4 grudnia 2010
W niniejszym filmie zaprezentowano model ortotopowego przeszczepu aorty jako prosty model do badania rozwoju waskulopatii przeszczepu (TVP) u szczurów.
Ogólnym celem niniejszej procedury jest opracowanie dokładnego modelu i łatwo wykonalnej metody badania rozwoju waskulopatii przeszczepu. Osiąga się to poprzez zastosowanie kombinacji szczepów PVG oraz CI. Drugim krokiem procedury jest pobranie aorty od dawcy.
Trzecim krokiem procedury jest przygotowanie biorcy. Ostatnim etapem procedury jest anastomoza aorty dawcy z aortą biorcy. Ostatecznie, za pomocą badań histopatologicznych można uzyskać wyniki wykazujące tworzenie się neointimy.
Witam, jestem Sonya Schwefel, profesor immunologii transplantacyjnej w Thet Eye Lab w Uniwersyteckim Centrum Serca w Hamburgu w Niemczech. A ja jestem Manish Duboff, również z TS Eye Lab.
Moje laboratorium zajmuje się immunologią transplantacji. W tym filmie przedstawimy model ortotopowego przeszczepu aorty – prosty i wiarygodny model służący do badania rozwoju waskulopatii przeszczepu u szczurów. Stosujemy tę procedurę w naszym laboratorium w celu badania przewlekłego odrzucania przeszczepów w układzie sercowo-naczyniowym.
W modelu ortotopowego przeszczepu aorty możliwe jest łatwe przeprowadzenie oceny histologicznej aorty. Ponadto, model przeszczepu żyły dużego palca (PVG) do tętnicy szyjnej wewnętrznej (CI) jest szczególnie użyteczny w badaniach nad waskulopatią przeszczepu, ponieważ ostre odrzucanie naczyniowe nie stanowi głównego czynnika zakłócającego, a rozwój waskulopatii jest zbliżony do wyników obserwowanych w praktyce klinicznej.
Zacznijmy zatem. Darczyńcą w tej ORTOTOPICZNEJ transplantacji aorty jest szczur PVG o masie około 250 do 300 gramów. Po znieczuleniu zwierzęcia należy ogolić sierść w okolicy brzusznej i klatki piersiowej.
Połóż szczura na plecach i załóż maskę tlenową na jego nos i pysk. Aby utrzymać znieczulenie, szeroko zdezynfekuj obszar brzucha i klatki piersiowej, używając jodyny Provo, a następnie 80% ethanol. Następnie sprawdź odruchy zwierzęcia, uciśnięcie tylnych łap.
Aby potwierdzić, że zwierzę jest w dostatecznym stopniu znieczulone. Odkrwawić szczura poprzez otwarcie jamy brzusznej i wykonanie nacięcia w aorcie brzusznej. Ostrożnie otworzyć klatkę piersiową, aby zlokalizować zstępującą aortę piersiową.
Wypreparuj aortę piersiową z otaczających tkanek, takich jak tłuszcz, nerwy i przełyk. Pobierz fragment aorty o długości 1,5 centymetra za pomocą skalpela acuta, unikając uszkodzenia tkanki aorty. Dokładnie przepłucz przeszczep aorty zimnym roztworem soli fizjologicznej i przechowuj go w temperaturze czterech stopni Celsius.
Odbiorcą w tej ortotopowej transplantacji aorty jest szczur rasy A CI o masie ciała około 250 do 300 g. Aby rozpocząć ten zabieg, należy ogolić obszar brzuszny znieczulonego szczura i zastosować maść do oczu, aby zapobiec ich wysychaniu podczas anestezji. Szczura należy ułożyć na plecach i założyć maskę na nos i pysk w celu podtrzymania znieczulenia.
Następnie zdezynfekuj obszar brzucha, używając jodyny, a następnie 80% etanolu. Po uciśnięciu tylnych łap w celu potwierdzenia, że szczur jest w dostatecznym stopniu znieczulony, otwórz jamę brzuszną, wykonując cięcie w linii środkowej i oddzielając skórę oraz mięśnie. Dwa kroki.
Po otwarciu jamy brzusznej umieść jelita w rękawiczce z roztworem soli fizjologicznej. Zawiń rękawiczkę wokół jelit, aby zapobiec utracie wilgoci. Usuń tkankę tłuszczową pokrywającą aortę brzuszną.
Przeprowadź preparację aorty od regionu podnerkowego do rozwidlenia, uważając, aby nie uszkodzić odgałęzień naczyń. W razie potrzeby podwiąż odgałęzienia aorty po zakończeniu jej preparacji. Następnie użyj zacisku mikrochirurgicznego na odcinku podnerkowym aorty, aby zatrzymać przepływ krwi.
Następnie umieść drugi zacisk w pobliżu rozgałęzienia aorty. Po zatrzymaniu przepływu krwi wyciąć krótki segment aorty. Następnie pobrać przeszczep aorty od dawcy, który był przechowywany w 0,9% soli fizjologicznej w lodzie.
Skróć naczynie do odpowiedniej długości i umieść je w luce w aorcie. Połącz aortę dawcy z aortą biorcy, wykonując ciągłe szwy z Prolene 8/0, zaczynając od szycia koniec w koniec w części kranialnej. Po zakończeniu szycia koniec w koniec w części dystalnej, ostrożnie otwórz zacisk dystalny.
Następnie ostrożnie otwórz zacisk czaszkowy. Na dystalnym końcu aorty powinno być widoczne tętno. Teraz przesuń jelita z powrotem do jamy brzusznej i przemyj brzuch podgrzaną sterylną solą fizjologiczną.
Zaszyj warstwę mięśniową ściany brzusznej szwem ciągłym Prolene 6-0. Następnie, podczas gdy szczur wciąż znajduje się pod wpływem znieczulenia, zamknij skórę szwem ciągłym Prolene 5-0. Podaj podskórnie karprofen w dawce 4-5 mg/kg.
Przenieś zwierzę z powrotem do klatki. Do wody pitnej dodaj metimazol jako lek przeciwbólowy na trzy dni. Po transplantacji.
Wyniki histopatologiczne po 120 dniach zostaną zaprezentowane przy użyciu naszego mikroskopu histologicznego. Zdjęcia wyraźnie pokażą rozwój waskulopatii przeszczepu. Rozwinięte zwężenie światła naczynia zostanie wyróżnione za pomocą animacji komputerowej.
Właśnie zaprezentowaliśmy sposób przeprowadzenia autotopowej transplantacji aorty u szczurów. Wykazaliśmy również za pomocą histopatologii pomyślny rozwój waskulopatii przeszczepu po 120 dniach. Metoda ta umożliwia badanie wstępnych efektów działania leków w przewlekłej waskulopatii allograftu.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Ten film prezentuje model ortotopowego przeszczepu aorty jako prosty model służący do badania rozwoju waskulopatii przeszczepu (TVP) u szczurów. Procedura ta pozwala na stworzenie dokładnego modelu do badania TVP z wykorzystaniem specyficznej kombinacji szczepów.
Szczurzy model ortotopowego przeszczepu aorty stanowi solidną platformę do badania przewlekłej waskulopatii przeszczepu, która jest kluczową barierą w długoterminowym przeżyciu graftu. Umożliwiając bezpośrednią ocenę histologiczną zmian naczyniowych, model ten wspiera ograniczanie ryzyka mechanistycznego i zwiększa pewność prognostyczną w przedklinicznych badaniach nad układem sercowo-naczyniowym. Jego istotność kliniczna i powtarzalność sprawiają, że jest on cenny przy podejmowaniu decyzji portfelowych w rozwoju terapii naczyniowych i transplantologicznych.
Model ten stanowi pomost pomiędzy wczesnym etapem odkryć a walidacją przedkliniczną w przypadku przewlekłego odrzucenia naczyniowego, wspierając identyfikację wiodących kandydatów oraz badania translacyjne w zakresie transplantacji sercowo-naczyniowej.