2020年5月24日
このプロトコルは、CRISPR/Cas9遺伝子編集ツールで動作するように最適化された Culex quinquefasciatus 胚のマイクロインジェクション手順について説明します。この技術は、この研究対象疾患ベクターの遺伝的技術を構築するために使用できる部位特異的、遺伝性、生殖細胞系列突然変異を効率的に生成することができる。
胚マイクロインジェクション技術は、数多くの遺伝子ベースのベクター制御ツールの開発への道を開いてきました。多くの昆虫種がすでに十分に発達したプロトコルを持っていますが、Culex quinquefasciatusは比較的研究が進んでいません。このマイクロインジェクションプロトコルは、採卵、卵ラフト分離、注入後の手順など、Culex quinquefasciatusのユニークな生物学的特性に対応するように特別に設計されています。
この方法は、関心のある任意のCulex種に適用できる可能性が高く、遺伝子機能の研究やCulex種の遺伝子ベースの制御技術の生成に使用できます。いかだから卵を分けることから始めます。鉗子または絵筆を使用していかだを押し下げ、個々の卵をからかいます。
スライドガラスの上部に敷いた両面粘着テープの薄いストリップに卵を合わせ、各卵の前面を同じ方向に向けて努力します。ハロカーボン試薬を水と穏やかに混合し、25°Cで一晩インキュベートして、ハロカーボン混合物を調製します。整列した卵をハロカーボンオイル混合物で覆います。
マイクロインジェクション用の針を生成するには、製造元の指示に従って、アルミノケイ酸塩キャピラリーガラスをニードルプラーに入れます。.熱を 560 に、速度を 100 に、遅延を 70 に、引っ張りを 97 に、圧力を 500 に設定します。次に、ニードルプラーをアクティブにします。
回転するダイヤモンド砥粒板に引っ張った針の先端に50度の角度で約10秒間そっと触れ、針先を面取りします。引っ張って面取りした針を、ペトリ皿のモデラーの粘土の線に埋め込みます。ゲノム改変試薬からなる注入混合物を調製し、氷上に保存します。
マイクロローダーチップを使用して、2マイクロリットルの注射混合物を注射針に装填します。充填した注射針を電子マイクロインジェクターに連結したマイクロマニピュレーターにセットし、整列卵を並べたスライドガラスを複合顕微鏡のステージに置きます。マイクロマニピュレーターを使用して、針を胚の後端に向けるように25〜35度の角度で合わせます。
針を胚に慎重に挿入し、胚の体積の約10%の量で混合物を注入します。一度に20個の卵子を注入し、その後停止して胚回収手順を実行します。注射後20分以内に、清潔な絵筆で卵を軽くブラッシングして、卵からハロカーボンオイルを慎重に取り除きます。
絵筆で卵を持ち上げ、卵が表面に付着しないように注意しながら、二重蒸留水のカップに入れます。次の7日間は、卵の孵化を毎日チェックし、通常の幼虫の飼育手順に従ってください。ステレオスコープを使用して、突然変異体の表現型について注射された蚊をスクリーニングします。
この方法は、ダークアイ色素の発症に重要な遺伝子の体細胞および生殖細胞変異を成功裏に生成するために使用されてきました。CRISPR-Cas9が生成した体細胞変異は、注射を受けた個人の瞳孔期の眼における色素沈着の喪失をスクリーニングすることによって採点されました。体細胞変異は一般にモザイク表現型として存在し、細胞のすべてではないが一部が変異表現型を有する
。生殖細胞変異率は、モザイクGゼロ個体を交配し、完全に白眼の子孫ごとにスコアリングすることによって決定されました。これらの実験により、胚の生存率は64〜82%、体細胞突然変異誘発率は37〜57%、生殖細胞系突然変異誘発率は61%を超えました。sgRNAをマルチプレックス化して同じ遺伝子の複数の遺伝子座を標的とすることにより、体細胞および生殖細胞系の突然変異誘発率は86%にも増加しました。さらに、何世代にもわたって、白色変異体の生存可能なホモ接合ストックが実験室で成功裏に保持されてきました。
生存率と突然変異誘発率を最適化するために、マイクロインジェクションを試みる前に、ハロカーボンオイル、注射液、針を含むすべての材料を適切に準備する必要があります。これにより、より合理化され、焦点を絞ったマイクロインジェクションプロセスが可能になります。
本プロトコルでは、CRISPR/Cas9ゲノム編集に最適化したCulex quinquefasciatus胚へのマイクロインジェクション技術について概説します。これにより、遺伝学研究や媒介生物制御技術のための、遺伝可能な生殖細胞系列変異を効率的に導入することが可能になります。
効率的な胚マイクロインジェクションにより、ウエストナイルウイルスやリンパ系フィラリア症などの疾患の主要な媒介動物であるCulex quinquefasciatusにおける部位特異的変異導入が可能になります。この技術は、機能遺伝子研究のための遺伝性変異を生成することで、初期創薬におけるターゲットバリデーションおよびメカニズムのデリスキングを支援します。本プロトコルは種特有の障壁に対処し、媒介生物制御ターゲットの同定および前臨床モデル開発における予測信頼性を向上させます。
本手法は、十分に研究されていない媒介種における機能ゲノミクスを可能にすることで、標的仮説からリード化合物の同定に至る創薬の探索 continuum に適合します。