄物トレイをミクロトームから取り外します。
次に、中性シリコーンシーラントを使用して、セクションチャネルをミクロトームブレードホルダーにリンクし、ブレードの上部にシーラントが入らないようにします。セットアップを一晩乾燥させて、クロロホルムと中性シリコーンシーラントが固まる時間を与えます。翌日、ブレードをブレードホルダーに取り付けます。
ウォーターバスに水を加え、水面がブレードの上部にちょうど触れていることを確認します。従来のパラフィン切片化を行った後、装置の電源を入れると、改善されたパラフィン切片化が開始されます。温度検出スイッチを使用してヒーターを開きます。
目標温度を38°Cから40°Cの間で1時間設定し、お湯を温めます。パラフィン包埋によって取得されたパラフィンブロックをナイフで改変します。次に、ブロックをミクロトームのカセットクランプに置き、ロックします。
厚い部分をカットして、サンプルにすばやく近づきます。サンプルに適したセクションの厚さに調整します。ハンドホイールを回すと、セクションが自動的にセクションチャネルとバスにロードされます。
次に、ゆっくりと均一な切断ストロークで試験片を切片にします。セクションを浴槽に導き、一列に浮かぶようにします。ヘッド部がチャンバー壁に密着している場合は、ブラシガイドを使用して浮かせてください。
切片がウォーターバスで完全に展開されたら、ピンセットを使用していくつかを分離し、顕微鏡スライドでそれらを拾います。スライドを摂氏42度に設定されたオーブンに移し、一晩乾かします。その後、スライドは分析の準備が整うまで無期限に室温で保存できます。
分析の準備ができたら、ヘマトキシリン-エオシン染色を使用して、改良された方法を使用して切片を評価します。この研究では、改良された方法を使用して、成体マウス海馬組織、成体マウス腎臓、胚性マウス脳、およびゼブラフィッシュの眼のパラフィン切片を調製します。ここに示すように、新しい方法は切片の損失を回避し、検査された組織の各タイプにおける無傷の切片の割合を増加させます。
全シリーズ切片化を行う場合、この方法により、試験したすべてのサンプルでパラフィン切片化の速度が加速することが確認されています。つまり、従来の方法よりも短時間で高品質なパラフィン切片化が可能となります。次に、ゼブラフィッシュの視神経網膜のシリーズ切片をヘマトキシリン-エオシン染色によって観察します。
改良された方法から収穫された切片は、従来のパラフィン切片法から収穫されたものよりも優れた完全性を持っていることが分かります。これら2つの方法を比較すると、ほとんどの採取された切片の品質に大きな違いはありませんが、従来の方法で採取された一部の切片は比較的低い品質であることがわかります。クロロホルムでの作業は非常に危険である可能性があるため、この手順を実行するときは常にヒュームフードなどの予防措置を講じる必要があることを忘れないでください。
この手順を試すときは、注意深く水を追加し、過剰に充填しないように注意することが重要です。
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本記事では、切片作成と浮遊を恒温槽内で行うことで、従来の転送工程を不要にし、パラフィン切片作成を効率化するプロトコルを紹介します。この改良により、パラフィン切片の作成効率と切片の完全性の双方が大幅に向上します。
パラフィン切片作成は、組織学のワークフロー、特に創薬生物学におけるハイスループットなターゲットバリデーションや表現型スクリーニングにおいて、依然としてボトルネックとなっています。本手法は、切片の完全性とスループットを向上させ、ダウンストリームのアッセイ結果やメカニズムのリスク低減に向けた取り組みを妨げる技術的変動を減少させます。信頼性と再現性の高い組織調製を可能にすることで、神経科学および腫瘍学モデルにおけるターゲットエンゲージメント研究の予測信頼性をサポートします。
この手法は、初期のターゲットバリデーションからリード最適化に至る創薬の連続的なプロセスに適合し、信頼性の高い組織学的評価がGo/No-go判断の根拠となります。