12 september 2013
De aangeboren immuunrespons beschermt organismen tegen pathogene infectie. Een essentieel onderdeel van de aangeboren immuunrespons, de fagocyt respiratory burst, genereert reactieve zuurstofradicalen die binnendringende micro-organismen te doden. We beschrijven een respiratoire burst test die reactieve zuurstofradicalen geproduceerd wanneer de aangeboren immuunrespons chemisch geïnduceerd kwantificeert.
Het algemene doel van deze procedure is om fluorescentie te gebruiken om de respiratoire burstrespons te kwantificeren. Laad eerst de zebravis-embryo's in de putjes van een 96-putjesplaat. Voeg vervolgens een fluorescerend substraat toe en activeer de respiratoire burst met een chemisch middel.
Meet vervolgens de relatieve fluorescentie met behulp van een fluorimeter. Uiteindelijk wordt de fluorescentie gebruikt om de respiratoire burstpotentie te tonen. Deze methode kan worden gebruikt om te onderzoeken hoe experimentele manipulaties de algehele aangeboren immuungezondheid beïnvloeden.
Hier gebruiken we het om inzicht te geven in de respiratoire burst van zebravis-embryo's, maar het kan ook worden toegepast op andere systemen zoals volwassen zebravissen, niercellen en celpreparaten van andere vissoorten. Laat de embryo's groeien in diepe petrischalen bij 28 graden Celsius in eierwater tot de gewenste ontwikkelingsfase. Verwijder dagelijks dode embryo's.
Giet voorzichtig het oude eierwater af en vul dagelijks aan met nieuw eierwater. Op de dag van het experiment, maak een verdunde fluoresceïne werkoplossing in een in folie verpakte 1,7 milliliter microcentrifugebuis. Bereid ook een werkoplossing van 20 microgram per milliliter PMA eindconcentratie voor.
Maak vervolgens vijf milliliter van elke doseringsoplossing in 15 milliliter conische buisjes zoals beschreven in de bijbehorende tekst. Houd de doseringsoplossingen eerst op ijs, zet de Microplate-lezer aan en warm de lichtbron op om de fluorescentie te meten. Stel een programma in met details over de excitatie- en emissiegolvenlengten, de positie van de optica en gevoeligheid, en voeg ook een schudfase van vijf seconden toe.
Voor de uitvoering, schik de experimentele benodigdheden van schalen met gecoate embryo's. Een zwarte 96-putjes microplaat, een P 200 pipettor en tips, een ijsemmer met de fluoresceïne bevattende reagentia. Een multikanaals P 200 pipettor, twee steriele reservoirs, aluminiumfolie en schaar.
Snij nu een pipettip zodat de embryo's of nieren door de opening kunnen passen. Stel een P 200 pipettor in op 100 microliter en breng een embryo over samen met eierwater over in zoveel putjes van een zwarte 96-putjes microplaat als gewenst. Giet nu de doseringsoplossing in een steriele 25 milliliter reservoir met een multikanaals P 200 pipettor.
Voeg 100 microliter H 2D CFDA doseringsoplossing toe aan één kolom van de 96-putjes microplaat. Herhaal dit voor de helft van de controle-embryomonsters en de helft van de experimenteel gemanipuleerde embryomonsters. Giet de PMA-bevattende doseringsoplossing in een nieuw steriele 25 milliliter reservoir.
Breng vervolgens deze doseringsoplossing aan in de resterende kolommen van de 96-putjes microplaat. Bedek de Microplaat met aluminiumfolie en plaats deze gedurende ongeveer 20 seconden op een schudder. Bij 150 RPM, incubeer de Microplaat bij 28 graden Celsius wanneer deze niet wordt gelezen.
Lees de microplaat na toevoeging van PMA. Blijf gedurende de gewenste tijdsintervallen metingen doen, of incubeer de in folie verpakte microplaat bij 28 graden Celsius tot een vast tijdstip. Vervolgens haalt u de embryo's uit de putjes en euthanaseert u de embryo's volgens het protocol voor dierverzorging en -gebruik van de instelling.
Verwijder ook de microplaat en ander wegwerpbaar materiaal in de biogevaarlijke afvalbak. Bepaal het tijdstip waarop u de fluorescentie wilt vergelijken. Trek de gemiddelde fluorescentiewaarde van de niet-geïnduceerde controlegroep af van de individuele PMA-geïnduceerde controlegroep fluorescentiewaarden.
Herhaal dit voor de experimentele groep met en zonder PMA. Sla deze genormaliseerde fluorescentiewaarden op in kolommen, de controle plus PMA-groep en de experimentele plus PMA-groep. Bereken vervolgens de gemiddelden en standaardafwijkingen voor de genormaliseerde fluorescentiewaarden van de controle plus PMA-groep en de experimentele plus PMA-groep.
Vergelijk de genormaliseerde fluorescentiewaarden met behulp van een ongepaarde T-test om statistische significantie te bepalen. Teken vervolgens de gemiddelden van de controle plus PMA-groep en de experimentele plus PMA-groep met foutbalken weer die de juiste standaardafwijkingen weerspiegelen. Noteer het significantieniveau op de grafiek en in de figuurlegenda. Dit experiment vergelijkt de respiratoire burstrespons in wilde type zebravis-embryo's van AB-achtergrond op 48 uur en 72 uur na bevruchting.
De ruwe fluorescentie werd vier uur na toevoeging van PMA gemeten in de PMA-geïnduceerde groepen. De ruwe fluorescentiewaarden waren hoger in de 72 HPF populatie. Zoals aangegeven door de berekende gemiddelde waarden, zijn de fluorescentiewaarden genormaliseerd om rekening te houden met de variabiliteit in achtergrondniveaus van fluorescentie.
Resultaten van deze respiratoire bursttest onthulden dat de 72 HPF zebravis-embryo's in staat zijn om significant meer reactieve zuurstofsoorten te produceren en daarom een robuustere respiratoire burstrespons te vertonen dan 48 HPF embryo's na inductie met PMA. Na het bekijken van deze video, zou u een goed begrip moeten hebben van hoe fluorescentie te gebruiken om de respiratoire burstpotentie van zebravis-embryo's te kwantificeren. Vergeet niet dat het werken met PMA-poeder extreem gevaarlijk kan zijn, dus gebruik voorzorgsmaatregelen zoals het dragen van een mondmasker tijdens het wegen van PMA-poeder.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel beschrijft een assay voor de respiratoire burst waarmee reactieve zuurstofsoorten worden gekwantificeerd die worden geproduceerd tijdens de aangeboren immuunrespons. De methode maakt gebruik van fluorescentie om de respiratoire burst in zebravissenembryo's te meten wanneer deze worden geactiveerd door een chemisch agens.
Het kwantificeren van de respons op de respiratoire burst biedt een functionele aflezing van de aangeboren immuungezondheid in zebravismodellen, wat vroege evaluatie van immunomodulerende verbindingen mogelijk maakt. Deze assay ondersteunt doelwitvalidatie door genetische of farmacologische manipulaties te koppelen aan meetbare veranderingen in de productie van reactieve zuurstofspecies, een belangrijk effectormechanisme in de afweer tegen pathogenen. De aanpasbaarheid van de methode over verschillende ontwikkelingsstadia en monstertypes verhoogt de bruikbaarheid bij het verminderen van risico's voor immunomodulerende lead-verbindingen vóór preklinische investeringen.
De assay past binnen het ontdekkingscontinuüm van targetvalidatie tot leadidentificatie en levert functionele immuunprofielgegevens die complementair zijn aan targetengagement en fenotypische screenings.