24 października 2014
Ostatnie ulepszenia w organotypowych preparatach do wycinania mózgu pozwoliły na ich wykorzystanie do zastosowań biotechnologicznych. Plastry organotypowe zachowują lokalne cechy strukturalne biologii in vivo, w tym funkcjonalne połączenia synaptyczne. Tutaj przedstawiamy regioselektywną biolistyczną metodę dostarczania do znakowania i genetycznej manipulacji tymi wycinkami.
Celem tej procedury jest szybkie i skuteczne transfekowanie lub znakowanie odrębnych regionów wycinków organotypowych za pomocą pistoletu genowego. Osiąga się to poprzez przygotowanie najpierw żywotnych organotypowych wycinków mózgu lub innych tkanek. Drugim krokiem jest wyprodukowanie DNA lub zdekodowanych cząsteczek złota w celu dostarczenia biotycznego.
Następnie wycinek organotypowy umieszcza się pod ustabilizowanym uchwytem pistoletu genowego, a powlekane cząstki są wystrzeliwane do tkanki lub transformacji episomalnej lub znakowania. Ostatnim krokiem jest obserwacja lub analiza wpływu heterologicznych genów dostarczanych do izolowanych regionów. Ostatecznie takie podejście pozwala użytkownikowi na precyzyjną transfekcję różnych regionów wycinków narządu z różnymi heterologicznymi genami.
Główną zaletą tej metody w porównaniu z istniejącymi metodami jest to, że biologistyka pozwala na transfekcję terminalnie różnicujących się komórek, a także ogranicza promień działania do małej średnicy. Metoda ta może pomóc w zrozumieniu kluczowych zagadnień neurobiologicznych, takich jak zrozumienie regionalnego wkładu pojedynczego genu. Rozpocznij tę procedurę od umieszczenia świeżego mózgu w małej foremce biorcy.
Przykryj go roztworem ARO, który został wezwany do temperatury nieco wyższej niż pokojowa. Następnie szybko schłodzić formę do czterech stopni Celsjusza, umieszczając ją na lodzie. Gdy aros zostanie ustawiony.
Po pięciu do 10 minutach wyjmij osadzony mózg aros z formy. Następnie przyklej go do platformy krajalnicy fibro. Następnie przenieś platformę do komory krajalnicy Vibra zawierającej sterylny, lodowaty PBS.
Po pokrojeniu w plastry delikatnie umieść plastry na wkładkach do hodowli komórkowych na sześciodołkowej tacy z pożywką hodowlaną na zewnątrz wkładki. Inkubuj je w nawilżonym inkubatorze w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% dwutlenkiem węgla. W tej procedurze przygotuj nano pociski przy użyciu cząstek złota o średnicy 40 nanometrów, dodając najpierw 50 mikrolitrów 0,05 molowej spermy i 10 mikrolitrów DNA w ilości jednego miligrama na mililitr do 10 miligramów cząstek złota.
Następnie dodaj chlorek wapnia do mieszaniny roztworów, aby wspomóc wiązanie cząsteczek DNA z nanocząstkami złota. Następnie pobrać roztwór do rurki za pomocą strzykawki. Umieść rurkę w stacji przygotowania przewodów.
Pozwól, aby cząsteczki złota opadły. Następnie usuń supinat przez aspirację Za pomocą strzykawki. Obróć rurkę, aby równomiernie rozprowadzić cząsteczki złota.
Następnie wysusz cząstki przy stałym przepływie azotu z prędkością pięciu litrów na minutę. Aby stworzyć kulki DNA, pokrój rurkę na jednocentymetrowe kawałki za pomocą obcinaka do rurek. Następnie albo włóż je natychmiast do wkładu z genem wyhodowanym, albo trzymaj je wysuszone w temperaturze czterech stopni Celsjusza do czasu użycia w sterylnym kapturze z przepływem blaszki, załaduj wkład zawierający złoto pokryte DNA do uchwytu wkładu.
Następnie załaduj uchwyt do pistoletu genowego. Przymocuj do niego zmodyfikowaną lufę pistoletu genowego za pomocą sterylnych kleszczy. Umieść wkład filtrujący zawierający plasterek organotypowy w sterylnym plastikowym naczyniu.
Usunąć pożywkę z plastra organotypowego. Następnie ustaw ciśnienie gazu na 50 PSI za pomocą uchwytu. Umieść pistolet genowy w odległości 10 milimetrów powyżej żądanego obszaru plasterka w celu dostarczenia genetyki.
Następnie ostrożnie wyceluj w środek lufy i wystrzel powlekane cząstki w tkankę. Po transfekcji biotycznej delikatnie umyj plasterek dwa razy za pomocą PBS. Następnie utrwal plasterek, inkubując w 4% lodowatym PFA w PBS przez 20 minut.
Następnie umyj plasterek dwukrotnie w PBS. Ponownie delikatnie odetnij membranę od wkładu za pomocą skalpela, nie naruszając plastra. Następnie umieść wspornik membrany na szkiełku mikroskopowym z kleszczami i pozwól, aby plasterek organotypowy spoczęł na nim.
Następnie dodaj jedną kroplę nośnika montażowego na plasterek. Umieść szkiełko nakrywkowe delikatnie, bez użycia siły, bezpośrednio stykając się z tkanką. Następnie zabezpiecz szkiełko nakrywkowe cienką warstwą lakieru do paznokci.
Rysunek ten pokazuje biotyczne dostarczanie fluorescencyjnego DNA zakodowanego w białku do organotypowego wycinka sześciotygodniowej myszy. Jak widać tutaj, neuron bikini z niezwykłym portem dendrytycznym znajdującym się na styku warstwy bikini i warstwy molekularnej móżdżku wykazuje wyraźne znakowanie po przejściowej transfekcji biotycznej z P-E-G-F-P-N one. Tutaj jest większe powiększenie dendrytów z kolcami, a tutaj jest komórka parametaliczna znajdująca się w regionie hipokampa.
Po biotycznym dostarczeniu nanocząstki złota pokrytej czerwoną powłoką PDS FP Po opanowaniu technikę tę można wykonać w ciągu zaledwie kilku godzin w ciągu trzech do czterech dni po tej procedurze. Inne metody, takie jak mikroskopia konfokalna, mogą być wykorzystane do udzielenia odpowiedzi na dodatkowe pytania, takie jak to, w jaki sposób niektóre neurony są połączone z sąsiednimi regionami.
Niniejszy artykuł przedstawia metodę regioselektywnego dostarczania biolistycznego w celu znakowania i genetycznej manipulacji organotypowymi skrawkami mózgu. Technika ta pozwala na precyzyjną transfekcję określonych obszarów, zachowując cechy in vivo skrawków.
Regioselektywne celowanie biolistyczne w organotypowych skrawkach mózgu umożliwia precyzyjną manipulację genetyczną określonych obszarów neuronalnych, co wspiera mechanistyczną redukcję ryzyka oraz walidację celów w neurobiologii. Podejście to rozwiązuje problem transfekcji terminalnie zróżnicowanych neuronów, zapewniając pewność prognostyczną w fazie wczesnego odkrywania oraz genomiki funkcjonalnej. Zdolność do lokalnego dostarczania genów usprawnia podejmowanie decyzji w zarządzaniu portfolio poprzez wyjaśnienie regionalnych efektów działania genów w złożonych systemach tkankowych.
Ta regioselektywna metoda biolistyczna integruje się z kontinuum od odkrycia do fazy przedklinicznej, łącząc wczesną genomikę funkcjonalną z translacyjnymi przepływami pracy w neuronauce.