13 stycznia 2016
Podczas gdy badania in vitro interakcji gospodarz-patogen pozwalają na scharakteryzowanie specyficznych odpowiedzi immunologicznych, modele in vivo są wymagane do obserwacji efektów złożonych odpowiedzi. Wykorzystując ekspozycję na Candida albicans, a następnie infekcję płuc za pośrednictwem Pseudomonas aeruginosa, ustaliliśmy mysi model interakcji mikrobiologicznych zaangażowanych w patogenność zapalenia płuc związaną z respiratorem.
Ogólnym celem tej procedury jest zbudowanie modelu do badania interakcji między pojedynczą bakterią a pojedynczym grzybem. Wiadomość ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie interakcji patogenów, takie jak czynniki zaangażowane w przesłuchy i dialekt międzygatunkowy. Główną zaletą tej techniki jest to, że dane wygenerowane z tego modelu in vivo mają znaczenie kliniczne.
Aby zainstalować grzyba donosowo, najpierw rozcieńczyć dwa razy dziesięć do szóstego CFU C.albicans na mililitr w sterylnym PBS. Następnie, po potwierdzeniu utraty odruchu prostowania u dorosłej myszy hipotonicznej, należy odessać co najmniej 50 mikrolitrów zawiesiny grzybów do pipety o pojemności 200 mikrolitrów. Teraz chwyć mysz jedną ręką i obróć zwierzę tak, aby leżało na plecach z brzuchem skierowanym do pionu.
Gdy mysz znajduje się na swoim miejscu, użyj palca wskazującego ręki trzymającej mysz, aby podeprzeć głowę, a kciuka, aby utrzymać szczękę zamkniętą, i przesuń końcówkę pipety blisko nosa zwierzęcia. Następnie ostrożnie dozuj 50-mikrolitrową kroplę grzyba do nozdrzy, umożliwiając wdychanie kropli przez spontaniczny oddech myszy. I umieść mysz samą w klatce, aż w pełni wyzdrowieje.
Cztery dni po instalacji C. albicans należy ogolić brzuch zwierzęcia poddanego eutanazji, a następnie poddać odsłoniętej skórze sterylizację etanolem. Następnie użyj nożyczek, aby otworzyć skórę od mostka do połowy brzucha. Następnie przedłuż nacięcie wzdłuż klatki piersiowej po obu stronach linii środkowej i odchyl skórę po obu stronach klatki piersiowej.
Kiedy klatka piersiowa jest widoczna, wykonaj pionowe nacięcie po obu stronach klatki piersiowej w kierunku obojczyków i użyj mostka, aby odchylić całą przednią ścianę klatki piersiowej, aby uwidocznić serce i płuca. Następnie za pomocą strzykawki z heparyną należy nakłuć serce obok tętnicy śródkomorowej i pobrać minimum 500 mikrolitrów krwi. Umieść próbkę krwi na lodzie.
Następnie wykonaj nacięcie szyjki macicy w linii środkowej, aby odsłonić tchawicę. Ostrożnie rozetnij powięź wokół tchawicy, a następnie umieść szew pod tchawicą. Następnie za pomocą zmodyfikowanej igły do głębka o rozmiarze 20 należy cewnikować tchawicę, zabezpieczając kaniulę wcześniej założonym szwem.
Aby wykonać płukanie oskrzelowo-pęcherzykowe, delikatnie dozuj 500 mikrolitrów lodowatego PBS do płuc. Następnie odessać płyn z płukania i przenieść płyn do dwumililitrowej probówki wirówkowej na lodzie. Po pobraniu dwóch kolejnych próbek o pojemności 500 mikrolitrów usuń płuca z klatki piersiowej i umieść kawałek płuca w 1,5-mililitrowej probówce wirówkowej w celu natychmiastowego przechowywania w temperaturze minus 80 stopni Celsjusza.
Następnie umieść kolejny kawałek tkanki płucnej w wstępnie zważonej probówce do hemolizy zawierającej PBS na lodzie. Na koniec wykonaj nacięcie po lewej stronie brzucha. Zbierz śledzionę do drugiej probówki do hemolizy zawierającej jeden mililitr PBS i umieść probówkę na lodzie.
Model trwałości czterodniowej uzyskuje się przez instalację donosową pięć razy dziesięć do piątej CFU C. albicans na mysz. W ciągu tych czterech dni myszy przybierają na wadze, ale nie wykazują uszkodzenia płuc. Jednak wraz ze wzrostem CFU inokulum dochodzi do uszkodzenia płuc.
Maksymalne uszkodzenie płuc obserwowane jest od 24 do 36 godzin po zakażeniu. Z kolei obciążenie bakteryjne wykazuje spadek o jeden log CFU na mililitr co 24 godziny, przy czym skumulowany wzrost rozprzestrzeniania się bakterii obserwuje się z każdym dniem. W popłuczynach oskrzelowo-pęcherzykowych pobranych od zakażonych myszy neutrofile są szeroko rekrutowane, a różnicowa liczba komórek wykazuje 90 procent neutrofili i 10 procent limfocytów makrofagów naciekających populację komórek odpornościowych.
Po tej procedurze można wykonać inne metody, takie jak analiza płukania oskrzelowo-pęcherzykowego, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania dotyczące charakterystyki odpowiedzi zapalnej. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak zbudować kolonizację Pseudomonas. Nie zapominaj, że praca z luminescencyjnym Candida może być niezwykle niebezpieczna, a środki ostrożności, takie jak noszenie odzieży ochronnej, aby uniknąć zanieczyszczenia kropelkami, powinny być zawsze podejmowane podczas wykonywania tej procedury.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie ustanawia model mysi w celu zbadania interakcji między Candida albicans a Pseudomonas aeruginosa w kontekście zapalenia płuc związanego z wentylacją mechaniczną. Model ma na celu wyjaśnienie złożonych odpowiedzi immunologicznych biorących udział w interakcjach tych patogenów.
Modelowanie interakcji między Candida albicans a Pseudomonas aeruginosa w organizmie gospodarza in vivo pozwala wypełnić istotną lukę w zrozumieniu dynamiki polimikrobiologicznej istotnej dla zakażeń dróg oddechowych. Podejście to umożliwia mechanistyczną weryfikację hipotez terapeutycznych poprzez uchwycenie złożoności układu odpornościowego oraz wzajemnego oddziaływania patogenów, co nie jest możliwe do osiągnięcia in vitro. Model ten zwiększa wiarygodność predykcyjną badań translacyjnych ukierunkowanych na chroniczne zakażenia płuc oraz zakażenia związane ze stosowaniem aparatury do wspomagania wentylacji.
Ten model in vivo stanowi pomost między wczesną fazą odkryć a badaniami przedklinicznymi, umożliwiając testowanie hipotez dotyczących interakcji mikrobiologicznych i immunologicznych w drogach oddechowych. Stanowi on platformę do identyfikacji wiodących kandydatów oraz ograniczania ryzyka mechanistycznego w biologii infekcji.