11 stycznia 2011
W niniejszym artykule opisano procedurę chirurgiczną oraz wskazówki dotyczące obsługi związane z implantacją ultrasciennej macierzy mikroelektrod na bazie poliimidu (PBM-array) na czaszkę myszy w celu rejestracji wysokiej gęstości encefalografii (EEG) w modelu mysim.
Witajcie, jestem Mina Lee z Laboratorium Gen Choice w Centrum Neuronauk w Koreańskim Instytucie Nauki i Technologii. Dzisiaj zaprezentujemy warunki wysokiej gęstości EG w modelu masy z zastosowaniem polimerowej macierzy mikroelektrod. Procedura obejmuje konfigurację aparatury, przygotowanie zwierząt do operacji oraz przeprowadzenie zabiegu stereotaktycznego.
Po operacji wykonamy zapis EEG, a następnie przeanalizujemy dane. Zacznijmy. Przed rozpoczęciem operacji przygotuj instrumenty stereotaktyczne oraz wszystkie niezbędne materiały.
Otoczenie powinno być czyste. Przygotuj mysz do operacji. Dzisiejszy zabieg zaprezentuję na 17-tygodniowej hybrydowej myszy szczepu basic six black six J 1 29 s four S-V-J-A-E.
Można również wykorzystać myszy o masie ciała przekraczającej 25 g. Zanestezjować mysz poprzez podanie dootrzewnowe (IP) koktajlu zawierającego ketaminę w dawce 120 mg/kg oraz ksylazynę w dawce 6 mg/kg. Delikatnie uszczypnąć mysz w ogon, aby upewnić się, że zwierzę znajduje się w wystarczająco głębokiej narkozie, by przystąpić do zabiegu chirurgicznego.
Aby rozpocząć zabieg chirurgiczny, zamocuj zwierzę w aparacie stereotaktycznym. Włóż pojedynczo pręty mocujące do uchwytu dla myszy i dokręć je. Nanieś nieco metanolu na głowę zwierzęcia, a następnie zgoli sierść z głowy.
Wykonaj zastrzyk, a następnie wykonaj cięcie wzdłużne od miejsca między oczami do miejsca między uszami i czaszką. Ściśnij skórę myszy za pomocą mikrokleszczyków, aby utrzymać cięcie szeroko otwarte. Usuń wszelkie pozostałe tkanki lub błony z czaszki za pomocą wysterylizowanych patyczków do wymazów.
Umieść marker nad głową pacjenta. Zaznacz punkty lambda BMA. Następnie odsuń marker i trwale oznacz punkty za pomocą cienkopisu.
Dokładnie w tym miejscu. Punkt docelowy. Przenieś elektrodę filmową nad głowę i nanieś kroplę wody T na czaszkę.
Umieść BMA na środku piątej warstwy Ontario polimerowej matrycy mikroelektrod. Ostrożnie usuń film od strony przyśrodkowej do bocznej za pomocą watnych patyczków nasączonych wodą. Odczekaj kilka minut, aż powierzchnia całkowicie wyschnie.
Ułatwia to lepszą adhezję. Za pomocą pisaka na bazie oleju nanieś trzy oznaczenia w pozostałej przestrzeni. W tych miejscach zostaną wykonane otwory wiertnicze.
Należy zachować szczególną ostrożność podczas wiercenia otworów, aby nie uszkodzić wnętrza. Umieść trzy śruby kierujące liniami sterylnymi na czaszce i wkręcaj je, aż zostaną ściśle osadzone w obrębie sznurowania. Przygotuj gęstą partię płynnego cementu dentystycznego i pokryj nim śruby elektrod błonowych oraz pozostałą część czaszki.
Przygotuj kolejną partię i użyj jej do całkowitego pokrycia elektrody. Ponownie odsłoń śruby, aby ją zabezpieczyć. Pamiętaj, że ten element nie powinien znajdować się pod elektrodą filmową.
Przykleić podwójny znacznik z taśmą na tylnej części płaszczyzny złącza. Za pomocą mocnego kleju przymocować sztywny patyk w charakterze paska na środku czaszki. W dzisiejszym doświadczeniu do etapu z patykiem używam końcówki patyczka do nakłuwania, przesuwając złącze do tyłu, aż nawiąże ono kontakt z końcówką patyczka.
Odległość między czaszką a złączem powinna wynosić ponad pięć milimetrów. Przyklej powierzchnię złącza do końcówki patyczka bawełnianego, używając mocnego kleju. Pozostałą otwartą przestrzeń wypełnij cementem akrylowym.
Po utwardzeniu cementu należy zdjąć zaciski i poruszyć skórę. Wyjmij mysz z urządzenia i zakryj wolną przestrzeń. Za pomocą akrylowego cementu stomatologicznego nałóż antybiotyk z sodem w okolicy cementu oraz miejsca szwów.
Umieść mysz w oddzielnej klatce i pozostaw ją na pięć dni w celu rekonwalescencji. Podłącz mysz do urządzenia EEG, wykonaj próbny rozruch i pozostaw zwierzę na ponad godzinę w celu aklimatyzacji. Po godzinie przeprowadź rejestrację EEG; wykonaliśmy akwizycję wysokiej gęstości EEG w modelu mysim z wykorzystaniem polimerowej macierzy mikroelektrod.
Podczas wykonywania tej procedury należy pamiętać o delikatnym obchodzeniu się z elektrodą filmową, ponieważ jej grubość wynosi zaledwie 7 µm. Podczas przestawiania elektrody konieczne jest użycie kropli wody z kranu. Pominięcie tego kroku może spowodować łatwe przesunięcie elektrody; należy upewnić się, że akryl o wysokiej lepkości nie przedostał się pod film.
Po zarejestrowaniu danych przeprowadzamy analizę offline za pomocą meth lab, aby wygenerować kilka grafów mózgu w celu wyraźnej wizualizacji aktywności mózgu u myszy. Są to reprezentatywne wielokanałowe sygnały EEG po wstrzyknięciu GBL. Na lewym panelu widoczne są reprezentatywne sygnały wielokanałowe, a po wstrzyknięciu GBL na prawym panelu.
Przedstawiono mapy topografii mózgu, takie jak średnie opóźnienie czasowe mocy, średnia amplituda szczytu oraz średnia mapa prawdopodobieństwa początku napadu. To wszystko. Dziękujemy za oglądanie.
Niniejszy artykuł przedstawia procedurę chirurgiczną implatacji macierzy mikroelektrod na bazie polimidu (PBM-array) na czaszkę myszy, co umożliwia wysokogęstościową akwizycję EEG w modelu mysim.
EEG o wysokiej gęstości u swobodnie poruszających się myszy umożliwia mechanistyczną weryfikację hipotez dotyczących obwodów neuronalnych poprzez powiązanie sygnatur elektrofizjologicznych z zachowaniem w modelach genetycznie modyfikowalnych. Podejście to wspiera walidację celów w procesie odkrywania leków neuropsychiatrycznych, dostarczając ilościowych i powtarzalnych odczytów aktywności sieci powiązanych z mechanizmami chorobowymi. Macierz mikroelektrod na bazie polimidu zwiększa wierność sygnału oraz zdolność do długotrwałego rejestrowania danych, co poprawia pewność prognostyczną w ocenie skuteczności przedklinicznej.
Metoda ta integruje się z procesem odkrywania leków – od generowania hipotez po optymalizację wiodących związków – dostarczając dynamicznych danych neuronalnych na poziomie systemowym, które stanowią podstawę do wyboru celu terapeutycznego i priorytetyzacji związków.