23 mei 2012
Deze video demonstreert de procedures voor de karakterisering van humane pancreatische eilandjes met hematoxyline en eosine (H & E) en immunohistochemie (IHC). Pancreas delen van het hoofd, lichaam en staart regio's worden gekleurd door zowel H & E en IHC te eilandje endocriene samenstelling (insuline, glucagon, en pancreas polypeptide), cel-replicatie (Ki67) en inflammatoire infiltraten (H & E, CD3) te bepalen. De uncinate regio is gelokaliseerd met behulp van IHC voor pancreas polypeptide.
Het algemene doel van deze procedure is het karakteriseren van menselijke pancreaseilandjes met behulp van hematoxyline- en eosinekleuring en immunohistochemie. Dit wordt bereikt door seriële coupes te maken van een pancreasmonster dat is ingebed in een paraffineblok. De coupes worden vervolgens in hun oorspronkelijke oriëntatie op objectglazen geplaatst.
Een deel van de coupes wordt gekleurd met hematoxine en eosine, terwijl de resterende coupes via immunohistochemie worden gekleurd; de laatste stap is het scannen van de gekleurde coupes en het organiseren ervan per casus. Uiteindelijk kunnen deze beelden worden geüpload naar een online pathologiedatabase, waar ze kunnen worden bekeken door andere onderzoekers in het vakgebied. Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden is dat de coupes in serie worden gekleurd met behoud van hun oorspronkelijke oriëntatie.
De procedure wordt gedemonstreerd door Linda Snyder, histotechnoloog, Emily Montgomery, biologisch wetenschapper, en Tiffany Hippo, laboratoriumtechnicus in mijn laboratorium. Begin met het klaarmaken van het waterbad en de microtoom volgens de standaardprocedures voor paraffine-microtomie. Label vervolgens de positief geladen objectglazen met het casusnummer, de pancreasregio en het glaasnummer.
Zodra alles is voorbereid, plaatst u het paraffineblok in de microtoomhouder met het cassette-label aan de linkerzijde. Volg de standaardprocedures voor microtomie en snijd het blok tot het weefsel uniform is blootgelegd. Zodra het weefsel gelijkmatig wordt geraakt, maakt u een lint van seriële coupes van ongeveer vier microns dik.
Afhankelijk van het aantal benodigde initiële kleuringen zijn drie tot zes coupes nodig. Scheid vervolgens de coupes van het lint. Pak elke coupe achtereenvolgens op en plaats deze op een objectglas.
Noteer het sectienummer met potlood. Als een sectie onbruikbaar is, sla dat nummer dan over en nummer de secties verder in de exacte volgorde. Zorg ervoor dat de oriëntatie op het objectglas hetzelfde blijft als in het cassetteje, met het label van het objectglas naar links gericht.
Plaats de objectglazen vervolgens in een objectglashouder en laat ze een nacht drogen. Verzegel het oppervlak van het paraffineblok bij kamertemperatuur opnieuw met een dunne laag paraffine om het weefsel te conserveren en archiveer dit bij kamertemperatuur of bij -20 °C. Herhaal deze procedure voor het volgende monster.
Het is belangrijk om de nummering van de seriesneden op elk niveau, zoals hierboven weergegeven voor h&e-kleuring, te handhaven. Plaats de eerste slide van elk blok in een slide-rek en plaats het rek vervolgens in het eerste plateau van de automatische kleurstofmachine. Selecteer het standaard HE-programma en start het kleuringsproces.
Wanneer de kleuring is voltooid, haal je de objectglazen uit de automatische kleurer en plaats je ze in de zuurkast voor het aanbrengen van het dekglas. Plaats met standaardtechnieken op elk objectglas een dekglas. Label de objectglazen tot slot met een geprint label en laat ze volledig drogen in de zuurkast.
Begin met het instellen van de automatische kleurelunit en het klaarmaken van alle benodigde reagentia. Kies het Daco-programma voor dubbelkleuringen. Voer het aantal coupes in en de behandeling die elke coupe zal ondergaan.
Laad alle reagentia in de automatische kleurer volgens de aanbevelingen van de fabrikant. Bereid vervolgens TBST, citraatbuffers, antilichamen en andere reagentia voor die nodig zijn voor de procedure. Deparaffiniseer de coupes door ze vijf minuten in xyleen te plaatsen.
Laat de preparaten niet uitdrogen, omdat dit zal leiden tot overmatige achtergrondkleuring en poriekleuring terwijl de preparaten worden gedeparaffiniseerd. Giet citraatbuffer in een steamer om deze voor gebruik voor te verwarmen. Onderwerp de gedeparaffiniseerde preparaten vervolgens aan een reeks ethanolwassing.
Spoel de objectglazen nog één keer af met gedeïoniseerd water. Voeg de objectglazen toe aan de voorverwarmde citraatbuffer en laat ze 30 minuten stomen. Verplaats de objectglazen na deze periode onmiddellijk naar een waterbad op kamertemperatuur totdat ze volledig zijn afgekoeld.
Zodra de coupes zijn afgekoeld, brengt u deze over naar de rekken van de Dayco auto-stainer, waarbij u zorgdraagt voor het behoud van de juiste volgorde. Start vervolgens het dubbelkleuringsprogramma dat eerder is geladen. Wanneer het dubbelkleuringsprogramma is voltooid, verwijdert u de coupes uit de auto-stainer en laat u deze ten minste één uur drogen voordat u overgaat tot dehydratie.
Om de dehydratie voort te zetten, brengt u ze gedurende één minuut over naar 80% ethanol. Zet de dehydratie van de coupes voort door ze te dompelen in 95% ethanol en vervolgens in 100% ethanol. Doop tot slot de coupes in xyleen en houd ze daar één minuut in.
Monteer de objectglazen onmiddellijk met dekglas met behulp van cyto seal om de procedure te voltooien. Print etiketten met de casusinformatie, inclusief het orgaan en bloknummer, het type kleuring en de datum. Plaats op elk objectglas een etiket om de gekleurde preparaten te kunnen scannen.
Plaats ze op een scantray en volg de standaardprocedures. Archiveer de gekleurde coupes bij kamertemperatuur en eventuele resterende ongekleurde coupes bij -20 °C voor toekomstig gebruik. Organiseer tot slot de beelden van de gekleurde coupes per donor en per waargenomen weefseltype.
Hier is een voorbeeld van KI 67 plus insulinekleuring bij zowel een lage als een hoge vergroting. Afbeeldingen van de gekleurde pancreassecties worden ingediend bij een online pathologiedatabase om een virtuele biobank te creëren. Met behulp van deze database kunnen onderzoekers snel toegang krijgen tot informatie die nodig is voor onderzoek naar diabetes type 1.
Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u hoogwaardige preparaten van de menselijke pancreas bereidt en kleurt.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze video demonstreert procedures voor de karakterisering van menselijke pancreaseilandjes met behulp van hematoxyline en eosine (H&E) kleuring en immunohistochemie (IHC). De techniek maakt het mogelijk om de endocriene samenstelling van de eilandjes, celreplicatie en inflammatoire infiltraten te beoordelen.
Gestandaardiseerde histopathologische workflows voor menselijke pancreaseilandjes maken een reproduceerbare karakterisering van endocriene cellen mogelijk, wat bijdraagt aan targetvalidatie in diabetesonderzoek. Door de oriëntatie van seriële coupes te behouden en gedigitaliseerde whole-slide images te genereren, faciliteert deze methode cross-functionele gegevensuitwisseling en biobanking voor het mechanistisch minimaliseren van risico's bij therapieën gericht op eilandjes. Deze aanpak vergroot het voorspellend vertrouwen in preklinische modellen door kwantificeerbare, ruimtelijk opgeloste gegevens te verschaffen over de compositie, replicatie en immuuninfiltraten van de eilandjes.
De methode integreert in het ontdekkingscontinuüm, van vroege targetvalidatie tot preklinische beoordeling, door seriële doorsnijding, gestandaardiseerde kleuring en digitale biobanking van menselijk pancreaatweefsel mogelijk te maken.