30 listopada 2021
Tutaj prezentujemy powtarzalny protokół elektroporacji in vitro do manipulacji genetycznej pierwotnych prekursorów komórek ziarnistych móżdżku (GCP), który jest opłacalny, wydajny i opłacalny. Co więcej, protokół ten demonstruje również prostą metodę badania molekularnego pierwotnych szlaków sygnałowych Hedgehog zależnych od rzęsek w pierwotnych komórkach GCP.
Protokół ten demonstruje prostą metodę modyfikacji genetycznej in vitro do badania molekularnego pierwotnego szlaku sygnałowego zależnego od rzęsek w pierwotnych kulturach prekursorowych komórek ziarnistych. Ze względu na koszty, niską żywotność i słabą skuteczność obecnej metody transfekcji, wprowadzamy prostą, opłacalną i wydajną technikę elektroporacji do badania szlaku sygnałowego zależnego od rzęsek w pierwotnych kulturach GCP. Na początek dodaj 0,5 mililitra pożywki hodowlanej do każdego dołka 24-dołkowej płytki hodowlanej zawierającej powlekane szkiełka nakrywkowe i utrzymuj ją w cieple w temperaturze 37 stopni Celsjusza w inkubatorze dwutlenku węgla.
Odpipetować wymaganą liczbę komórek do sterylnej 1,5-mililitrowej probówki do mikrowirówki i wirować z prędkością 200x G przez pięć minut w temperaturze pokojowej. Wyrzuć supernatant i ponownie zawieś osad komórkowy w 200 mikrolitrach Opti-MEM. Powtórz tę procedurę dwukrotnie, aby upewnić się, że w probówce nie ma resztek pożywki hodowlanej.
Ustaw parametry elektroporacji zgodnie z listą. Delikatnie odpipetuj reakcję elektroporacji, aby dobrze wymieszać, i użyj długiej końcówki pipety P200, aby przenieść dokładną objętość 100 mikrolitrów mieszaniny do kuwety o odstępie dwóch milimetrów. Gdy kuweta znajdzie się w komorze kuwety, naciśnij przycisk omega elektroporatora i zanotuj wartość impedancji, przestrzegając dokładnej objętości 100 mikrolitrów.
Zakres wartości impedancji powinien wynosić około 30 i 35. Naciśnij przycisk start, aby zainicjować impuls. Zapisz zmierzone wartości prądu w dżulach pokazanych na ramce odczytu.
Wyjmij kuwetę z komory. Natychmiast dodaj 100 mikrolitrów wstępnie podgrzanej pożywki hodowlanej do kuwety i ponownie ją zawiesij, pipetując w górę iw dół dwa do trzech razy. Natychmiast przenieść zawiesinę komórek na wcześniej przygotowaną płytkę 24-dołkową.
Inkubuj komórki w temperaturze 37 stopni Celsjusza w inkubatorze dwutlenku węgla. Następnego dnia obserwuj komórki pod mikroskopem fluorescencyjnym. W niniejszym badaniu wydajność elektroporacji w grupach leczonych DMSO i SAG wydawała się porównywalna.
Barwienie immunologiczne pierwotnego markera rzęskowego Arl13b pokazuje, że szybkość rzęskowania GCP w div-2 hodowli zarówno w grupie leczonej podłożem, jak i SAG. Szybkość rzęskowania ilustruje procent ekspresji Pax6 GCP z rzęską pierwotną na powierzchni komórki w momencie div-2 po elektroporacji. Rysunek pokazuje znaczny wzrost wygładzonej lokalizacji EGFP na pierwotnym aksonomie rzęskowym komórek GCP o ekspresji Pax6 w ciągu 24 godzin po leczeniu SAG, co wskazuje na głęboką aktywację pierwotnego szlaku sygnałowego hedgehog zależnego od rzęsek.
W celu uzyskania wyższej wydajności elektroporacji należy zadbać o wysoką czystość zastosowanego plazmidu, a w mieszaninie do elektroporacji plazmidu nie ma pozostałości pożywki. Protokół ten powinien mieć bezpośrednie zastosowanie i być korzystny dla eksperymentów modyfikacji genetycznej in vitro na kulturach pierwotnych i typach komórek, które są trudne do transfekcji, w tym neuronach i pluripotencjalnych komórkach macierzystych indukowanych przez człowieka.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie przedstawia powtarzalny protokół elektroporacji in vitro, opracowany w celu manipulacji genetycznej pierwotnych prekursorów komórek ziarnistych móżdżku (GCPs). Skupia się on na metodzie, która jest zarówno kosztowo efektywna, jak i wydajna w badaniu zależnych od rzęski pierwotnej szlaków sygnalizacyjnych Hedgehog.
Efektywna manipulacja genetyczna pierwotnych prekursorów komórek ziarnistych (GCPs) jest niezbędna do wyjaśnienia zależnych od rzęsek mechanizmów sygnalizacyjnych, które leżą u podstaw procesów rozwoju neurologicznego oraz szlaków chorobowych. Niniejszy protokół elektroporacji zapewnia wysoką wydajność transfekcji oraz żywotność komórek, umożliwiając rzetelną analizę dynamiki szlaku Hedgehog w systemach istotnych dla przebiegu chorób. Metoda ta pozwala na uzyskanie wiarygodnych wyników w fazie wczesnego odkrywania oraz walidacji celów dla modulatorów szlaków sygnalizacyjnych.
Niniejszy protokół integruje wczesne etapy odkrywania i walidacji celów, łącząc manipulacje genetyczne z ilościową analizą szlaków w pierwotnych systemach neuronalnych.