25 września 2021
Analiza sieci została zastosowana do oceny związku różnych ekologicznych zbiorowisk mikroorganizmów, takich jak gleba, woda i ryzosfera. Przedstawiono protokół dotyczący wykorzystania algorytmu WGCNA do analizy różnych sieci współwystępowania, które mogą wystąpić w zbiorowiskach mikroorganizmów ze względu na różne środowiska ekologiczne.
Metoda ta może skutecznie badać interaktywne relacje lub sieć współwystępowania różnych gatunków drobnoustrojów w różnych środowiskach. Zawiera on szczegółowe informacje na temat wykorzystania algorytmu WGCNA do skonstruowania sieci współwystępowania mikrobioty. Ponadto, w oparciu o uzyskane wyniki, w metodzie tej oceniono zróżnicowanie powiązań mikrobiologicznych i składu między konsorcjami mikrobiologicznymi.
Oto podstawowy przebieg metody. Dane dotyczące składu i liczebności mikrobioty są pobierane z bazy danych NCBI lub danych sekwencyjnych dla próbek. Najpierw otwórz oprogramowanie RStudio i zainstaluj pakiet WGCNA.
Następnie załaduj dane i użyj funkcji genów dobrych próbek, aby sprawdzić poprawność danych. Sprawdź wartości odstające i przechowuj próbki, które spełniają nasze wymagania. Gdy wynik sprawdzenia jest prawdziwy, przejdź do następnego kroku.
Zapisz wynik. Użyj funkcji progu wyboru, aby obliczyć wskaźnik wolny od skali, R kwadrat, danych przy różnych wartościach mocy. Wizualizuj wyniki.
Gdy indeks bez skali jest bliższy jeden, struktura sieci jest bliższa sieci bez skalowania. Gdy wskaźnik bezpodziałkowy R do kwadratu jest większy niż 0,9, wybierz wartość mocy. Na koniec użyj tej samej metody do analizy pozostałych danych dotyczących mikrobiomu.
Najpierw użyj funkcji sąsiedztwa, aby skonstruować symboliczną sieć współwystępowania. Ponadto użyj funkcji podobieństwa TOM, aby opracować topologiczną, nakładającą się sieć. Po drugie, użyj funkcji Hclust, aby wykonać hierarchiczne grupowanie i narysować wynikowe drzewo klastrów.
Po trzecie, użyj funkcji dynamicznej cutree, aby wykonać dynamiczne cięcie gałęzi i użyj parametru minimalny rozmiar klastra, aby ustawić najmniejszy rozmiar modułu. Najmniejszy rozmiar modułu jest zwykle ustawiony na ponad 30. Po czwarte, oblicz charakterystykę mikrobiologiczną każdego modułu.
Grupowanie hierarchiczne odbywa się zgodnie ze współczynnikiem korelacji, a moduły o wysokości mniejszej niż 0,25 zostały scalone w celu uzyskania rozkładu każdego modułu. Po piąte, użyj funkcji dendro wykresu i kolorów, aby zwizualizować wyniki. Uzyskuje się schemat wyświetlania przyporządkowania modułu sieci współwystępowania.
Następnie zmień nazwy kolorów modułów i skonstruuj etykiety cyfrowe odpowiadające kolorom. Zachowaj je do wykorzystania w kolejnych częściach. Na koniec powtórz powyższy proces dla innych zestawów danych.
W tej części porównaj i przeanalizuj dwa zestawy danych oraz przeprowadź test konserwacji. Najpierw załaduj parametry i wyniki dwóch zestawów danych zapisanych w poprzednich krokach. Następnie ustaw wyniki modułu z jednego zestawu danych jako grupę odniesienia, a innego jako grupę testową i wykonaj porównanie modułów.
Następnie oblicz wartości konserwatywności, parametrów statystycznych, podsumowania Z i rangi mediany, aby określić ilościowo konserwatywność między modułami. Na koniec zwizualizuj wyniki. Określ moduł sieciowy, który spełnia zarówno wartość podsumowania Z, mniejszą niż dwa, jak i medianę wartości rangi u góry.
Moduł ten jest najbardziej niezachowanym modułem spośród dwóch danych dotyczących mikrobioty. Wykonaj analizę korelacji członkostwa w module. Ustaw wyniki przypisania modułów dwóch sieci odpowiednio jako odniesienie i grupę testową.
Ustawienia muszą być takie same jak w teście konserwacji. Po pierwsze, wartość KME każdego OTU została obliczona w kilku modułach kandydujących na podstawie wyników testu konserwacji. Weźmy jako przykład żółty moduł.
Oblicz współczynnik korelacji wartości KME w dwóch żółtych modułach, a następnie narysuj wykres analizy korelacji wartości KME w module. Na koniec, zgodnie ze współczynnikiem korelacji na rysunku, oceń konserwatywność modułu w dwóch zbiorach danych. Wybierz moduł o najmniejszym współczynniku korelacji.
Najpierw użyj funkcji eksportuj sieć do Cytoscape, aby wyeksportować sieć do pliku listy krawędzi i węzłów, który Cytoscape może odczytać. Następnie zaimportuj plik do Cytoscape. Ustaw próg na 0,5 i dostosuj inne parametry zgodnie z potrzebami.
Na koniec uzyskaj sieć współwystępowania różnych mikroorganizmów. W tym artykule algorytm WGCNA służy do analizy różnic w trzech niszach systemu korzeniowego ryżu. Wybierz wartość mocy, która spełniała wymagania trzech sieci, które były zbliżone do sieci bez skalowania.
W sieci występowania drobnoustrojów endosfery, ryzopłaszczyzny i ryzosfery zidentyfikuj odpowiednio 23, 22 i 21 modeli. Użyj testu konserwacji i analizy korelacji, aby znaleźć skrajnie niekonserwatywne moduły między każdą z dwóch nisz systemu korzeniowego ryżu. Skonstruuj sieć współwystępowania dla tych trzech modułów, używając różnych kolorów, aby reprezentować różne typy drobnoustrojów.
Proteobakterie, Actinobacteria, Bacteroidetes, Firmicutes i Verrucomicrobia zdominowały trzy różne sieci mikrobiologiczne. Co więcej, 17 podstawowych rodzajów głównie reguluje te sieci. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak wykonać szereg kroków, aby użyć algorytmu WGCNA do analizy różnych sieci współwystępowania, które mogą wystąpić w społecznościach drobnoustrojów z powodu różnych środowisk ekologicznych.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł szczegółowo opisuje protokół analizy sieci współwystępowania drobnoustrojów w różnych niszach ekologicznych systemu korzeniowego ryżu z wykorzystaniem algorytmu Weighted Gene Co-expression Network Analysis (WGCNA). Metoda ta umożliwia badaczom badanie interakcji i wzorców współobfitości między gatunkami drobnoustrojów, identyfikację rodzajów kluczowych oraz ocenę różnic w sieciach pomiędzy środowiskami takimi jak endosfera, ryzoplan i gleba ryzosferyczna.
Analiza sieci korelacji ważonej (WGCNA) pozwala zespołom biofarmaceutycznym na szczegółowe badanie złożonych interakcji w społecznościach mikrobiologicznych, wspierając modelowanie predykcyjne mikrobiomów środowiskowych lub związanych z gospodarzem. Podejście to usprawnia mechanistyczną redukcję ryzyka oraz walidację celów poprzez kwantyfikację rozbieżności sieci i identyfikację kluczowych taksonów regulacyjnych w różnych niszach ekologicznych. Integracja takiej analityki sieciowej z procesami odkrywczymi dostarcza informacji niezbędnych do opracowania strategii translacyjnych i ustalenia priorytetów w portfelu interwencji celowanych w mikrobiom.
Analiza sieci oparta na WGCNA wpisuje się w kontinuum od odkryć do badań przedklinicznych, umożliwiając testowanie hipotez, priorytetyzację celów oraz dopasowanie translacyjne w badaniach i rozwoju mikrobiomu.