30 december 2025
Deze studie stelde een model voor een half-segmentaal defect bij ratten op om de mechanische en osteogene prestaties van botsubstitutiematerialen onder dragende omstandigheden te evalueren zonder gebruik van interne of externe fixatie.
We streven ernaar een reproduceerbaar femoraldefectmodel op te zetten om de mechanische en osteogene prestaties van dragende botmaterialen te evalueren. De grootste uitdaging is het ontbreken van een gestandaardiseerd, reproduceerbaar draagdefectmodel voor realistische mechanische in-vivo beoordeling. Om te beginnen plaats je de verdoofde rat in een laterale liggende positie op een steriele chirurgische bank.
Schaf het laterale dijgebied uit lijn met de dijbeenuitsteeksel en desinfecteer de huid met 2% jodiumtinctuur, gevolgd door 75% ethanol. Bedek de operatieplek met een steriel fenestreerd laken om asepsis te behouden. Maak een lengtesnee van twee tot drie centimeter langs de laterale kant van de dij.
Identificeer de spieren rectus femoris en vastus lateralis en gebruik een rechte schaar om de spieren zorgvuldig te scheiden langs de zichtbare witte fascia. Maak vervolgens met een wegwerp-steriel scalpel een longitudinale incisie langs de spieraanhechtingen om toegang te krijgen tot het femorale oppervlak. Voer een stomp dissectie uit met een periosteale lift om de spieraanhechtingen los te maken en de middendiafyse van het dijbeen volledig bloot te leggen.
Boor verticaal naar beneden op de defectlocatie met behulp van de boor totdat er plotseling verlies van weerstand wordt gevoeld. Vergroot het defect door gecontroleerde horizontale duw-trekbewegingen toe te passen rond het initiële penetratiepunt. Verleng het defect longitudinaal langs de femuras en lateraal langs de femurdiameter om geleidelijk een semi-cilindrisch defect te vormen.
Vervolgens plaats je het dragende 3D-geprinte Polymethyl- of PMMA-implantaat, bedoeld voor mechanische prestatietests, in de defectplaats, zodat het goed aansluit. Hecht vervolgens met een naaldhouder de spierlagen met 4-0 monofilamenthechtingen, zodat er geen overmatige spanning is. Sluit tot slot de huid met onderbroken hechtingen en desinfecteer de operatieplek met 2%iota 4-oplossing.
Vier weken na de operatie toonde microcomputertomografie aan dat femurs geïmplanteerd met gelatinemethacryloylhydrogel concave defectgebieden en uitgebreide ectopische ossificatie in de medullaire holte vertoonden. Daarentegen vertoonden femuren in de 3D-geprinte PMMA-groep herstelde externe morfologie, waarbij het defectgebied werd ondersteund door uitgelijnd nieuw bot en minimale ectopische ossificatie in de medullaire holte. Hematoxline- en eozinkleuring toonde aan dat de gelatine-methacryloylgroep overvloedig vezelig weefsel bevatte binnen het defect, waarbij donker het ectopische bot bijna de medullaire holte afsluit en er geen zichtbare periostale vorming of corticale botcontinuïteit was.
In de 3D-geprinte PMMA-groep vulde nieuw gevormd bot de scaffold-leegte die verbonden was met corticale botten aan de defectranden en werd bedekt door continu periosteaal bot zonder significante buitenbaarmoederlijke ossificatie in het merg. Immunofluorescentiekleuring toonde zeer weinig Piezo 1-positieve en LepR-positieve cellen in geregenereerd bot in de gelatine-methacryloylgroep. Daarentegen vertoonde de 3D-geprinte PMMA-groep overvloedige Piezo 1-positieve cellen en LepR-positieve cellen in het nieuw gevormde bot op de defectlocatie.
Kwantitatieve analyse bevestigde dat zowel de aantal Piezo 1-positieve als LepR-positieve cellen significant hoger waren in de PMMA-groep vergeleken met de gelatine-methacryloylgroep. Ons protocol maakt in vivo mechanische evaluatie van implantaten zonder fixatie mogelijk, en biedt een eenvoudig en reproduceerbaar model van dragende defecten.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie stelde een ratfemoraal half-segmentaal defectmodel vast om de mechanische en osteogene prestaties van botvervangende materialen onder belasting te evalueren, zonder gebruik van interne of externe fixatie. Het protocol maakt in vivo mechanische evaluatie van implantaten mogelijk en biedt een reproduceerbaar model voor realistische beoordelingen.
Preklinische evaluatie van botvervangingsmaterialen voor orthopedische toepassingen vereist modellen die zowel de biologische integratie als de mechanische belastingsvereisten nauwkeurig weerspiegelen. Het half-segmentale diafyse-botdefectmodel bij ratten maakt een directe beoordeling van de implantatieprestaties onder fysiologisch relevante mechanische stress mogelijk, wat bijdraagt aan de voorspellende betrouwbaarheid bij de materiaalkeuze voor reconstructie van pijpbeenderen. Dit gestandaardiseerde, fixatievrije model vormt een cruciaal omslagpunt in translationele R&D van biomaterialen door een robuuste differentiatie van de mechanische en osteogene eigenschappen van kandidaatmaterialen mogelijk te maken.
Dit model slaat een brug tussen vroege ontdekking en preklinische validatie door een gestandaardiseerde, belastbare in vivo assay te bieden voor botvervangingsmaterialen.