2025年5月16日
ここでは、ABEコーティングキトサンを骨髄に直接注入する遺伝子治療アプローチを紹介します。
アデニンベースのEditorキトサンを骨内注射により骨髄に直接送達する遺伝子治療法を提案します。外因性プラスミドの実験動物へのトランスフェクション効率は比較的低く、長期的な遺伝子発現のためのプラスミドの導入は免疫系の影響を受ける可能性があります。キトサンを用いてアデニンベースのエディタープラスミドをカプセル化し、骨内注射によりマウスの骨髄に直接送達することで、破骨細胞機能の異常によって引き起こされる疾患に適しています。
当社のプロトコルは、高いトランスフェクション効率、小さな生物学的損傷、および高い遺伝子発現効率を提供します。私たちの新しい戦略は、破骨細胞の異常な機能によって引き起こされる疾患に適しているだけでなく、遺伝子治療の分野を前進させる大きな可能性を秘めています。まず、安楽死させたマウスを作業台に置きます。
手術用はさみとピンセットを使用して、脛骨を取り除き、周囲の筋肉組織をすべて取り除きます。洗浄した脛骨をPBSに浸し、骨だけが残るまで洗浄します。1ミリリットルのPBSを注射器に引き込み、骨が完全に白くなるまで脛骨の一端から骨髄細胞を洗い流します。
次に、細胞懸濁液をチューブに集めます。摂氏4度で800Gで5分間遠心分離します。上清をピペッティングした後、500マイクロリットルの赤血球溶解バッファーをペレットに加えます。
1分後、1ミリリットルの分離バッファーを加えて溶解を終了します。懸濁液を摂氏4度の800 Gで5分間遠心分離します。上清を取り除き、得られた細胞ペレットを後で使用するために氷の上に置きます。
キトサントランスフェクションの場合は、4ミリグラムのキトサンを20ミリリットルの酢酸溶液に溶解します。10モルの水酸化ナトリウムを使用してpHを5.5に調整します。次に、500マイクロリットルのキトサン溶液を個々のマイクロ遠心分離管に分注します。
次に、2、3、4、および5マイクログラムのABEプラスミドを個々のチューブに加えます。プラスミドを500マイクロリットルの30ミリモル硫酸ナトリウムに溶解します。次に、500マイクロリットルのプラスミド溶液と500マイクロリットルのキトサン溶液を対応するチューブで混合します。
チューブを摂氏50〜55度のウォーターバスで15分間インキュベートします。各チューブを15〜30秒間ボルテックスし、30分間邪魔されずに放置します。特性評価のために、動的光散乱を使用してキトサンの直径とゼータ電位を分析します。
二重蒸留水中でキトサンの濃度を1ミリリットルあたり0.1ミリグラムに維持します。次に、1ミリリットルあたり0.1ミリグラムのキトサンサンプルをシリコンチップにキャストします。再懸濁したサンプルを200マイクロリットルのメッシュグリッドに加え、インキュベートします。
骨髄細胞懸濁液を摂氏4度で800 Gで5分間遠心分離します。上清を捨て、500マイクロリットルの赤血球溶解物を加えます。1分後、1ミリリットルの分離バッファーを加えて反応を停止します。
次に、セルカウンターでセルの数を数えます。次に、100万個の細胞を新しいマイクロ遠心チューブに移します。再度遠心分離した後、上清をピペットで取り出し、細胞を500マイクロリットルのPBSに再懸濁します。
再懸濁した細胞をフローサイトメトリーチューブに移し、フローサイトメトリーを使用してトランスフェクション効率を測定します。骨髄腔注射の場合は、麻酔をかけたマウスを手術台に仰臥位で固定します。粘着テープを使用して前肢を所定の位置に固定します。
アルコール綿棒を使用して後脛骨を消毒します。次に、プラスミド溶液を26ゲージの針が取り付けられた1ミリリットルの注射器にロードします。気泡を取り除き、注射器を注射の準備をしておきます。
次に、マウスのすねを指で触って安定させます。膝関節近くの脛骨プラトーから脛骨幹に入るように注射針を配置します。次に、針を脛骨と平行に回転させ、骨髄腔に挿入し、3秒かけてゆっくりと注入します。
注射後、3秒かけてゆっくりと針を引き抜きます。出血を止めるために、アルコール綿棒を使用して穿刺部位をすぐに消毒します。マウスの回復を促進するために、マウスを摂氏 37 度の暖かい環境に置きます。
ABEプラスミドとGRNAプラスミドで形成されたナノ粒子は、均一な球形の形態と、平均サイズ202.9ナノメートルの狭いサイズ分布を持っていました。ゼータ電位は2.77ミリボルト、ポリ分散指数は0.22です。キトサン包埋ABEプラスミドは、骨髄細胞の蛍光シグナルを有意に増強し、対照群と比較してトランスフェクション効率が高いことを示しています。
フローサイトメトリーにより、キトサンコードABEプラスミドが骨髄細胞で高いトランスフェクション効率を達成することが確認されました。4マイクログラムの用量で51.2%のピーク効率が観察され、3マイクログラムは47.2%の高効率のバランスを提供しましたサンガーシーケンシングと骨髄細胞ゲノムDNAのPCRは、標的部位A1で14.27%の効率で、サイトA2で10.69%の効率でin vivo遺伝子編集が明らかになりました。
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本研究では、キトサンを用いてアデニンベースのエディタープラスミドを骨髄内注射により直接送達する、新しい遺伝子治療法を提示します。このアプローチは、生物学的損傷を最小限に抑えつつ、トランスフェクション効率と遺伝子発現を向上させることを目的としています。
骨髄への効率的な遺伝子導入は、前臨床段階の遺伝子治療および疾患モデリングにおけるボトルネックとなっており、標的の妥当性確認やメカニズム研究における予測の信頼性を制限しています。アデニン塩基編集プラズミドの骨髄内導入にキトサンナノ粒子を用いることで、導入効率と免疫回避の課題に直接的に対処できます。このアプローチにより、堅牢なin vivo遺伝子編集が可能となり、骨および破骨細胞関連疾患の研究ポートフォリオにおいて、トランスレーショナルな連続性とリスク調整後の進展を支援します。
この骨髄内キトサンナノ粒子デリバリー法は、初期探索と前臨床モデル開発のインターフェースを統合し、標的バリデーションおよびメカニズム研究のための骨髄における直接的な遺伝子編集を可能にします。