Waarom verbetert TIRF-microscopie de doelwitvalidatie in studies naar neuronale exocytose?

TIRF-microscopie exciteert selectief fluoroforen nabij het plasmamembraan, waardoor directe visualisatie van vesikelfusiegebeurtenissen mogelijk wordt. Dit biedt mechanistisch inzicht in targets die exocytose reguleren, wat functionele validatie in ziekterelevante neuronale modellen ondersteunt.

Hoe ondersteunt het isoleren van het plasmamembraan als beeldvlak de doelstellingen van de discovery-pipeline?

Door de excitatie te beperken tot de evanescente golf, isoleert TIRF gebeurtenissen nabij het membraan, waardoor de cytoplasmatische achtergrond wordt verminderd. Dit verhoogt de specificiteit van de assay voor exocytose, wat duidelijkere resultaten mogelijk maakt in vroege discovery-workflows.

Welke kwantitatieve metingen maakt time-lapse TIRF-imaging mogelijk voor de analyse van exocytose?

Time-lapse imaging onder TIRF maakt het mogelijk om de frequentie, timing en ruimtelijke distributie van exocytose-gebeurtenissen te meten. Deze kwantitatieve resultaten ondersteunen kinetische analyses en de beoordeling van het effect van verbindingen in screeningscampagnes.

Waarom zijn replicatie en parameterstandaardisatie belangrijk voor crossfunctionele samenwerking bij assays op basis van beeldvorming?

Consistente beeldvormingsparameters en replicatie waarborgen de betrouwbaarheid en vergelijkbaarheid van gegevens tussen gebruikers en experimenten. Dit ondersteunt de gestandaardiseerde implementatie van assays in discovery-projecten met meerdere teams.

Welke statistische analysecapaciteiten zijn vereist voor het interpreteren van uit TIRF afgeleide exocytosegegevens vóór implementatie?

Teams moeten in staat zijn om de frequentie, timing en distributie van gebeurtenissen te analyseren met behulp van geschikte statistische tests. Dit maakt datagestuurde beslissingen mogelijk over doelwitmodulatie of de effecten van verbindingen in neuronale modellen.

Total Internal Reflection Fluorescence Microscopy for Visualization of Exocytic Events

JoVE Encyclopedia of Experiments

Neuroscience

0 weergaven • 3:54 min • June 17th, 2025

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Start with a glass-bottom dish containing embryonic cortical neurons on a total internal reflection fluorescence or TIRF microscope stage.

These neurons express a pH-sensitive green fluorescent protein or GFP-tagged vesicle marker that fluoresces in neutral extracellular pH but remains non-fluorescent in acidic vesicles.

Upon vesicle fusion with the plasma membrane, exposure to extracellular pH induces fluorescence, marking the exocytosis event.

Select the objective and set the refractive index to match the neuron.

Direct the laser beam at an angle to the glass, which causes total internal reflection and generates an evanescent wave. This wave selectively excites GFP markers near the plasma membrane.

Set the TIRF penetration depth to exclude GFP markers above the evanescent field.

First, use widefield epifluorescence illumination to locate GFP-expressing neurons.

Then, switch to TIRF illumination for membrane-specific excitation.

Acquire time-lapse images to record the vesicle fusion event and visualize exocytosis.

After setting up the TIRF microscope and the sample and finding a neuronal focal plane according to the text protocol, start the laser software and connect to the laser control software. Set the illumination to wide field, and select the objective. Then set the refractive index of the sample, and adjust the laser intensity by unchecking TTL for the 491 laser.

Imaging parameter optimization is important during imaging of floor intact exocytic vesicles to avoid focus drift, and phototoxicity while producing images of high signal-to-noise ratio sufficient for analysis.

Adjust the slider to 100, and then bring it back down to a value between 20 and 40. Then recheck TTL. Next, focus on the sample again in transmitted light illumination.

Then in the imaging software, select the 491 laser illumination, and open the shutter. Place the condenser upside down on the optical bench so as not to scratch the lens. Fine adjust the focal point of the laser on the ceiling.

And with the condenser removed, center the point to the center of the closed field diaphragm. Then replace the condenser. And in the TIRF software, set the penetration depth to 110 nanometers. Then switch from wide-field illumination to TIRF illumination mode for imaging.

Now, using wide-field epifluorescence, find VAMP2 florin-expressing cells through the oculars. Then to reduce photobleaching and phototoxicity, adjust the imaging parameters to maximize the signal-to-noise ratio and dynamic range using minimal exposure time and laser intensity. Set continuous autofocus per cell. Then acquire a time lapse image set with acquisition occurring every 0.5 seconds for 5 minutes.