19 de abril de 2011
Um método simples e eficiente para transformar Physcomitrella pantens Protoplastos é descrito. Este método é adaptado de protocolos para Physocmitrella Protonemal protoplastos e Arabidopsis Transformação de protoplastos do mesófilo 1.
O objetivo geral deste procedimento é transformar protoplastos de SCO Metre. Isso é realizado primeiramente digerindo as plantas com Drizly. Em seguida, os protoplastos são lavados com manitol para remover o Drizly e, então, incubados com DNA e PEG.
Por fim, os protoplastos transformados são espalhados em placas e incubados. Em última análise, podem ser obtidos resultados que mostram protoplastos transformados expressando proteínas marcadas com fluorescência por meio de microscopia de fluorescência. Demonstrará o procedimento Y lu, um pós-doutorando do meu laboratório.
A principal vantagem desta técnica é que ela é eficaz e gera consistentemente protoplastos que expressam a proteína de interesse. Para isolar protoplastos de musgo, comece adicionando nove mililitros de manitol a 8% em uma placa de Petri usando uma espátula. Coloque musgo com cinco a sete dias de idade, proveniente de duas a três placas PP NH quatro, no manitol. Consulte o protocolo escrito acompanhante para este e outros preparos de reagentes. Em seguida, adicione três mililitros de drizly a 2% e incube à temperatura ambiente com agitação suave por uma hora.
Filtre a mistura através de uma malha de 100 microns para obter uma suspensão homogênea verde. Em seguida, centrifugue o filtrado a 250 G durante cinco minutos. Descarte o sobrenadante com muito cuidado.
Resuspenda os protoplastos em 500 microlitros de manitol a 8%. Em seguida, adicione mais 9,5 mililitros de manitol a 8%. Certifique-se de que os protoplastos estejam completamente suspensos.
Realize os passos de lavagem mais duas vezes, centrifugando novamente a solução a 250 G por cinco minutos. Descarte o sobrenadante e ressuspenda os protoplastos primeiro em 500 microlitros.
Em seguida, 9,5 mililitros de manitol 8% utilizando um hemocitômetro. Conte o número de protoplastos em 10 microlitros da suspensão para transformar o DNA nos protoplastos isolados. Primeiro, centrifugue a mistura de protoplastos a 250 ×g durante cinco minutos.
Remova o sobrenadante e ressuspenda os protoplastos a 1,6 milhão por mililitro em solução MMG. Incube a suspensão à temperatura ambiente por 20 minutos. Em seguida, adicione 600 microlitros da solução de protoplastos a um tubo de cultura contendo 60 microgramas de DNA. Agite.
Adicione cuidadosamente 700 microlitros de solução de PEG com cloreto de cálcio e agite. Incube bem a amostra à temperatura ambiente por 30 minutos durante este período de espera. Cubra as placas de PRMB com papel celofane.
Em seguida, dilua a suspensão com três mililitros da solução W5 e centrifugue a 250 ×g durante cinco minutos. Para remover o PEG, re-suspenda os protoplastos em dois mililitros de meio PRMT e plaque um mililitro por placa PRMB coberta com celofane. Mantenha as placas a 25 graus Celsius em uma câmara de crescimento.
Finalmente, quatro dias após a transformação, transfira a celulose para placas de seleção frescas. Esta figura mostra um exemplo de plantas com 18 dias de idade regeneradas a partir de protoplastos, transformados com 15 microgramas de plasmídeo superenrolado, DNA, contendo um cassete de resistência à higromicina. Aqui, 30 microgramas do mesmo plasmídeo superenrolado, DNA, foram transformados em protoplastos.
60 microgramas de DNA xadrez foram transformados nesta amostra. E, finalmente, essas plantas foram regeneradas a partir de protoplastos que foram transformados com 120 microgramas do mesmo DNA plasmidial superenrolado contendo o cassete de resistência à higromicina. A eficiência de transformação não é afetada por concentrações de DNA de até 60 microgramas.
No entanto, concentrações mais elevadas de DNA são prejudiciais a este procedimento. Os dados indicam que este método fornece resultados consistentes em uma ampla faixa de quantidades de DNA por semestre. Esta técnica pode ser realizada em três horas, se for executada corretamente.
Após este procedimento, métodos adicionais como RNAi transitório e interrupção gênica podem ser realizados para responder perguntas adicionais sobre a função gênica.
Este artigo descreve um método simples e eficiente para transformar protoplastos de Physcomitrella patens. A técnica é adaptada de protocolos existentes para transformação de protoplastos e tem como objetivo produzir resultados consistentemente bem-sucedidos.
A transformação mediada por PEG de protoplastos de Physcomitrella patens permite a entrega eficiente e reprodutível de genes, apoiando a genômica funcional de alto rendimento em sistemas vegetais. Essa capacidade é fundamental para equipes de descoberta inicial que buscam investigar a função gênica, validar alvos e acelerar a elucidação de vias metabólicas em um modelo geneticamente manipulável. O potencial de escalonamento e padronização do método torna-o valioso para triagens genéticas abrangentes e desmistificação mecanicista em portfólios.
Este protocolo de transformação insere-se na transição entre a descoberta inicial e a identificação de compostos líderes, permitindo a manipulação genética, a validação de alvos e o desenvolvimento de ensaios em modelos vegetais.