1 december 2010
In dit artikel tonen we een methode om glazen capillaire naalden te maken met een 50-um lumen. Deze techniek vermindert de schade aan de hersenen, minimaliseert passieve diffusie van geneesmiddelen en maakt een nauwkeurige targeting naar de knaagdieren hersenen.
Het algemene doel van deze procedure is het uitvoeren van uiterst precieze micro-injecties in diepe hersenstructuren voor het toedienen van geneesmiddelen, virale vectoren of celtransplantaten. Dit wordt bereikt door eerst glazen capillaire naalden te produceren met een lumen van 50 micrometer. De tweede stap van de procedure is het vullen van 50% van de naald met minerale olie via capillaire werking en het inbrengen van de zuiger via het breedste uiteinde van de buis.
De derde stap van de procedure is het vullen van de naald met de stof of de celсусpensie die geïnjecteerd moet worden. De laatste stap van de procedure is het inbrengen van de naaldpunt en het injecteren van de stof met een zeer lage stroomsnelheid in een diepe hersenstructuur. Hiermee kunnen uiteindelijk resultaten worden behaald die een zeer nauwkeurige targeting van stoffen in de hersenen aantonen via micro-injecties met een glazen capillaire buis.
Hallo, ik ben Oscar Gonzalez van het Laboratorium voor Neurowetenschappen aan de School voor Psychologie van de Universiteit van Colima, Mexico. Vandaag laten we u een procedure zien voor het uitvoeren van micro-injecties met een glazen capillaire buis om medicijnen in de hersenen van muizen toe te dienen. We gebruiken deze procedure in ons laboratorium om volwassen neurale stamcellen te bestuderen.
Laten we beginnen. Het gebruik van glazen capillaire naalden met een lumen van 50 micrometer voor micro-injecties in de hersenen vermindert hersenschade aanzienlijk, minimaliseert de passieve diffusie van geneesmiddelen en maakt nauwkeurige targeting in de hersenen van knaagdieren mogelijk. Voordat micro-injecties kunnen worden uitgevoerd, moeten de glazen naalden worden vervaardigd.
Begin met het plaatsen van de capillaire glazen buis in een trek-elektrode met hoge weerstand van een micropipet-trekker. Zet vervolgens de elektrode van de micropipet-trekker aan. Om het midden van de glazen buis te verhitten en het glas daar lokaal te verzachten, wordt de glazen buis langs zijn longitudinale as over een initiële afstand van drie tot vijf millimeter uitgerekt, wat voldoende is om een vermindering van de diameter van de glazen buis in het gelokaliseerde gebied te veroorzaken.
Blijf de glazen buis uitrekken tot deze breekt. Herhaal deze stappen om twee identieke naalden met één lumen te maken. Plaats de glazen naalden vervolgens in een micro-smedeofen.
Een hoek van 30 graden is voldoende om de punt af te schuinen. Plaats de naalden tot slot onder de microscoop en controleer of ze beide de juiste binnendiameter hebben. Voor de meeste hydrofiele geneesmiddelen is een binnendiameter van 30 tot 50 micrometer ideaal voor de vervaardigde naalden.
Laten we bekijken hoe deze voor micro-injecties kunnen worden gebruikt. Vul eerst de vervaardigde naald vanaf het breedste uiteinde met minerale olie. Laat de minerale olie door capillaire werking binnenstromen totdat deze ongeveer 50% van de lengte van de capillaire buis heeft bereikt.
Breng vacuümvet aan rond het breedste uiteinde van de naald en voeg de zuiger hierdoor in. Duw de minerale olie voorzichtig weg totdat er een kleine druppel uit de punt van de glazen naald komt. Zet de naald vervolgens vast in de houder van de micro-injector en begin met het voorbereiden van het dier voor de injectie.
Plaats eerst een warmtemat op de stereotactische dierenhouder om de lichaamstemperatuur van het dier op peil te houden. Houd deze op 37 °C, scheer het hoofd van de gesedeerde muis en plaats deze vervolgens in het stereotactische apparaat om het dier te fixeren. Gebruik oorstaven en een tandhouder en maak met een chirurgisch mesje een incisie in de huid van de oren tot aan de Lambda-schedellijn.
Polijst de schedel met een wattenstaafje om deze te drogen en trek de huid uit het operatieveld. Gebruik vervolgens de punt van de glazen naald om de vertex van de bgma-naad aan te wijzen en stel daar de initiële injectiepositie in. Bepaal nu het punt op de schedel dat geboord moet worden door de x- en y-as van het stereotactische apparaat over de schedel te bewegen.
Boor met een onderzoeksmicroboor voorzichtig gaten op de geselecteerde coördinaten met behulp van fijne pincetten. Verwijder voorzichtig de diepste botlaag en doorprik het dura mater-membraan. U zult zien dat er wat hersenruggenvloeistof naar buiten lekt.
Om te bevestigen dat de naald door de geboorde gaten kan gaan, laat u de glazen naald langzaam zakken met behulp van de Z-as van het stereotactische apparaat. Pipetteer nu één µL van het te injecteren geneesmiddel en plaats dit op een klein stukje Parafilm. Plaats de Parafilm op de schedel.
Zuig het geneesmiddel op door aan het wiel van de micro-injector te draaien, terwijl u via de microscoop controleert of de vloeistof in de glazen naald stijgt. Verwijder de parafilm en zet de nulcoördinaat opnieuw in. Verplaats de naald nu naar de geselecteerde coördinaten en laat de houder zakken totdat de punt van de glazen naald voorzichtig het breinoppervlak raakt, en stel de Z-coördinaat in op nul.
Breng de glazen naald in het hersenparenchym in tot de gewenste diepte. Injecteer het middel langzaam met een snelheid van ongeveer één nanoliter per seconde. Wanneer het gewenste volume is geïnjecteerd, laat u het middel gedurende twee minuten diffunderen in het parenchym, om vervolgens de naald rustig en langzaam te verwijderen.
Lijm tot slot de chirurgische wond dicht en haal het dier uit het stereotactische apparaat. Plaats het dier in een voorverwarmde kooi voor het herstel van de anesthesie. We laten nu enkele resultaten van de microinjectie zien.
Lysofosfatidylcholine of lyin werd in het corpus callosum geïnjecteerd om demyelinisatie van de witte stofbanen te produceren en het hersenletsel door de glazen naald te minimaliseren. Er werd slechts 20 liters lyin geïnjecteerd. Demyelinisatie wordt aangetoond door de afwezigheid van expressie van myelin basic protein in de witte stofbanen; door een zeer precieze injectie en een zeer dunne naaldbaan wordt het hersenletsel tot een minimum beperkt.
We hebben zojuist gedemonstreerd hoe u glazen naalden vervaardigt voor het uitvoeren van micro-injecties in diepe hersenstructuren. Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om ervoor te zorgen dat alle apparatuur en materialen klaarstaan voor gebruik in de operatiekamer. Dat is alles.
Bedankt voor het kijken en veel succes met uw experimenten.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presente করে een methode voor het maken van glazen capillaire naalden met een lumen van 50-μm, waardoor nauwkeurige micro-injecties in diepe hersenstructuren mogelijk zijn. Deze techniek minimaliseert hersenschade en vermindert de passieve diffusie van geneesmiddelen, wat gerichte toediening in knaagdiermodellen mogelijk maakt.
De nauwkeurige toediening van therapeutische middelen aan diepe hersenstructuren blijft een kritische uitdaging bij de ontwikkeling van geneesmiddelen in de neurowetenschappen, vooral bij kleine diermodellen waarbij procedurele trauma's de resultaten kunnen beïnvloeden. Deze micro-injectiemethode verbetert de precisie van de target-interactie door injectie-geïnduceerde weefselschade en passieve diffusie te minimaliseren, waardoor de betrouwbaarheid van farmacologische en genetische interventiestudies wordt vergroot. Deze aanpak ondersteunt het mechanistische risicobeheer in de vroege ontdekkingsfase door reproduceerbare toediening van kleine volumes geneesmiddelen, virale vectoren of celtransplantaties met verminderde biologische variabiliteit mogelijk te maken.
Deze methode past binnen het ontdekkingscontinuüm van targetvalidatie tot lead-optimalisatie, waarbij een nauwkeurige toediening aan het centraal zenuwstelsel essentieel is voor het beoordelen van targetmodulatie en pathway-engagement.