5 września 2025
Minibioreactor Array (MBRA) to wysokowydajny, konfigurowalny system hodowli o ciągłym przepływie, który umożliwia hodowlę złożonych społeczności drobnoustrojów, wspierając równoległe eksperymenty w celu badania dynamiki mikrobiomu, interakcji terapeutycznych i reakcji drobnoustrojów na czynniki środowiskowe.
Dlatego nasze badania koncentrują się na mikrobiomie jelitowym, a konkretnie na tym, jak można go zmodyfikować, aby zapobiec kolonizacji szkodliwych patogenów. Jednocześnie jesteśmy zainteresowani zrozumieniem ekologicznych reguł i mechanizmów stojących za tą odpornością na kolonizację. Technologie, takie jak sekwencjonowanie nowej generacji, zaawansowana bioinformatyka, myszy wolne od zarazków i modele jelitowe in vitro, zmieniają sposób, w jaki badamy społeczności drobnoustrojów i ich rolę w zdrowiu i chorobie.
Jednym z największych wyzwań związanych z modelami jelitowymi in vitro jest ich eksploatacja z dużą przepustowością. To, czego potrzebujemy, to systemy, które pozwolą na funkcjonalne badanie społeczności mikrobiologicznych na dużą skalę. Matryca minibioreaktorów to system hodowli o ciągłym przepływie, który został zaprojektowany w celu rozwiązania problemu braku przepustowości w innych systemach.
Pozwala nam to na zwiększenie skali eksperymentów, przy jednoczesnym uchwyceniu złożonych i powtarzalnych zachowań społeczności drobnoustrojów. Na początek upewnij się, że paski matrycy minibioreaktora są wydrukowane w 3D i zawierają sześć niezależnych komór bioreaktora. Ułóż wszystkie elementy potrzebne do montażu.
Za pomocą gwintownika 1/4 cala 28 NF z kluczem do gwintowników z rękojeścią T. Gwintuj trzy porty 1/4 cala w każdej komorze, aby włożyć złączki. Po umyciu komory wodą umieść w każdej komorze mieszadło magnetyczne o wymiarach 10 na 3 milimetry i dodaj jeden mililitr wody destylowanej.
Następnie umieść gumową podkładkę na górze każdego portu bioreaktora. Do każdej komory wkręć jedną przynętę męską z gwintem słomy z słomą, jedną przynętę męską z gwintem ze słomy odpadowej i jedną pustą przynętę męską z gwintem do portów. Teraz włóż sześć gumowych przegród na 3/32-calowe żeńskie zadziory przynęty i złóż górny rękaw każdej przegrody w dół, aby zakryć szyję.
Przymocuj je do wyznaczonych portów każdej komory. Wytnij paski rurek C-flex o żądanej długości i liczbie. Przymocuj 1/8-calowy żeński zadzior przynęty do jednego końca, a łącznik blokady męskiej przynęty do przeciwległego końca każdej długości rurki.
Następnie włóż 1/16-calową żeńską zadziorę przynęty do każdego końca czerwonej dwustopniowej rurki E-lab o średnicy wewnętrznej 1,14 milimetra i pomarańczowej dwuczęściowej rurki E-lab o średnicy wewnętrznej 0,89 milimetra. Podłącz przygotowaną rurkę E-lab do rurki C-flex i upewnij się, że każda z sześciu długości rurki C-flex jest podłączona do jednej czerwonej i jednej pomarańczowej żyłki E-lab za pomocą żeńskich przynęt. Następnie przytnij rurkę C-flex na różne długości zgodnie z wymaganiami.
Przymocuj 1/8-calowy żeński zadzior przynęty i męski łącznik blokady przynęty do obu końców jednego 3-calowego elementu i 12-calowego kawałka rurki C-flex. Przymocuj męskie łączniki blokady przynęty do obu końców pozostałych elementów. Zamontuj drzewo linii kanalizacyjnej zgodnie ze schematem 3D.
Przymocuj odsłonięte końce czerwonej rurki E-lab z dwoma przystankami do końcowych zamków męskiej przynęty na drzewie linki odpadowej w kolejności rosnącej w oparciu o długość rurki C-flex. Następnie połącz 3-calową rurkę C-flex z żeńskim zadziorem przynęty 1/8 cala i łącznikiem blokady przynęty męskiej do szczytu drzewa linii odpływowej. Zmontuj drzewo linii zasilającej zgodnie ze schematem 3D.
Połącz odsłonięte końce pomarańczowej rurki E-lab z dwoma przystankami do końcowych zamków męskiej przynęty na drzewie żyłki paszowej w kolejności rosnącej w oparciu o długość rurki C-flex i przymocuj 12-calową rurkę C-flex do górnej części drzewa linii zasilającej. Przymocuj rurkę C-flex o zmiennej długości na końcu drzewa linii zasilającej do bioreaktora, układając je w porządku rosnącym od najkrótszej linii po lewej stronie do najdłuższej po prawej. Przymocuj rurkę C-flex o zmiennej długości na końcu drzewa linii odpływowej do paska bioreaktora w kolejności malejącej, przy czym najdłuższa linia znajduje się po lewej stronie, a najkrótsza po prawej, aby dostosować się do umieszczenia pompy.
Zwiąż wszystkie przewody zasilające C-flex po lewej stronie paska i zabezpiecz je opaską zaciskową. Uformuj pętlę z pomarańczową rurką E-lab z dwoma przystankami między liniami C-flex i zabezpiecz pętlę za pomocą taśmy autoklawu, a następnie powtórz proces dla czerwonej rurki E-lab z dwoma przystankami po stronie odpadowej paska bioreaktora. Przykryj samicę przynęty na końcu odpadów i nakarm drzewa żyłki folią, aby zapobiec zanieczyszczeniu.
Poluzuj przynęty z gwintem zewnętrznym z przegrodami w każdej komorze bioreaktora, aby umożliwić ucieczkę pary podczas autoklawowania. Po umieszczeniu zestawu w pojemniku autoklawu, należy rozciągnąć drzewa linii paszowej i odpadowej do oddzielnych pojemników sąsiadujących z tym, w którym znajdują się paski MBRA. Aby przymocować system do pomp, usuń taśmę autoklawu mocującą rurki E-lab zarówno do przewodów odpływowych, jak i zasilających, a następnie rozwiąż wiązki przewodów C-flex.
Umieść MBRA między dwiema pompami na górze płyty mieszającej. Zaciśnij go za pomocą uchwytów wydrukowanych w 3D i wyrównaj z zaznaczonymi pozycjami mieszania na płycie. Teraz podłącz rurkę E-lab przewodu zasilającego do wkładów pompy perystaltycznej i umieść ograniczniki przewodów w szczelinach wkładów.
Powtórz ten proces dla rurki przewodu odpływowego E-lab na pompie znajdującej się po prawej stronie płytki mieszającej. Następnie zablokuj wkłady pompy perystaltycznej w pompie. Ułóż rurki C-flex starannie za pomocą uchwytów na rurki wydrukowane w 3D.
Podłącz koniec drzewa linii odpływowej do rurki podłączonej do butelek na odpady. Następnie przymocuj żeńską przynętę na rurce wejściowej przewodu zasilającego do męskiego złącza na 12-calowej rurce z nakrętki butelki z mediami. Włącz obie pompy, aby rozpocząć przepływ mediów i upewnij się, że obie pompy są ustawione na obrót zgodnie z ruchem wskazówek zegara, gdy odpady są umieszczone po prawej stronie pomp.
Obserwuj wielkość i rytm kropel w każdej komorze bioreaktora. Jeśli zauważysz jakąkolwiek zmienność lub nieprawidłowość, wymień pomarańczową dwustopniową rurkę E-lab podłączoną do komory, której dotyczy problem, aby zmniejszyć zmiany natężenia przepływu. Gdy komory są pełne, wyłącz obie pompy i pozwól bioreaktorom siedzieć przez 24 do 48 godzin, aby sprawdzić zanieczyszczenie przed rozpoczęciem eksperymentu.
Przełącz wejście mediów na jednolitrowy pojemnik z 10% wybielaczem w wodzie dejonizowanej i zwiększ natężenie przepływu na obu pompach do maksimum, aby wyprzeć zawartość komór bioreaktora z wybielaczem. Gdy komory zostaną oczyszczone z mediów, odwróć MBRA, aby dezynfekować powyżej linii napełniania przez pięć minut. Po pięciu minutach wypraw system i odczekaj dodatkowe pięć minut na sterylizację.
Po oczyszczeniu komór z pożywki i sterylizacji przez 10 minut, zastąp wybielacz jednym litrem wody dejonizowanej i przepłucz system, aż woda przejdzie. Następnie odłącz rurki E-lab bioreaktora od pomp i wyjmij MBRA. Usuń zużyte przegrody z bioreaktora i opróżnij każdą komorę, aż pozostanie tylko jeden mililitr wody.
Wymień przegrodę, pomarańczową rurkę E-lab z dwoma przystankami i autoklaw całkowicie zmontowany pasek, jak pokazano wcześniej. Po trzech cyklach ponownego użycia wykonaj następujące kroki. Próbkę kału ludzkiego przygotowano i wyhodowano w systemie MBRA.
Po czterech dniach ciągłego przepływu, społeczność mikroorganizmów we wszystkich dziewięciu bioreaktorach została zdominowana przez 18 rodzajów bakterii, z których każdy zawierał co najmniej 2% względnej liczebności w dowolnej kontrpróbie. 22 z 65 wykrytych rodzajów było obecnych we wszystkich dziewięciu powtórzeniach bioreaktorów, wykazując wysoką odtwarzalność. Analiza różnorodności alfa wykazała minimalną zmienność między powtórzeniami zarówno w obserwowanych operacyjnych jednostkach taksonomicznych, jak i w indeksie różnorodności Shannona.
Niniejsze badanie koncentruje się na modyfikacji mikrobiomu jelitowego w celu zapobiegania kolonizacji przez szkodliwe patogeny. Wykorzystując innowacyjną macierz minibioreaktorów (MBRA), badanie ma na celu ocenę dynamiki społeczności mikrobiologicznych oraz ich odpowiedzi na różne czynniki środowiskowe przy użyciu wysokoprzepustowych systemów kultur w przepływie ciągłym.
Wysokoprzepustowe i powtarzalne modelowanie in vitro społeczności drobnoustrojów pochodzenia ludzkiego jest niezbędne dla rozwoju odkrywania terapii opartych na mikrobiomie oraz mechanistycznego ograniczania ryzyka. System Minibioreactor Array (MBRA) umożliwia skalowalną, równoległą hodowlę złożonej mikrobioty, wspierając rzetelną weryfikację hipotez i przesiewy funkcjonalne. Jego modułowość i powtarzalność sprawiają, że stanowi on kluczową platformę dla wczesnych etapów badań i rozwoju (B+R) nad mikrobiomem oraz integracji z potokiem badań translacyjnych.
System MBRA integruje się z continuum od odkrywania do fazy przedklinicznej, umożliwiając skalowalne i powtarzalne modelowanie oraz screening mikrobiomu.