25 juli 2011
Midden cerebrale arterie (MCA) ligatie is een techniek om focale cerebrale ischemie studie in diermodellen. In deze methode wordt de middelste hersenslagader blootgesteld door craniotomie en geligeerd door cauterisatie. Deze methode geeft zeer reproduceerbare infarct volumes en hogere post-operatieve overlevingskansen in vergelijking met andere methoden beschikbaar.
Het algemene doel van deze procedure is het bestuderen van focale cerebrale ischemie in diermodellen. Dit wordt bereikt door eerst een kleine incisie te maken in de huid tussen het linker oog en de basis van het oor. Vervolgens wordt een craniotomie uitgevoerd op het kruispunt van de zygomatische boog en het squamale bot om de arteria cerebri media bloot te leggen, waarna de arteria cerebri media wordt afgebonden met een klein vatcauterisator.
Ten slotte wordt de huid gehecht om de wond te sluiten. Uiteindelijk kunnen resultaten worden behaald die een infarct laten zien in het linkerhemisfeer van het muizenbrein. Het brein kan worden gekleurd met TTC of worden gescand met MRI voor de visualisatie van een beroerte.
De hersenen na een beroerte kunnen ook worden gebruikt voor de bepaling van de eiwit- of mRNA-expressie. Hallo, ik ben Garza Chola. Ik ben een promovendus in het lab van Gale Johnson aan de University of Rochester.
Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen binnen het onderzoeksveld naar beroertes, zoals het illustreren van de mechanismen die leiden tot celsterfte in het ischemische brein. Steriliseer ter voorbereiding op de chirurgie alle chirurgische instrumenten, gazen sponsjes en cognitieve applicators in een autoclaaf. Bewaar de chirurgische instrumenten tijdens de operatie in 70% ethanol en laat ze vlak voor gebruik aan de lucht drogen op steriel gaas.
Sproei het werkgebied twee uur voor de operatie in met 70% ethanol. Injecteer de muis met 0,05 milligram per kilogram buprenorfine. Het geneesmiddel wordt onmiddellijk na de operatie opnieuw toegediend, en vervolgens elke drie tot vijf uur gedurende de eerste 24 uur van de postoperatieve periode.
Gebruik een anesthesieverdampers om de muis te anesthetiseren met een mengsel van 3% ISO-fluoritaan en 20% zuurstofgas. Stel de hoeveelheid zuurstof in met een flowmeter. Controleer de diepte van de anesthesie door in de teen of de staart te knijpen.
Handhaaf het anesthesieniveau met 2% isofluraan. Breng kunsttranen aan in de ogen van de muis en wees voorzichtig om beschadiging van het oog tijdens de chirurgische procedure te voorkomen.
Plaats de muis op zijn rechterzijde in een laterale positie met behulp van de dierentrimmachine. Scheer het gebied aan de linkerzijde tussen het linker oog en de basis van het linker oor. Reinig het gebied door afwisselend een Betadine-oplossing en 70% ethanol te gebruiken met wattenstaafjes en het gebied lichtjes in te wrijven.
Herhaling is noodzakelijk. Plaats de muis op een warmteplateau dat is verbonden met een rectale probe. Om de lichaamstemperatuur op 37 °C te houden, wordt de rectale probe ingebracht met behulp van minerale olie. Positioneer de muis op zijn rechterzijde onder de microscoop en zet deze vast met tape.
Knip een venster in een gaascompress en dek het chirurgische gebied af met een fijne rechte schaar. Maak een verticale incisie tussen het linker oog en de basis van het linker oor. Gebruik gebogen hemostaten om het chirurgische gebied open te houden als er tijdens de operatie overmatige uitdroging van het weefsel optreedt.
Gebruik wattenstaafjes om steriele PBS aan te brengen. Gebruik een veerschaar om een horizontale incisie in de musculus temporalis te maken en trek deze voorzichtig met een pincet weg om de musculus temporalis lichtjes van de schedel te scheiden. Houd het kaakbot vast met een gebogen pincet en gebruik een naald van 18 gauge om een kleine subtemporale craniotomie te maken op het kruispunt van de zygomatische boog en het squamosum van het schedelbot.
Met behulp van botrongeen verwijderen de onderzoekers kleine stukjes van de schedel om de MCA bloot te leggen. De jukbeugel en de inhoud van de oogkas mogen tijdens dit proces niet beschadigd raken. Ligateer het distale gedeelte van de MCA met een klein vat-cauterisatie-instrument, plaats de temporealisspier terug in de oorspronkelijke positie en gebruik hiervoor vijf-nul nylon hechtingen.
Sluit de incisieplaats, staak de anesthesie en verwijder de rectale probe. Injecteer de muis subcutaan met een tweede dosis buprenorfine. Plaats de muis terug in de kooi, die op 37 °C is gehouden.
Met een verwarmingspaneel. Houd de muis gedurende de volgende 24 uur nauwlettend in de gaten op tekenen van ongemak, waaronder een afname van de eetlust of waterconsumptie, een gebogen houding, versnelde ademhaling of opgezette haren (piloerectie). Geef de muis direct na de operatie herstelgel.
Wacht twee tot drie uur na de operatie. Injecteer de muis vervolgens elke drie tot vijf uur subcutaan met buprenorfine tot 24 uur na dato. Anestheseer de muis 24 uur na de operatie diep en perfuseer de muis met 4% TTC.
Verwijder de hersenen en plaats deze overnacht in een 4% paraformaldehyde-oplossing. Positioneer de hersenen de volgende dag in het snijblok. Gebruik scheermesjes om de hersenen in plakjes van één millimeter dik te snijden.
Plaats de plakjes naast een millimeterliniaal. Fotografeer de plakjes met behulp van een digitale camera die is aangesloten op een dissectiemicroscoop met de software ImageJ.
Klik op het bestandmenu en open de gewenste foto. Klik in het programma op het tabblad voor de rechte lijn. Trek een rechte lijn tussen de twee markeringen op de liniaal.
Klik op het analysemenu en selecteer 'schaal instellen'. Stel de bekende afstand in op één en de lengte-eenheid op millimeter. Klik op het tabblad 'vrijhandels cirkel'.
Teken een cirkel om de contralaterale hemisfeer te omlijsten. Klik op het menu 'analyze' en selecteer 'measure'. Er verschijnt een berekeningsvenster waarin de oppervlakte van de getekende cirkel wordt weergegeven.
Teken een andere cirkel rond de ipsilaterale hemisfeer, met uitsluiting van het witte stroke-gebied. Meet het oppervlak zoals eerder getoond. De nieuwe waarde wordt toegevoegd aan het berekeningsvenster.
Het verschil tussen de eerste en tweede waarde vertegenwoordigt het areaal van het infarct. Bereken het stroke-areaal in elke coupe door de bovenstaande stappen te herhalen voor coupediktes van één millimeter. Bereken het stroke-volume door de berekende stroke-arealen van elke coupe op te tellen.
Deze figuur toont de TTC-kleuring van de hersenen 24 uur na permanente MCA-ligatie in een wild-type C 57 BL six muis. De locatie van het infarct is wit van kleur en is vanuit verschillende vergrotingen en hoeken zichtbaar. Hier worden plakjes van één millimeter dik getoond van de TTC-gekleurde hersenen met het infarct, van anterieur naar posterieur.
Het volume werd 24 uur na de operatie berekend. Het volume van het infarct is ongeveer 23 kubieke millimeter zodra dit is gemeten. Deze techniek kan in 30 minuten worden uitgevoerd indien deze correct wordt uitgevoerd.
Bedankt voor het kijken.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
De techniek voor ligatie van de arteria cerebri media (MCA) wordt gebruikt om focale cerebrale ischemie in diermodellen te bestuderen. Deze methode omvat het blootleggen en ligeren van de arteria cerebri media, wat resulteert in reproduceerbare infarctvolumes en verbeterde postoperatieve overlevingstijden.
Het model voor permanente ligatie van de arteria cerebri media biedt een reproduceerbaar systeem voor het bestuderen van focale cerebrale ischemie, wat mechanistische risicoreductie van neuroprotectieve verbindingen in preklinisch beroertenonderzoek mogelijk maakt. Door consistente infarctvolumes in muizen te genereren, ondersteunt deze methode de validatie van targets en de ontwikkeling van assays voor therapeutische kandidaten die inspelen op onvervulde behoeften bij ischemische beroerten. De relevantie voor de menselijke pathologie — waarbij ongeveer 80% van de beroerten in het MCA-territorium optreedt — vergroot het translationele vertrouwen en de portfolio-triage in de vroege ontdekkingsfase.
Deze methode integreert in het ontdekkingscontinuüm, van targetvalidatie via leadidentificatie tot preklinische efficiëntietests, en biedt een platform voor mechanistische risicoreductie van therapieën tegen beroertes.