26 sierpnia 2014
Ten manuskrypt opisuje protokół, który stosuje kompleksowe profilowanie do analizy programów transkrypcyjnych indukowanych w określonych jądrach mózgowych gryzoni zgodnie z paradygmatami behawioralnymi. W niniejszym artykule podejście to zostało zilustrowane w kontekście profilowania genów indukowanych w jądrze półleżącym (NAc) myszy po ostrej ekspozycji na kokainę, z wykorzystaniem mikroprzepływowych macierzy qPCR.
Ogólnym celem poniższego eksperymentu jest zbadanie dynamiki transkrypcji i zdefiniowanych jąder mózgowych myszy po doświadczeniach behawioralnych. Osiąga się to poprzez uprzednie przyzwyczajenie zwierząt i zarejestrowanie ich aktywności lokomotorycznej po wstrzyknięciu soli fizjologicznej. Po przyzwyczajeniu aktywność lokomotoryczna jest rejestrowana po pojedynczej dawce kokainy, a następnie pobierane są próbki z jądra półleżącego i wykorzystywane do izolacji RNA i przygotowania CDNA.
Następnie przeprowadzana jest analiza QPCR w celu zbadania ekspresji genów indukowanej zachowaniem. Ostatecznie uzyskuje się wyniki, które pokazują dynamikę transkrypcji po doświadczeniu z kokainą Demonstrując protokół będzie dr Hatu, kierownik laboratorium, Dum Muer, absolwent z laboratorium i Duran, student studiów licencjackich z laboratorium przez trzy kolejne dni. Każda mysz jest przyzwyczajona do procedur obchodzenia się i wstrzykiwania, organizuje myszy w klatki przed rozpoczęciem eksperymentu, tak aby myszy nie były przenoszone między klatkami w przyszłości, a myszy nigdy nie były pozostawione w izolacji przez dłuższy czas.
Na 30 minut przed rozpoczęciem badania wszystkie klatki testowe powinny zostać przeniesione do pomieszczenia behawioralnego, aby umożliwić zwierzętom zaaklimatyzowanie się w środowisku. Natychmiast po wstrzyknięciu należy podać dootrzewnowe wstrzyknięcie 250 mikrolitrów soli fizjologicznej, umieścić mysz w komorze behawioralnej w celu monitorowania aktywności lokomotorycznej przez 15 minut. Mysz można było umieścić w komorze behawioralnej na 20 minut.
Aktywność monitorowana od drugiej do 17 minuty. Powtarzaj te czynności o tej samej porze dnia przez kolejne dwa dni. Czwartego dnia podaj pojedynczy zastrzyk kokainy lub soli fizjologicznej, w zależności od grupy, i natychmiast umieść mysz w komorze, aby monitorować lokalną aktywność motoryczną przez 20 minut w wybranych punktach czasowych po ekspozycji na kokainę, wyekstrahuj mózg i umieść go w lodowatym roztworze płynu mózgowo-rdzeniowego na jedną do dwóch minut, aby sschłodził się i stwardniał.
Po usunięciu móżdżku i odprowadzeniu nadmiaru płynu, przyklej mózg do stanu vibram z częścią rostralną skierowaną do góry. Napełnij komorę lodowatym płynem płynu mózgowo-rdzeniowego A i pokrój 200 mikronów, aż jądro półleżące zostanie wyraźnie zidentyfikowane. Zwróć szczególną uwagę na kształt ciała modzelowatego, położenie i kształt spoidła przedniego oraz komór podczas cięcia.
Po zidentyfikowaniu właściwego regionu pokrój dwa odcinki o wielkości 400 mikronów, z których jądro półleżące zostanie wycięte pod stereoskopem. Użyj cienkiego ostrza, aby wyciąć jądro półleżące z dala od plastrów. Cztery szybkie ruchy ostrza w odpowiednim obszarze powinny natychmiast odizolować odpowiednią tkankę.
Umieść izolowaną tkankę w 900 mikrolitrach odczynnika do lizy i przechowuj w temperaturze minus 80 stopni Celsjusza do ekstrakcji RNA, aby rozpocząć rozmrażanie probówek w temperaturze 37 stopni Celsjusza i homogenizację. Używając igły o rozmiarze 25, pierwsze kilka rund może być trudne i wymagać dociśnięcia tkanki do ścianki rurki w celu homogenizacji jej na małe kawałki. Aby zapewnić prawidłową homogenizację, odpipetuj lizat na mini kolumnę wirową niszczarki kaya i odwiruj.
Odpipetować lizat do nowej probówki mikrowirówki i wyekstrahować RNA zgodnie z instrukcjami producenta. Po oczyszczeniu RNA przeprowadza się odwrotną transkrypcję do CDNA, a także specyficzną dla celu amplifikację wstępną próbek za pomocą starterów skierowanych przeciwko grupie genów wybranych do analizy. Procedury te są opisane w wersji tekstowej protokołu.
Komercyjne chipy mikroprzepływowe do kompleksowej analizy QPCR są dostępne w rozmiarach 48 na 48. Format, umożliwiający analizę 48 próbek za pomocą 48 zestawów sond lub w formacie 96 na 96, w którym 96 próbek jest analizowanych za pomocą 96 sond. W większości przypadków wybór chipa zależy przede wszystkim od liczby analizowanych próbek.
Najpierw przygotuj mieszankę próbek zgodnie z chipem wybranym do eksperymentu. Należy zachować ostrożność podczas pipetowania odczynnika do ładowania próbki barwnika wiążącego 20 XDNA. Mieszać roztwory mieszaniny próbek przez co najmniej 20 sekund i odwirowywać przez co najmniej 30 sekund.
Przygotowane reakcje mogą być przechowywane przez krótki czas w temperaturze czterech stopni Celsjusza, aż chip będzie gotowy do załadowania. Następnie przygotuj mieszaninę testową, dokładnie wymieszaj mieszaninę próbek i odwiruj, aby odwirować wszystkie składniki. Jak pokazano wcześniej, układ IFC z dynamiczną matrycą ma wloty dla próbek i testów, a także określone wloty dla płynu z przewodu kontrolnego używanego do zwiększania ciśnienia w komorach mikroprzepływowych.
Najpierw wstrzyknij płyn z przewodu kontrolnego do każdego akumulatora na chipie. Następnie zalej chip, umieszczając go w kontrolerze IFC i uruchamiając odpowiedni skrypt. Po zakończeniu skryptu wyjmij zalany chip ze sterownika IFC i odpipetuj pięć mikrolitrów każdego testu.
Wymieszaj na frytce. Dodaj pięć mikrolitrów każdej mieszanki próbek do ich wlotów i zwróć chip do kontrolera IFC za pomocą oprogramowania kontrolera IFC. Uruchom skrypt, aby załadować próbki i testy do chipa.
Po zakończeniu skryptu load mix wyjmij załadowany chip z kontrolera IFC. Następnie załaduj chip do termocyklera i utwórz nowy przebieg chipa, który obejmuje analizę krzywej topnienia. Korzystając z oprogramowania termocyklera, upewnij się, że komory reakcyjne są prawidłowo rozpoznawane i pozwalają na przebieg reakcji do końca.
Wzrost aktywności lokomotorycznej był widoczny po pojedynczym ostrym wstrzyknięciu kokainy. W tym przekroju koronalnym grube białe linie zaznaczyły położenie nacięć wykonanych w celu wyznaczenia granic jądra półleżącego. Podczas preparacji krzywe amplifikacji starterów skierowane przeciwko CFO i fosom B pokazują, że pary starterów amplifikują swój docelowy transkrypt z około 100% wydajnością.
Wyniki pokazują, że indukowana przez kokainę ekspresja CFO i fosu B w jądrze półleżącym była najwyższa jedną i dwie godziny po ekspozycji. Zgodnie z tą procedurą można przeprowadzić inne metody, takie jak sekwencjonowanie nowej generacji, w celu zidentyfikowania nowego, niescharakteryzowanego transkryptu.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy manuskrypt opisuje protokół analizy programów transkrypcyjnych w określonych jądrach mózgu gryzoni po zastosowaniu paradygmatów behawioralnych. Podejście to zostało zilustrowane poprzez profilowanie genów indukowanych w jądrze półleżącym (NAc) myszy po ostrej ekspozycji na kokainę.
Niniejszy protokół umożliwia zespołom badawczo-rozwojowym w sektorze biofarmaceutycznym ilościową ocenę dynamiki transkrypcyjnej w określonych obszarach mózgu po zaburzeniach behawioralnych lub farmakologicznych, co wspiera walidację celów w procesie odkrywania leków neuropsychiatrycznych. Dzięki zapewnieniu powtarzalnych, ilościowych wyników ekspresji genów z ograniczonych próbek tkanek, metoda ta zwiększa pewność predykcyjną we wczesnych badaniach mechanistycznych i dostarcza informacji niezbędnych do podejmowania decyzji go/no-go w przypadku terapeutyków celowanych w OUN. Podejście to jest szczególnie wartościowe w celu minimalizacji ryzyka hipotez związanych z uzależnieniami, szlakami nagrody oraz fenotypami behawioralnymi przed zainwestowaniem zasobów w optymalizację związku wiodącego.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum wczesnego etapu odkrywania leków, wspierając walidację celów opartą na hipotezach oraz opracowywanie testów przed podjęciem wysiłków w celu identyfikacji wiodących związków w programach odkrywania leków ukierunkowanych na ośrodkowy układ nerwowy.